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髓系特异CAR敲入小鼠:FAP-CAR巨噬细胞与肝肺抗纤维化研究

目录

研究背景:CAR巨噬细胞与纤维化

纤维化相关疾病(如肺纤维化和肝纤维化)由于成纤维细胞异常激活和胶原沉积,导致组织结构破坏和器官功能衰竭,目前临床上仍缺乏有效的靶向治疗手段。近年来,靶向肿瘤微环境的CAR免疫细胞治疗为实体瘤和纤维化疾病提供了新的治疗思路,其中以成纤维细胞活化蛋白(FAP)为靶点的CAR巨噬细胞(CAR-M)显示出独特优势,但其制备仍依赖体外病毒转导,限制了临床转化。

近日,沈阳医学院附属中心医院夏书月团队联合鲲石生物尹秀山团队、301医院张硌团队(第一作者为王敏、张耀扬、朱芩瑶)在Molecular Therapy杂志上发表了Myeloid lineage CAR knock-in mice enable allogeneic immunotherapy for liver and lung fibrosis的文章。该研究创新性地构建了一种可在体内直接产生CAR巨噬细胞的小鼠模型,并系统评估了其在肺纤维化和肝纤维化治疗中的疗效。

髓系CAR敲入小鼠抗纤维化研究原图1

图片来源:《Molecular Therapy》

研究材料与方法

本研究体内实验核心模型为赛业生物构建的Rosa26-LSL-FAP-CAR条件性敲入小鼠(CARflox)及其配套的Lyz2-Cre小鼠。研究人员通过将CARflox小鼠与Lyz2-Cre小鼠杂交,获得了FAP-CARM小鼠,在骨髓来源单核细胞、巨噬细胞及粒细胞中实现FAP-CAR的特异性表达。

体外实验方面,研究人员使用RAW264.7巨噬细胞系、小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDM)、成纤维细胞系L929等,并利用腺病毒Ad5f35-FAP-CAR进行对照验证。动物模型包括博来霉素(BLM)诱导的肺纤维化模型和DDC诱导的肝纤维化模型。

本研究综合采用了多种先进的分子与细胞技术,包括小鼠基因敲入、Cre-loxP条件性基因激活体系、腺病毒转导、流式细胞术、Western blot、实时荧光定量PCR、免疫荧光、免疫组化、Masson染色及羟脯氨酸(HYP)定量等技术手段,用于系统评估FAP-CAR在巨噬细胞中的表达及其抗纤维化功能。

技术路线

01

验证FAP-CAR巨噬细胞(FAP-CAR-Ms)体外对FAP阳性(FAP+)细胞的靶向吞噬和杀伤能力。

02

评估FAP-CAR-Ms移植治疗博来霉素(BLM)诱导肺纤维化和DDC诱导肝纤维化小鼠模型的体内抗纤维化效果。

03

利用Cre/LoxP策略生成骨髓特异性表达FAP-CAR的转基因(CARM)小鼠,并验证其固有抗纤维化特性。

04

验证FAP-CARM小鼠巨噬细胞移植或直接全血输注在减轻受体小鼠纤维化中的治疗潜力。

研究结果

研究人员首先验证了FAP-CAR巨噬细胞在体外可特异性识别并吞噬FAP阳性的成纤维细胞,显示出明显的靶向清除能力(图1)。

髓系CAR敲入小鼠抗纤维化研究原图2

图1 体外构建并验证靶向FAP的CAR-M细胞[1]

在体内,赛业构建的FAP-CARM小鼠来源的巨噬细胞(FAP-CARM-BMDMs)在肺和肝纤维化模型中表现出显著的抗纤维化作用。将 FAP-CARM-BMDMs静脉输注至纤维化小鼠后,肺组织损伤和胶原沉积明显减少,FAP阳性成纤维细胞显著下降;在肝纤维化模型中,小鼠体重下降减轻,肝脏肿大及血清ALT、胆红素和羟脯氨酸水平明显降低,同时组织学和免疫荧光结果显示FAP与α-SMA表达被明显抑制,表明CAR巨噬细胞能够有效缓解肺和肝纤维化(图2)。

髓系CAR敲入小鼠抗纤维化研究原图3

图2 FAP-CARM小鼠来源的巨噬细胞移植缓解肺和肝纤维化[1]

FAP-CARM小鼠的外周血中存在大量表达CAR的单核细胞和巨噬细胞,将其全血直接输注至肺和肝纤维化小鼠后,同样显著减轻了纤维化程度。受体小鼠肺和肝组织的结构明显改善,炎症细胞浸润和胶原沉积减少,FAP和α-SMA表达显著下降,且CAR阳性细胞可在病变组织中与巨噬细胞共定位,说明通过活体供血即可获得具有治疗活性的CAR免疫细胞用于抗纤维化治疗(图3)。

髓系CAR敲入小鼠抗纤维化研究原图4

图3 FAP-CARM小鼠全血输注缓解肺和肝纤维化[1]

研究结论

该研究首次证明,通过Rosa26-LSL-FAP-CAR×Lyz2-Cre体系,可以在体内直接生成具有治疗功能的CAR巨噬细胞,为纤维化疾病提供了一种全新的细胞治疗模式。这一模型不仅避免了传统CAR细胞体外改造的复杂流程,也为CAR-M在慢性疾病中的长期应用提供了可靠工具。

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参考资料

[1]Wang, M., Zhang, Y., Zhu, Q., Guan, L., Xun, Y., Liu, Y., Liu, Y., Hao, Y., Liu, S., Li, H., et al. Myeloid lineage CAR knock-in mice enable allogeneic immunotherapy for liver and lung fibrosis. Molecular Therapy. https://doi.org/10.1016/j.ymthe.2026.01.027.

关于 iCyagen 科研 AI 平台

iCyagen 可作为科研信息检索和研究问题梳理的辅助入口,帮助研究者整理基因、疾病与模型相关资料。

围绕本文的FAP-CAR髓系表达与抗纤维化研究,可结合iCyagen梳理Cre-loxP体系、目标细胞及肺/肝纤维化检测终点等问题。具体模型选择、实验条件和研究结论仍需结合原始文献及验证数据核实。

准备开展髓系细胞功能或条件性CAR表达研究?结合目标细胞、构建策略和检测终点,讨论模型方案。

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CAR-MFAPCre工具鼠纤维化

FAQ

为什么研究使用Rosa26-LSL-FAP-CAR与Lyz2-Cre配套体系?

原文介绍通过杂交获得FAP-CARM小鼠,在骨髓来源单核细胞、巨噬细胞及粒细胞中实现FAP-CAR表达。

该研究采用哪些抗纤维化验证方式?

体外验证FAP阳性细胞清除,体内结合巨噬细胞移植及全血输注,在BLM肺纤维化和DDC肝纤维化模型中检测病理与相关指标。

小鼠实验结果是否意味着可直接用于患者?

不能直接推导。原稿为动物与细胞研究,其疗效观察应在具体模型、给药与检测条件下解释。