心力衰竭(HF)是各类心血管疾病终末期表现,已成为全球重大公共卫生负担。根据左心室射血分数的不同,心力衰竭可分为射血分数降低的心衰(HFrEF)、射血分数轻度降低的心衰和射血分数保留的心衰三类。其中,HFrEF以收缩功能受损和心室重构为特征,伴随着心肌细胞肥大、胎儿基因重新激活和纤维化等病理变化。然而,驱动HFrEF病理性肥大和重构的分子机制仍不明确。
Bclaf1(B细胞淋巴瘤2相关转录因子1)最初被鉴定为凋亡调控蛋白,参与DNA损伤修复、pre-mRNA剪接、自噬和缺血再灌注损伤等生物学过程。此前人们发现,Bclaf1在心脏缺血/再灌注期间加剧心肌细胞凋亡,表明其与心脏疾病有关,但其在HFrEF发病机制中的作用仍不清楚。pre-mRNA剪接是一种关键的转录后调控机制,深刻影响了钙信号、心脏功能和纤维化。那么,Bclaf1介导的剪接在HFrEF进展过程中是否发挥作用?
为了回答这一问题,哈尔滨医科大学药学院潘振伟教授、吕延杰教授、杨宝峰院士等领导的研究团队深入解析了Bclaf1在HFrEF发病机制中的作用,破译了与pre-mRNA剪接相关的潜在机制,并将结果发表在《Nature Communications》上。这项研究将Bclaf1/Srsf2/Hand2剪接轴定义为HFrEF的关键驱动因素,为心力衰竭的治疗带来了新靶点。
(https://doi.org/10.1038/s41467-026-75125-2)
研究材料与方法
在这项研究中,研究人员采用主动脉缩窄术(TAC)构建小鼠压力负荷心衰模型,并在体外使用血管紧张素II(AngII)刺激新生小鼠心室肌细胞(NMVC)诱导心肌肥大。他们构建了心肌特异性的Bclaf1过表达小鼠和Bclaf1条件敲除小鼠↗(由赛业生物↗提供),并利用腺相关病毒载体↗(由赛业生物提供)来实现Bclaf1和Hand2的心肌特异性敲降。他们利用细胞核RNA测序来筛选Bclaf1下游靶基因,通过免疫共沉淀来验证蛋白质相互作用,并利用CLIP-qPCR来检测Bclaf1与Hand2 pre-mRNA的结合。
技术路线
评估心衰患者、小鼠心衰模型和应激心肌细胞中的Bclaf1表达
通过心脏特异性Bclaf1过表达和敲除模型,探究其对心脏重构的影响
通过RNA测序等一系列实验来分析Bclaf1调控HFrEF的分子机制
利用靶向Bclaf1和Hand2的AAV9病毒载体来评估其治疗潜力
研究结果
Bclaf1在人类衰竭心肌、小鼠心衰模型和应激心肌细胞中上调
为了探究Bclaf1在HFrEF中的作用,研究人员首先评估了HF患者及非HF对照心脏组织中Bclaf1的表达。与对照相比,HF患者心肌组织中Bclaf1 mRNA和蛋白质水平显著升高。在TAC术后10周,小鼠出现严重的心脏功能损伤,且肥厚标志物β-MHC显著上调。重要的是,TAC小鼠心肌中的Bclaf1表达在转录和翻译水平均显著上调。利用AngII刺激新生小鼠心肌细胞后,Bclaf1 mRNA和蛋白质水平均显著升高。这些结果显示,Bclaf1在人类衰竭心肌、小鼠心力衰竭模型和应激心肌细胞中呈现出一致上调,表明Bclaf1在HFrEF发病机制中发挥潜在作用。
心脏特异性Bclaf1过表达诱导病理性肥大
为了确定Bclaf1在衰竭心脏中的表达升高是否会直接导致心脏病理,研究人员生成了心肌细胞特异性的Bclaf1转基因小鼠(Bclaf1-TG,由赛业生物提供)。与野生型(WT)小鼠相比,Bclaf1-TG小鼠自出生后11周起死亡,14周存活率显著降低(图1)。超声心动图分析显示,Bclaf1-TG小鼠存在严重的心脏功能障碍,具体表现为射血分数(EF%)和缩短分数(FS%)显著降低、心室扩张和室壁变薄;形态学评估显示心脏显著增大,心脏重量/体重比(HW/BW)增加(图1)。
组织学分析显示,Bclaf1-TG心脏的心肌细胞横截面积增加,间质纤维化显著增加。纤维化相关标志物(Col1a1、Col3a1、Tgfb1和Acta2)表达上调,肥厚标志物心房利钠肽(ANP)和β-MHC表达也显著上调。将Bclaf1过表达质粒(赛业生物提供)导入原代心肌细胞后,同样观察到肥大表型和肥厚基因表达上调。这些结果表明心脏特异性Bclaf1过表达可诱导严重的心肌肥大。
图1 心脏特异性Bclaf1过表达会加剧心肌肥厚[1]
心脏特异性Bclaf1敲除缓解TAC诱导的心力衰竭
接下来,研究人员构建了心肌细胞特异性的Bclaf1基因敲除小鼠(Bclaf1-cKO,由赛业生物提供)。在TAC术后10周,与WT小鼠相比,Bclaf1-cKO小鼠的存活率显著提高。重要的是,Bclaf1缺失保留了TAC小鼠的心脏功能,具体表现为EF%和FS%升高,心室肥厚、扩张与间质纤维化明显减轻,肥厚标志物ANP和β-MHC表达显著下调。在体外,利用siRNA沉默Bclaf1可以逆转AngII诱导的心肌细胞肥大。这些结果表明,Bclaf1的敲除或敲降可缓解压力负荷或AngII诱导的心衰表型。
Bclaf1通过促进Hand2 pre-mRNA剪接驱动心力衰竭
之后,研究人员深入探究了Bclaf1调控HFrEF的分子机制。免疫荧光染色的结果显示,TAC小鼠心肌细胞中的Bclaf1强度显著升高,特别是在细胞核中。在对WT和Bclaf1-TG小鼠的心肌细胞进行细胞核RNA测序后,他们发现差异基因主要集中在心肌肥厚通路,其中Hand2在Bclaf1-TG心脏中表现出最明显的上调,它是心肌细胞肥大的关键转录调控因子。
考虑到Bclaf1参与mRNA前体的剪接,他们分析了Bclaf1是否通过pre-mRNA剪接调节Hand2的表达。与WT小鼠相比,Bclaf1-TG小鼠的Hand2总mRNA和成熟mRNA水平显著增加,而pre-mRNA水平显著降低。CLIP-qPCR分析证实,Bclaf1与Hand2前体mRNA第2外显子的TGA下游区域有很强的结合亲和力(图2)。利用模拟内源性Hand2结构的剪接报告基因,他们发现Bclaf1过表达提高了Hand2总mRNA和成熟mRNA水平的水平,并降低了pre-mRNA的水平。加入剪接抑制剂PLAB可以完全逆转Bclaf1介导的Hand2成熟mRNA水平升高(图2)。这些结果表明,Bclaf1作为剪接调节因子,与Hand2 pre-mRNA特异性结合并提高其剪接效率,最终提高Hand2蛋白水平。
图2 Bclaf1上调Hand2 mRNA的剪接成熟[1]
为了阐明Bclaf1如何调节Hand2剪接,研究人员通过质谱分析鉴定了心肌细胞中与Bclaf1相互作用的蛋白质。在筛选出40个RNA剪接相关因子后,通过与RNA结合蛋白质数据库交叉比对,他们将分析重点放在剪接因子Srsf2上。免疫共沉淀实验证实,Bclaf1与Srsf2在心肌细胞内存在直接相互作用。Bclaf1过表达提高了剪接效率,但同步敲降Srsf2则消除了这些影响。重要的是,Srsf2缺失消除了Bclaf1诱导的Hand2蛋白上调。这些数据证实,Bclaf1需要招募Srsf2形成复合物,才能完成对Hand2 pre-mRNA的高效剪接。
抑制Bclaf1或Hand2可挽救压力负荷诱导的HFrEF
为了评估Bclaf1抑制的治疗潜力,研究人员用腺相关病毒载体(AAV9-Bclaf1-KD,由赛业生物提供)来实现小鼠心脏特异性Bclaf1部分敲降。在TAC术后8周给药,他们发现TAC小鼠的存活率提高,更重要的是心脏功能显著改善。经过AAV9-Bclaf1-KD处理的TAC小鼠心室体积缩小,间质纤维化减少,且肥厚标志物水平降低。此外,他们还尝试在TAC术后2周给药作为预防性干预措施。结果显示,TAC小鼠的心脏功能同样有了明显改善。这些数据表明,治疗性或预防性Bclaf1敲降可挽救心脏功能障碍并逆转心室重构。
同样,他们还验证了Hand2敲降是否能逆转压力负荷诱导的HfrEF。向TAC小鼠注射AAV9-shHand2(由赛业生物提供),能够显著改善小鼠的心脏功能,减轻心脏间质纤维化和心脏扩大,并伴随着纤维化相关标志物和肥厚标志物的下调。在体外沉默原代心肌细胞中的Hand2也消除了AngII诱导的肥厚标志物上调。由此可见,治疗性Hand2敲降可挽救心脏功能障碍并逆转心肌重塑。
研究结论
图3 Bclaf1调控心力衰竭的示意图[1]
这项研究揭示了心力衰竭的关键驱动因素Bclaf1。Bclaf1通过招募Srsf2促进Hand2 pre-mRNA剪接,提高成熟Hand2水平,引发不适应性重构,进而诱发心力衰竭。抑制Bclaf1或Hand2均可挽救实验性HfrEF模型中的心脏功能和结构(图3)。这些发现表明,Bclaf1/Srsf2/Hand2剪接轴是驱动病理性肥大和HfrEF的基本机制,抑制该通路有望为心力衰竭的治疗提供新机会。
参考文献:
[1]Zhang, Y., Gao, H., lu, Y. et al. Bclaf1 drives heart failure by recruiting Srsf2 to enhance Hand2 pre-mRNA splicing and pathological hypertrophy. Nat Commun (2026). https://doi.org/10.1038/s41467-026-75125-2







