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小身躯,大使命:挑战人体最大基因DMD人源化小鼠

杜氏肌营养不良症(Duchenne Muscular Dystrophy, DMD)是一种主要累及男孩的严重遗传性肌肉疾病,在男性中的发病率高达1/5,000 [1]该病主要由编码肌肉关键蛋白——肌营养不良蛋白(Dystrophin)的DMD基因突变引起。患者因体内肌肉关键蛋白的缺失,本应强壮的生命却逐渐面临肌肉萎缩无力,最终可能导致终身轮椅依赖,甚至呼吸衰竭的困境。

 

肌营养不良蛋白(Dystrophin):稳固肌肉结构,保障正常收缩

图1. 肌营养不良蛋白(Dystrophin):稳固肌肉结构,保障正常收缩 [1]

 

基因太大,病毒“装不下”?DMD基因疗法开发的“拦路虎”

DMD基因是人体已知最大的蛋白编码基因,长度约2.4 Mb。超过75%的患者存在DMD基因的大片段缺失或无义突变,且突变集中于第3-9号和第45-55号外显子区域。这些突变导致肌营养不良蛋白缺失,并进一步引发肌营养不良蛋白相关糖蛋白复合物(DGC)的分解,破坏肌动蛋白与细胞外基质间的相互作用,使肌肉极易受损。这种肌肉易损性最终导致肌肉组织和功能进行性丧失,以及心肌病的发展 [2]传统的腺相关病毒(AAV)基因疗法受限于载体容量,无法递送完整的DMD基因。目前,AAV疗法只能退而求其次,递送“迷你版”——微型肌营养不良蛋白(Micro-Dystrophin)基因 [1-3]

 

 DMD突变类型复杂多样,大片段缺失最为常见,给基因疗法设计带来挑战

图2. DMD突变类型复杂多样,大片段缺失最为常见,给基因疗法设计带来挑战 [4]

 

“迷你版”基因疗法的局限性:免疫原性风险

然而,微型肌营养不良蛋白也存在潜在问题。部分DMD患者由于基因缺失,体内已丢失特定区域的Dystrophin表位。若基因疗法所使用的Micro-Dystrophin恰好包含这些“缺失区域”,患者免疫系统可能将其视为“非自身”表位,从而引发免疫排斥反应,导致炎症损伤 [5, 6] 此外,为达到理想疗效,此类AAV疗法往往需要更大剂量的病毒输注,无疑增加了副作用和组织毒性风险。

 

AAV基因疗法面临免疫原性挑战,部分患者出现严重免疫不良反应

图3. AAV基因疗法面临免疫原性挑战,部分患者出现严重免疫不良反应 [6]

 

外显子跳跃疗法:DMD治疗的新策略

有没有更好的治疗途径?外显子跳跃疗法应运而生。该疗法利用反义寡核苷酸(AON)介导的技术,在DMD基因前体mRNA(pre-mRNA)水平“跳过”突变或缺失的外显子,重塑mRNA阅读框,从而生成截短但仍具功能的Dystrophin蛋白。

外显子跳跃疗法治疗DMD的机制

图4. 外显子跳跃疗法治疗DMD的机制 [7]

 

目前,已有四种靶向45号、51号或53号外显子的AON药物获得FDA批准,为部分患者带来了新的希望 [8]。然而,仍有大量患者未能受益。近期研究显示,单次或多次外显子跳跃策略有望覆盖更广泛的患者群体。例如,靶向51号外显子的跳跃策略适用于17.2%的大片段缺失患者;而靶向45-55号外显子或3-9号外显子的多外显子跳跃策略,适用范围可分别扩大至70.6%和19.2%的大片段缺失突变,显著提升受益患者比例 [8]

 

外显子跳跃策略展现广阔应用前景,有望覆盖各类DMD突变患者

图5. 外显子跳跃策略展现广阔应用前景,有望覆盖各类DMD突变患者 [8]

 

人源化小鼠模型:外显子跳跃疗法研发的“加速器”

为推进外显子跳跃疗法从理论走向临床,亟需可靠的临床前动物模型验证其安全性和有效性。由于外显子跳跃疗法需要作用于人类DMD基因,表达人类DMD基因的人源化小鼠模型成为评估此类疗法的理想平台。多家研究机构和企业,如VICO Therapeutics、Entrada Therapeutics和BioMarin等,已成功利用DMD人源化小鼠模型筛选和评估新一代AON分子 [9-13],这些模型在推动DMD疗法发展中发挥了重要作用。

 

DMD人源化小鼠用于AON候选分子的体内筛选

图6. DMD人源化小鼠用于AON候选分子的体内筛选 [9]

 

赛业生物DMD人源化模型:数据实力见证

为加速DMD新疗法研发进程,赛业生物推出了HUGO-GT™(全基因组人源化模型)项目,构建了多款DMD人源化小鼠模型。这些小鼠携带了人类DMD基因高发突变区域,为研究者提供了有力工具,成为外显子跳跃疗法研发的加速器。

 

序号 产品编号 品系名称 人源化/突变策略 入口
1 C002057 B6-hDMD(E8-30) 小鼠 8~30号外显子人源化 查看详情
2 C001597 B6-hDMD(E44-45) 小鼠 44~45号外显子人源化 查看详情
3 C001775 B6-hDMD(E49-53) 小鼠 49~53号外显子人源化 -
4 C002056 B6-hDMD(E44-45)*Del E44 小鼠 44~45号外显子人源化并删除44号外显子 查看详情
5 TBD B6-hDMD(E44-45)*c.6438+2 T to A 小鼠 44~45号外显子人源化并引入 c.6438+2 T to A 突变 -
6 C001881 B6-hDMD(E49-53)*Del E50 小鼠 49~53号外显子人源化并删除50号外显子 查看详情
7 C001518 DMD-Q995*(C57BL/6)小鼠 Mdx 点突变(p.Q995X,c.C2983T),C57BL/6 背景 查看详情
8 TBD DMD-Q995*(DBA/2)小鼠 Mdx 点突变(p.Q995X,c.C2983T),DBA/2 背景 -

表1. 赛业生物 DMD 疾病研究小鼠模型

 

部分人源化小鼠验证数据如下:

  • B6-hDMD(E8-30)小鼠

B6-hDMD(E8-30)小鼠成功表达人类DMD基因及完整Dystrophin蛋白

图7. B6-hDMD(E8-30)小鼠成功表达人类DMD基因及完整Dystrophin蛋白。

 

  • B6-hDMD(E49-53)小鼠

 

B6-hDMD(E49-53)小鼠成功表达人类DMD基因及完整Dystrophin蛋白

图8. B6-hDMD(E49-53)小鼠成功表达人类DMD基因及完整Dystrophin蛋白。

 

  • B6-hDMD(E44-45)小鼠

B6-hDMD(E44-45)小鼠成功表达人类DMD基因及完整Dystrophin蛋白

图9. B6-hDMD(E44-45)小鼠成功表达人类DMD基因及完整Dystrophin蛋白。

 

  • B6-hDMD(E44-45)*Del E44小鼠:模拟44号外显子缺失突变

 

B6-hDMD(E44-45)*Del E44小鼠因44号外显子缺失导致功能障碍,出现显著的肌肉损伤表型

图10. B6-hDMD(E44-45)*Del E44小鼠因44号外显子缺失导致功能障碍,出现显著的肌肉损伤表型。

 

随着基因编辑和核酸药物技术的不断进步,DMD的治疗正迎来新的曙光。人源化小鼠模型的应用,不仅为新疗法的开发提供了重要支持,也为无数DMD患者和家庭带来了希望。我们期待,在不久的将来,科学的力量能够彻底改变DMD患者的命运,赋予他们健康和力量。

 

参考文献

  • Min YL, Bassel-Duby R, Olson EN. CRISPR Correction of Duchenne Muscular Dystrophy. Annu Rev Med. 2019 Jan 27;70:239-255.
  • Duan D, Goemans N, Takeda S, Mercuri E, Aartsma-Rus A. Duchenne muscular dystrophy. Nat Rev Dis Primers. 2021 Feb 18;7(1):13.
  • Gatto F, Benemei S, Piluso G, Bello L. The complex landscape of DMD mutations: moving towards personalized medicine. Front Genet. 2024 Mar 26;15:1360224.
  • Bladen CL, Salgado D, Monges S, Foncuberta ME, Kekou K, Kosma K, Dawkins H, Lamont L, Roy AJ, Chamova T, Guergueltcheva V, Chan S, Korngut L, Campbell C, Dai Y, Wang J, Barišić N, Brabec P, Lahdetie J, Walter MC, Schreiber-Katz O, Karcagi V, Garami M, Viswanathan V, Bayat F, Buccella F, Kimura E, Koeks Z, van den Bergen JC, Rodrigues M, Roxburgh R, Lusakowska A, Kostera-Pruszczyk A, Zimowski J, Santos R, Neagu E, Artemieva S, Rasic VM, Vojinovic D, Posada M, Bloetzer C, Jeannet PY, Joncourt F, Díaz-Manera J, Gallardo E, Karaduman AA, Topaloğlu H, El Sherif R, Stringer A, Shatillo AV, Martin AS, Peay HL, Bellgard MI, Kirschner J, Flanigan KM, Straub V, Bushby K, Verschuuren J, Aartsma-Rus A, Béroud C, Lochmüller H. The TREAT-NMD DMD Global Database: analysis of more than 7,000 Duchenne muscular dystrophy mutations. Hum Mutat. 2015 Apr;36(4):395-402.
  • Horn S, Fehse B. Wie sicher ist die Gentherapie? : Zweiter Todesfall nach Therapie der Duchenne-Muskeldystrophie [How safe is gene therapy? : Second death after Duchenne therapy]. Inn Med (Heidelb). 2024 Jun;65(6):617-623. German.
  • Bönnemann CG, Belluscio BA, Braun S, Morris C, Singh T, Muntoni F. Dystrophin Immunity after Gene Therapy for Duchenne's Muscular Dystrophy. N Engl J Med. 2023 Jun 15;388(24):2294-2296.
  • Entrada Therapeutics. "Duchenne Muscular Dystrophy (DMD)." Entrada Therapeutics. Accessed October 31, 2023. https://www.entradatx.com/dmd.
  • Leckie J, Zia A, Yokota T. An Updated Analysis of Exon-Skipping Applicability for Duchenne Muscular Dystrophy Using the UMD-DMD Database. Genes (Basel). 2024 Nov 20;15(11):1489.
  • van Deutekom J, Beekman C, Bijl S, Bosgra S, van den Eijnde R, Franken D, Groenendaal B, Harquouli B, Janson A, Koevoets P, Mulder M, Muilwijk D, Peterburgska G, Querido B, Testerink J, Verheul R, de Visser P, Weij R, Aartsma-Rus A, Puoliväli J, Bragge T, O'Neill C, Datson NA. Next Generation Exon 51 Skipping Antisense Oligonucleotides for Duchenne Muscular Dystrophy. Nucleic Acid Ther. 2023 Jun;33(3):193-208.
  • Sheri N, Yokota T. In Vivo Evaluation of Exon 51 Skipping in hDMD/Dmd-null Mice. Methods Mol Biol. 2023;2640:327-336.
  • Marchal GA, van Putten M, Verkerk AO, Casini S, Putker K, van Amersfoorth SCM, Aartsma-Rus A, Lodder EM, Remme CA. Low human dystrophin levels prevent cardiac electrophysiological and structural remodelling in a Duchenne mouse model. Sci Rep. 2021 May 7;11(1):9779.
  • Yavas A, Weij R, van Putten M, Kourkouta E, Beekman C, Puoliväli J, Bragge T, Ahtoniemi T, Knijnenburg J, Hoogenboom ME, Ariyurek Y, Aartsma-Rus A, van Deutekom J, Datson N. Detailed genetic and functional analysis of the hDMDdel52/mdx mouse model. PLoS One. 2020 Dec 23;15(12):e0244215.
  • Echigoya Y, Lim KRQ, Trieu N, Bao B, Miskew Nichols B, Vila MC, Novak JS, Hara Y, Lee J, Touznik A, Mamchaoui K, Aoki Y, Takeda S, Nagaraju K, Mouly V, Maruyama R, Duddy W, Yokota T. Quantitative Antisense Screening and Optimization for Exon 51 Skipping in Duchenne Muscular Dystrophy. Mol Ther. 2017 Nov 1;25(11):2561-2572. 

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FAQ

DMD研究为什么常常需要人源化模型?

因为外显子跳跃、AON和部分基因治疗策略直接作用于人类DMD序列,人源化模型更适合做体内药效和机制验证。

不同DMD文章之间的推荐阅读有什么意义?

它们分别覆盖疾病机制、疗法演进、模型验证和人源化路线,可帮助读者更完整地理解DMD研发逻辑。

如果项目已经进入候选药物验证阶段,下一步更适合看什么?

建议继续查看DMD人源化模型相关文章和全基因组人源化模型入口,结合具体突变区域筛选更匹配的模型。

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关于赛业生物
赛业生物2006年成立,是国家高新技术企业、专精特新“小巨人”企业,是深耕生物医药源头创新的全球化创新性生物技术平台型企业。公司立足新一代AI驱动的全人抗体药物研发与转化平台,以自主基因编辑技术为核心,打造一站式抗体药物研发体系,依托完备的上下游技术矩阵,全面赋能全球创新药研发。

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