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近年神经与肌肉疾病领域喜讯频出:Tau靶向ASO、siRNA渐冻症药物、DMD相关RNA疗法接连取得临床突破,基因治疗、核酸药物、多肽分子成为研发热门赛道。但CNS领域研发仍面临突出难题:优质疾病模型稀缺、中枢给药难度高、行为学数据重复性差、体外体内研究链路断裂,大量候选药物停滞在临床前阶段。
面对阿尔茨海默病、帕金森病、ALS、SMA、DMD等疑难病症的研发需求,赛业生物打造一站式神经及肌肉药效评价平台,打通模型构建、精细化中枢给药、行为学分析、药理药效验证等关键环节,帮助研究团队更高效地完成从机制验证到体内药效评价的证据链搭建。
一、神经肌肉疾病研发为什么难
神经系统疾病往往涉及复杂病理机制、长期进展过程和多维功能终点。仅依靠单一细胞实验或单一动物行为学结果,常常难以解释药物是否真正影响疾病进程。对于血脑屏障递送、神经退行性病变、神经肌肉功能障碍和神经病理性疼痛等方向,研究者通常需要同时回答“模型是否模拟疾病特征”“药物是否到达目标组织”“行为学是否改善”“组织病理和分子指标是否支持机制”这几类问题。
因此,神经及肌肉药效评价更适合采用平台化思路:以疾病模型为基础,以给药和取材能力为连接,以行为学、病理、分子和细胞功能检测为终点。对于AD、PD和血脑屏障递送项目,可结合阿尔茨海默病药效评价、帕金森病药效评价与血脑屏障(BBB)递送药效评价分别设计模型和终点。

二、先看药效验证数据:AD、BBB与PD案例
APP/PSEN1小鼠表型评价及药效验证
APP/PSEN1小鼠可用于阿尔茨海默病相关病理和药效评价。APP/PSEN1小鼠海马体及大脑皮层β-淀粉样蛋白(Aβ)沉积的免疫组化分析显示,Aβ斑块广泛存在于APP/PSEN1小鼠的海马体和大脑皮层。随着小鼠周龄增长,Aβ斑块密度显著增加,提示该模型小鼠大脑中存在Aβ的渐进性沉积。

在行为学验证中,10月龄APP/PSEN1小鼠经多奈哌齐治疗2个月后进行Morris水迷宫行为学分析。学习阶段中,野生型(WT)+生理盐水组和APP/PSEN1+多奈哌齐组潜伏期均逐渐缩短,提示其空间学习能力和自主活动能力正常;相比之下,APP/PSEN1+溶媒对照组潜伏期未见显著缩短,提示空间学习能力受损。在测试阶段,与APP/PSEN1+溶媒对照组相比,WT+生理盐水组和APP/PSEN1+多奈哌齐组潜伏期显著缩短,平台穿越次数更多,进一步提示治疗组空间记忆能力得到改善。

hTFRC小鼠模型表型与血脑屏障递送验证
hTFRC小鼠(C001584)是通过基因编辑技术将人TFRC基因序列插入小鼠Tfrc基因位点构建的人源化模型。为减少小鼠基因序列或蛋白的干扰,插入序列后的部分小鼠Tfrc基因序列同时被敲除,以获得仅表达人源TFRC蛋白的模型。

对6周龄雄鼠脑组织切片进行人源TFRC(红色)与内皮细胞标志物mCD31(绿色)的共标染色,细胞核为DAPI(蓝色)。免疫荧光结果显示,人源TFRC蛋白特异性表达于纯合hTFRC小鼠的脑微血管内皮。
为评估人源TFRC受体的体内功能,对8-10周龄纯合hTFRC小鼠及野生型(WT)小鼠单次尾静脉注射对照抗体(Vehicle IgG)或抗人TFRC双特异性抗体(TfR BsAb)。药物注射24小时后,检测大脑皮层及血浆中的药物浓度。结果显示,与WT小鼠相比,hTFRC小鼠大脑皮层中的TfR BsAb蓄积更高,而血浆中的药物浓度显著降低,提示在hTFRC小鼠中存在有效且特异性的TFRC依赖性血脑屏障转运过程。

在AAV递送评价中,对hTFRC小鼠静脉注射AAV9-BI-hTfR1病毒4周后,其脑组织矢状面呈现强烈的mCherry报告蛋白信号,提示在该模型中人源化TFRC介导了高效病毒透脑递送。相比之下,注射对照病毒AAV9-Control或在WT小鼠中注射任一病毒,均未观察到明显脑实质信号。qPCR检测也显示,AAV9-BI-hTfR1在hTFRC小鼠脑组织中的分布高于WT小鼠,同时显著高于对照病毒AAV9-Control在两种小鼠脑组织中的分布。

AAV诱导的帕金森病小鼠模型表型评价
本研究构建AAV诱导帕金森病(PD)小鼠模型,将模型分为三组:G1小鼠静脉注射AAV9 PM228-hA53T-α-syn,G2为对照组,注射PBS,G3为天然对照组,未接受任何处理。在注射处理1.5个月后,采用Rotarod转棒实验评价小鼠运动协调能力,以小鼠从转棒掉落的潜伏时间作为检测指标。结果显示,G1的掉落潜伏期显著低于G2和G3,提示G1小鼠存在运动协调缺陷。

步态测试显示,与G2和G3相比,G1左前肢、左后肢和右前肢步幅显著减小,右后肢步幅显著低于G3,平均速度显著低于G2;前肢和后肢步幅宽度方面未见显著差异。这些结果表明G1存在运动功能障碍,与帕金森病样表型高度一致。

在注射后3.5个月,G1掉落潜伏期仍显著低于G2和G3,提示运动协调缺陷持续存在。步态测试进一步显示,与G3相比,G1左前肢、左后肢、右前肢和右后肢步幅显著减小;G1与G2或G3在平均速度、前肢和后肢步幅宽度方面未见显著差异,整体结果继续支持PD样运动功能障碍表型。


病理层面,人α-突触核蛋白在G1组全脑中可被检测到,而在G2组中未检测到,表明存在广泛的AAV介导蛋白表达。人α-突触核蛋白在观察区域呈串珠样模式,与其在神经突触前小泡沿神经突的典型定位一致;行为学和病理学评估均未显示血管破裂或功能障碍证据,提示AAV注射耐受性良好。

磷酸化α-突触核蛋白在G1组全脑中可被检测到,而在G2组中未检测到,提示病理形式α-突触核蛋白显著升高。该信号主要在G1组皮层和纹状体区域观察到,并主要定位于神经元和星形胶质细胞。尽管AAV介导递送后人α-突触核蛋白广泛表达,磷酸化α-突触核蛋白形成仍与帕金森病和其他突触核蛋白病的病理特征相符。

三、一站式平台能力:模型、给药、行为学与药效分析
丰富的神经及肌肉大小鼠模型
基于成熟的动物模型构建技术,赛业生物可提供神经及肌肉疾病基因编辑和药物诱导大小鼠模型,涵盖基因敲除、条件性敲除、点突变、转基因和人源化等多种打靶方式。除现货小鼠外,还可根据研究人员需求进行定制或合作开发。
依托TurboKnockout基因编辑技术,赛业生物可定制涵盖神经退行性病变、神经肌肉疾病等多种类型的动物模型,同时支持定制开发、繁育、胚胎精子冻存复苏,按需提供标准化实验动物,以保障实验批次一致性。
优质的神经及肌肉细胞模型
基因修饰细胞模型适用于高通量筛选与快速机制验证;人源iPSC分化细胞模型具备高生理相关性,可为疾病机制解析与药效评估提供更贴近人体的研究平台。针对神经疾病热门靶点,赛业生物已构建多款疾病特异性细胞模型,能够快速支撑实验与数据对标。相关需求也可结合iPSC技术驱动的神经科学研究与转化医学延伸了解。
精细化给药服务
赛业生物拥有资深技术专家团队及经验丰富的精细化操作技术人才,可提供脑立体定位注射、鞘内注射、脑室内注射、脑内注射、尾静脉注射、鼻腔注射、腹腔注射、肌肉注射、皮下注射等多种给药方式,并可配套完成神经系统组织取材相关工作。
标准化神经行为学分析平台
赛业生物建有标准化神经行为学平台,配备充足动物实验空间与专业设备,可开展水迷宫、Y迷宫、高架十字迷宫、旷场、转棒等大小鼠常规行为学检测。平台搭载专业行为分析软件,可采集动物活动数据并进行多维解析,实验体系遵循国际规范,保障数据可重复。
多维度药理药效分析平台
赛业生物依托标准化病理实验室和先进实验设备,搭建稳定的药理药效一体化检测平台,可提供生理生化、病理组织、代谢水平、基因蛋白表达、细胞功能检测等多维药效分析实验,全方位开展药物有效性评价。如果正在梳理靶点、模型和实验路线,也可以尝试赛业生物科研 AI 平台 iCyagen,在模型选择、实验设计和资料检索阶段获得辅助参考。
四、模型资源与细胞模型清单
以下模型清单按研发场景后置展示,便于已明确方向的研究者快速筛选。带有C或I编号的模型名称已尽量补充详情页入口;如需进一步确认品系、交付周期和实验组合方案,可联系赛业团队沟通。
阿尔茨海默病(AD)模型精选
| 产品编号 | 产品名称 | 品系背景 |
|---|---|---|
| C001790 | B6-hTREM1 小鼠 | C57BL/6NCya |
| I001221 | B6-htau/hGLP-1R 小鼠 | C57BL/6Cya |
| I001209 | B6-hTFRC/htau 小鼠 | C57BL/6Cya |
| C001923 | B6-huTFRC/htau 小鼠 | C57BL/6Cya |
| C001924 | hutau-P301L/huTFRC 小鼠 | C57BL/6Cya |
| C001925 | hutau-P301S/huTFRC 小鼠 | C57BL/6Cya |
| C001410 | hutau(MAPT) 小鼠 | C57BL/6JCya |
| C001836 | hutau-P301S 小鼠 | C57BL/6JCya |
| C001835 | hutau-P301L 小鼠 | C57BL/6JCya |
| C002031 | huAPP-Aβ 小鼠 | C57BL/6JCya |
| C002033 | huAPP-Aβ-NL-G-F-I 小鼠 | C57BL/6JCya |
| C001883 | huTREM2 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001207 | Trem2 KO 小鼠 | C57BL/6NCya |
帕金森病(PD)与血脑屏障递送模型精选
| 产品编号 | 产品名称 | 品系背景 |
|---|---|---|
| C001873 | B6-huTFRC/huSNCA(3'UTR) 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001427 | B6-hSNCA 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001698 | huSNCA(2) 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001584 | hTFRC 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001860 | huTFRC 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001857 | huCD98HC(SLC3A2) 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001970 | huTFRC/huCD98HC 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001971 | hTFRC/huCD98HC 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001985 | hIGF1R/huTFRC 小鼠 | C57BL/6NCya |
| C001608 | hTFRC/huC3 小鼠 | C57BL/6JCya;C57BL/6NCya |
神经病理性疼痛与诱导模型精选
| 模型编号/产品编号 | 模型名称 | 诱导方式或应用 |
|---|---|---|
| C002105 | hSCN9A 小鼠 | 神经病理性疼痛相关靶点研究 |
| I001216 | huSCN9A 小鼠 | 神经病理性疼痛相关靶点研究 |
| CG0028 | AAV诱导的小鼠阿尔茨海默病(AD)模型 | 双侧海马立体定位注射AAV-APP和AAV-PSEN1 |
| CG0016 | AAV诱导的小鼠帕金森综合征(PD)模型 | 静脉注射AAV9 PM228-hA53T-α-syn |
| CG0023 | 6-OHDA诱导帕金森小鼠模型 | 脑立体注射6-羟基多巴胺 |
| CG0024 | 6-OHDA诱导帕金森大鼠模型 | 脑立体注射6-羟基多巴胺 |
| CG0026 | MPTP诱导的PD小鼠模型 | MPTP诱导帕金森综合征 |
| CG0015 | 坐骨神经慢性压迫损伤模型(CCI) | 松散结扎坐骨神经诱导神经病理性疼痛 |
| CG0018 | 脊神经结扎大鼠模型 | 手术结扎特定脊神经诱导持续性疼痛相关行为 |
| CG0025 | 慢性不可预测性轻度应激模型 | 复杂压力诱导,应用于抑郁症研究 |
基因编辑细胞模型精选
| 服务编号 | 靶向基因 | 交付规格 | 宿主细胞 |
|---|---|---|---|
| SY-KO-00015 | Mouse Ythdf2 | 1*10^6 | Neuro-2a |
| SY-KO-00028 | Mouse Ulk4 | 1*10^6 | Neuro-2a |
| SY-KO-00097 | Mouse Mettl3 | 1*10^6 | Neuro-2a |
| SY-KO-00156 | Mouse Isg15 | 1*10^6 | HT22 |
| SY-KO-00179 | Human MECP2 | 1*10^6 | SK-N-SH |
| SY-KO-00287 | Human DISC1 | 1*10^6 | U251 |
| SY-KO-00563 | Human PIGG | 1*10^6 | SH-SY5Y |
| SY-MU-00078 | Human ITIH3 c.789+112G to A | 1*10^6 | SH-SY5Y |
五、推荐资料与延伸阅读
赛业生物针对阿尔茨海默病、帕金森病、渐冻症、肌营养不良、神经病理性疼痛,以及多种罕见神经肌肉遗传病,均可对接完整临床前药效评价方案。如需深入了解平台能力,可申请下载神经领域完整解决方案。

| 推荐入口 | 链接 | 推荐理由 |
|---|---|---|
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FAQ
神经及肌肉药效评价为什么需要体内外联动?
神经肌肉疾病通常涉及细胞机制、组织病理、行为学和长期疾病进展。体外模型有助于快速筛选与机制验证,体内模型则用于观察给药、行为学、组织分布和药效终点,二者联动更容易建立完整证据链。
血脑屏障递送项目适合哪些模型?
如果研究目标与TFRC等跨血脑屏障递送通路相关,可考虑hTFRC或相关复合人源化模型,并结合脑组织药物浓度、血浆浓度、免疫荧光、qPCR和行为学等终点进行综合评价。
赛业生物能提供哪些神经行为学检测?
赛业生物可开展Morris水迷宫、Y迷宫、高架十字迷宫、旷场、转棒、步态分析等大小鼠常规行为学检测,并可结合病理组织、分子检测和药物浓度检测进行综合药效评价。
参考说明
本文基于赛业生物神经及肌肉药效评价平台资料、模型验证案例和公开模型资源整理。模型选择、给药方式与终点设计应结合具体疾病机制、药物类型、给药路径和实验周期综合确定。








