Plin2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Plin2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-20571

品系全称

C57BL/6JCya-Plin2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-11520-Plin2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Plin2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-20571) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
perilipin 2
基因别称
ADPH,Adfp,Adrp
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_007408 | Ensembl: ENSMUST00000000466
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 5
敲除长度
~2.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:87920Homozygotes for null mutations are resistant to diet-induced obesity and hepatic steatosis and may exhibit altered milk composition, vision abnormalities, or small sebaceous glands. Male mice homozygous for a gene trap allele are infertile.
Plin2,也称为 perilipin-2,是一种重要的脂滴相关蛋白。它主要存在于细胞中的脂滴表面,参与调节脂滴的形成、稳定性和脂质的储存与动员。Plin2的表达水平与细胞内甘油三酯(TAG)含量密切相关,并在脂质代谢和能量平衡中发挥重要作用。Plin2的异常表达与多种疾病的发生发展相关,包括肥胖、糖尿病和非酒精性脂肪肝等。近年来,Plin2在细胞代谢、炎症反应和细胞凋亡等生物学过程中发挥的作用逐渐受到关注,为相关疾病的治疗和预防提供了新的思路和策略。

Roberts等人利用一系列CRISPR-Cas9失活筛选,发现了一些影响PLIN2表达和翻译后稳定性的遗传修饰因子,包括调节脂质代谢的基因、泛素化相关的基因、转录相关的基因和线粒体功能相关的基因。此外,他们还发现E3连接酶MARCH6在调节甘油三酯生物合成方面发挥重要作用,进而影响脂滴丰度和PLIN2稳定性[1]。

Tsai等人发现,PLIN2过表达可以保护脂滴免受巨自噬/自噬的降解,而PLIN2缺乏则会增强自噬并减少肝脏中的甘油三酯含量。此外,PLIN2缺陷小鼠表现出对严重内质网应激诱导的肝脂肪变性和肝细胞凋亡的保护作用[2]。

Li等人发现,在高糖环境下,微胶质细胞的脂滴积累是由于脂滴自噬受损造成的。积累的脂滴与微胶质细胞特异性炎症放大器TREM1共定位,导致微胶质细胞中TREM1的积累,进而加重高糖诱导的脂滴自噬损伤,并通过NLRP3炎症小体促进高糖诱导的神经炎症级联反应[3]。

Byrnes等人综述了自噬在肝脏代谢中的治疗调节作用。自噬是一种细胞内溶酶体降解途径,可以重新连接细胞代谢,将分解代谢与合成代谢联系起来,从而维持细胞代谢平衡。自噬在肝脏能量调节中发挥着重要作用,并可能对肝脏代谢产生更广泛的影响。自噬不仅可以选择性地或大量地降解细胞成分或高能量大分子,还可以选择性地调节各种信号蛋白,直接影响代谢酶的表达水平或其上游调节因子[4]。

Huang等人发现,PLIN2基因的SNPs与黔北马山羊的产羔性能相关。他们通过生物信息学分析、DNA测序、RT-qPCR和相关性分析方法,分析了13种物种中PLIN2蛋白的进化关系,检测了PLIN2基因在黔北羊性腺轴中的表达模式,并筛选了与产羔性能相关的分子标记,以指导黔北马山羊的育种工作[5]。

Wu等人发现,PLIN2介导的适度脂质水解对胚胎干细胞(ESC)的多能性至关重要。在退出多能性时,脂滴相关蛋白Plin2被Hsc70识别并通过伴侣介导的自噬途径降解,以促进脂滴动员。增强脂质水解会促进多能性退出,而ATGL抑制则会恢复多能性。此外,过度脂质水解会导致脂质组重塑,包括心磷脂和磷脂酰乙醇胺的减少,从而触发线粒体嵴和脂肪酸氧化的缺陷,导致乙酰辅酶A和组蛋白乙酰化的减少[6]。

Yue等人发现,PLIN2基因的SNPs与中国地方牛的生长性状相关。他们通过DNA测序和PCR-SSCP方法,在820个来自四个中国地方牛品种的个体中发现了五个新的单核苷酸多态性(SNPs)。此外,他们还发现了五个常见的单倍型,其中最常见的单倍型(GCGCG)的频率为69.0%。这些SNPs与南洋种群6、12、18和24个月的生长性状相关,并在体重和胸围方面发现了显著的相关性[7]。

Zhang等人发现,酒精性Setdb1抑制通过增强Plin2的表达促进小鼠的肝脂肪变性。他们发现,在酒精喂养小鼠的肝脏中,Setdb1的表达下调。Setdb1敲低促进了AML12肝细胞中的脂质积累。同时,肝细胞特异性Setdb1敲除(Setdb1-HKO)小鼠表现出明显的肝脏脂质积累。过表达Setdb1可以缓解Setdb1-HKO和酒精饮食喂养小鼠的肝脂肪变性。Setdb1的下调通过抑制H3K9me3介导的染色质沉默,促进了Plin2 mRNA的表达,而Plin2作为脂滴表面的关键膜相关蛋白,可以维持脂滴的稳定性并抑制脂酶降解[8]。

Robichaud等人利用质谱法在巨噬细胞泡沫细胞脂滴蛋白组中鉴定了脂滴自噬因子。他们发现,除了结构蛋白(如PLIN2)、代谢酶(如ACSL)和中性脂肪酶(如PNPLA2)外,还有与泛素化机制(如AUP1)和自噬(如HMGB、YWHA/14-3-3蛋白)相关的蛋白。他们还发现,敲低一些基因,包括Hmgb1、Hmgb2、Hspa5和Scarb2,会显著降低胆固醇外流。此外,选择性自噬受体(SARs)SQSTM1/p62、NBR1和OPTN定位于脂滴,表明它们在脂滴自噬中发挥作用[9]。

Doncheva等人发现,在禁食的Plin2-null小鼠中,肝脂滴形态和脂质代谢发生了改变。Plin2-null小鼠与Plin2+/+小鼠相比,无论饮食模式如何,其体重、代谢表型、葡萄糖耐受性、循环甘油三酯和总胆固醇水平都相似。然而,禁食的Plin2-null小鼠与Plin2+/+小鼠相比,储存的肝甘油三酯水平较低。禁食的Plin2-null小鼠与Plin2+/+小鼠相比,储存的肝脂滴较少但较大。详细的肝脂质分析显示,禁食的Plin2-null小鼠与Plin2+/+小鼠相比,积累的甘油三酯种类明显减少,而胆固醇酯和磷脂酰胆碱增加。RNA-Seq分析显示,禁食的Plin2+/+和Plin2-null小鼠之间肝基因表达存在微小差异,而禁食的Plin2+/+和Plin2-null小鼠之间肝基因表达存在显著差异[10]。

综上所述,PLIN2在调节脂滴形成、稳定性和脂质代谢中发挥重要作用。PLIN2的表达和功能异常与多种疾病的发生发展相关,包括肥胖、糖尿病和非酒精性脂肪肝等。PLIN2的研究有助于深入理解脂滴生物学和脂质代谢的调控机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Roberts, Melissa A, Deol, Kirandeep K, Mathiowetz, Alyssa J, Faghri, Faraz, Olzmann, James A. 2023. Parallel CRISPR-Cas9 screens identify mechanisms of PLIN2 and lipid droplet regulation. In Developmental cell, 58, 1782-1800.e10. doi:10.1016/j.devcel.2023.07.001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37494933/
2. Tsai, Tsung-Huang, Chen, Elaine, Li, Lan, Chan, Lawrence, Chang, Benny Hung-Junn. 2017. The constitutive lipid droplet protein PLIN2 regulates autophagy in liver. In Autophagy, 13, 1130-1144. doi:10.1080/15548627.2017.1319544. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28548876/
3. Li, Qing, Zhao, Yujing, Guo, Hongyan, Wang, Nan, Wang, Qiang. 2023. Impaired lipophagy induced-microglial lipid droplets accumulation contributes to the buildup of TREM1 in diabetes-associated cognitive impairment. In Autophagy, 19, 2639-2656. doi:10.1080/15548627.2023.2213984. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37204119/
4. Byrnes, Katherine, Blessinger, Sophia, Bailey, Niani Tiaye, Liu, Gang, Khambu, Bilon. 2021. Therapeutic regulation of autophagy in hepatic metabolism. In Acta pharmaceutica Sinica. B, 12, 33-49. doi:10.1016/j.apsb.2021.07.021. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35127371/
5. Huang, Jiajin, Chen, Xiang, Dai, Lingang, Xiao, Meimei, Ruan, Yong. 2022. Association analysis of PLIN2 gene polymorphisms and lambing performance in Qianbei Ma goats. In Reproduction in domestic animals = Zuchthygiene, 58, 253-262. doi:10.1111/rda.14282. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36254397/
6. Wu, Yi, Chen, Keshi, Li, Linpeng, Chan, Wai-Yee, Liu, Xingguo. 2022. Plin2-mediated lipid droplet mobilization accelerates exit from pluripotency by lipidomic remodeling and histone acetylation. In Cell death and differentiation, 29, 2316-2331. doi:10.1038/s41418-022-01018-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35614132/
7. Yue, Binglin, Wu, Jiyao, Shao, Simin, Qi, Xingshan, Chen, Hong. 2019. Polymorphism in PLIN2 gene and its association with growth traits in Chinese native cattle. In Animal biotechnology, 31, 142-147. doi:10.1080/10495398.2018.1555166. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30717637/
8. Zhang, Yi, Li, Yanhui, Liu, Yang, Qu, Lihui, Wang, Zhigang. 2023. Alcoholic Setdb1 suppression promotes hepatosteatosis in mice by strengthening Plin2. In Metabolism: clinical and experimental, 146, 155656. doi:10.1016/j.metabol.2023.155656. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37419179/
9. Robichaud, Sabrina, Fairman, Garrett, Vijithakumar, Viyashini, Baetz, Kristin, Ouimet, Mireille. 2021. Identification of novel lipid droplet factors that regulate lipophagy and cholesterol efflux in macrophage foam cells. In Autophagy, 17, 3671-3689. doi:10.1080/15548627.2021.1886839. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33590792/
10. Doncheva, Atanaska I, Li, Yuchuan, Khanal, Prabhat, Kimmel, Alan R, Dalen, Knut Tomas. 2023. Altered hepatic lipid droplet morphology and lipid metabolism in fasted Plin2-null mice. In Journal of lipid research, 64, 100461. doi:10.1016/j.jlr.2023.100461. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37844775/