Srsf10-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Srsf10-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-20499

品系全称

C57BL/6JCya-Srsf10em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-14105-Srsf10-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Srsf10-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-20499) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
serine and arginine-rich splicing factor 10
基因别称
FUSIP2,Fusip1,NSSR1,NSSR2,Nssr,SRrp40,Sfrs13a,Srsf13a,TASR,TASR1,TASR2
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001080387 | Ensembl: ENSMUST00000105853
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1333805Mice homozygous for a null allele exhibit fetal and neonatal lethality associated with edema and cardiac defects.
Srsf10,也称为Serine/arginine-rich splicing factor 10,是一种重要的RNA剪接因子。RNA剪接是基因表达调控的关键步骤,通过选择性剪接,细胞能够从单个基因产生多种不同的mRNA和蛋白质变体,从而增加蛋白质多样性和功能复杂性。Srsf10在组织发育和多种人类疾病中发挥重要作用。

Srsf10在肿瘤免疫学中具有重要作用。研究发现,Srsf10在各种肿瘤中表达上调,与患者的不良预后相关[1]。Srsf10通过促进肿瘤细胞的免疫逃逸,抑制CD8+ T细胞的活性,从而抑制免疫治疗的效果[1]。此外,Srsf10还可以促进M2巨噬细胞的极化,进一步抑制T细胞的功能,导致免疫抑制的肿瘤微环境[1]。

Srsf10在肿瘤代谢中也发挥重要作用。研究发现,Srsf10可以促进肿瘤细胞的糖酵解,增加乳酸的产生[1]。乳酸可以促进M2巨噬细胞的极化,抑制CD8+ T细胞的活性[1]。此外,乳酸还可以诱导组蛋白乳酸化,进一步上调Srsf10的表达[1]。

Srsf10在肿瘤发生和发展中也发挥重要作用。研究发现,Srsf10可以促进肝癌细胞的增殖、细胞周期和侵袭[4]。Srsf10通过促进CDC25A的剪接,稳定CDC25A蛋白,从而促进肝癌的发生和发展[4]。此外,Srsf10还可以抑制p53蛋白的表达,进一步促进肝癌的发生和发展[5]。

Srsf10在生殖细胞发育中也发挥重要作用。研究发现,Srsf10对于精原干细胞的扩张和分化至关重要[3]。在Srsf10缺失的条件下,精原干细胞的扩张和分化受到抑制,导致男性不育[3]。此外,Srsf10还可以直接结合数千个基因,并调节它们的剪接,从而影响精原干细胞的发育[3]。

Srsf10在RNA剪接的调控中也发挥重要作用。研究发现,Srsf10可以与YTHDC1竞争性结合,调节mRNA的剪接[2]。Srsf10还可以调节SMN2基因的剪接,影响SMN蛋白的表达,从而影响脊髓性肌萎缩症的发生[6]。

Srsf10在胶质瘤中也具有重要作用。研究发现,Srsf10在胶质瘤中表达上调,与患者的不良预后相关[7]。Srsf10可以抑制胶质瘤细胞的增殖,诱导细胞周期阻滞,并调节BCLAF1的剪接[7]。

综上所述,Srsf10是一种重要的RNA剪接因子,在肿瘤免疫学、肿瘤代谢、肿瘤发生和发展、生殖细胞发育和RNA剪接的调控中发挥重要作用。Srsf10的研究有助于深入理解RNA剪接的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Cai, Jialiang, Song, Lina, Zhang, Feng, Fan, Jia, Dai, Zhi. 2024. Targeting SRSF10 might inhibit M2 macrophage polarization and potentiate anti-PD-1 therapy in hepatocellular carcinoma. In Cancer communications (London, England), 44, 1231-1260. doi:10.1002/cac2.12607. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39223929/
2. Xiao, Wen, Adhikari, Samir, Dahal, Ujwal, Zhao, Yong-Liang, Yang, Yun-Gui. 2016. Nuclear m(6)A Reader YTHDC1 Regulates mRNA Splicing. In Molecular cell, 61, 507-519. doi:10.1016/j.molcel.2016.01.012. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26876937/
3. Liu, Wenbo, Lu, Xukun, Zhao, Zheng-Hui, Sun, Qing-Yuan, Liu, Jianqiao. 2022. SRSF10 is essential for progenitor spermatogonia expansion by regulating alternative splicing. In eLife, 11, . doi:10.7554/eLife.78211. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36355419/
4. Liu, Xiaoming, Zheng, Yongqiang, Xiao, Mengqing, Liu, Zexian, Cao, Ke. 2022. SRSF10 stabilizes CDC25A by triggering exon 6 skipping to promote hepatocarcinogenesis. In Journal of experimental & clinical cancer research : CR, 41, 353. doi:10.1186/s13046-022-02558-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36539837/
5. Luo, Xiangyuan, Zhang, Zerui, Li, Siwen, Huang, Wenjie, Xia, Limin. 2023. SRSF10 facilitates HCC growth and metastasis by suppressing CD8+T cell infiltration and targeting SRSF10 enhances anti-PD-L1 therapy. In International immunopharmacology, 127, 111376. doi:10.1016/j.intimp.2023.111376. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38113691/
6. Frederiksen, Sabrina B, Holm, Lise L, Larsen, Martin R, Krainer, Adrian R, Andresen, Brage S. 2020. Identification of SRSF10 as a regulator of SMN2 ISS-N1. In Human mutation, 42, 246-260. doi:10.1002/humu.24149. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33300159/
7. An, Wenzhe, Yang, Qingqing, Xi, Yunlan, Yu, Shizhu, Zhou, Xuexia. 2023. Identification of SRSF10 as a promising prognostic biomarker with functional significance among SRSFs for glioma. In Life sciences, 338, 122392. doi:10.1016/j.lfs.2023.122392. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38160788/