Hspa4-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Hspa4-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-20347

品系全称

C57BL/6JCya-Hspa4em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-15525-Hspa4-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Hspa4-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-20347) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
heat shock protein 4
基因别称
70kDa,APG-2,Hsp110,Hsp70RY,mKIAA4025
染色体号
Chr 11 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008300 | Ensembl: ENSMUST00000020630
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1342292Mice homozygous for a knock-out allele exhibit age-dependent neurofibrillary tangles and tau deposits, impaired contextual conditioning, and impaired bar grasping.
HSPA4,也称为热休克蛋白A4,是热休克蛋白110家族(HSP110)的成员,作为HSP70分子伴侣的核苷酸交换因子(NEF),在蛋白质折叠和细胞应激反应中发挥着重要作用。HSPA4通过促进HSP70的ATP水解循环,帮助细胞维持蛋白质稳态,防止蛋白质错误折叠和聚集。此外,HSPA4还与多种疾病的发生和发展密切相关,包括心脏疾病、黑色素瘤、肝细胞癌、胶质瘤等。

HSPA4在心脏疾病中的作用已被广泛研究。研究发现,在压力过载和心力衰竭的小鼠心脏中,HSPA4的表达上调。为了研究HSPA4在心脏功能中的作用,研究人员构建了Hspa4基因敲除小鼠,发现这些小鼠表现出心脏肥大和纤维化。Hspa4敲除小鼠的心脏重量/体重比值显著增加,肥大和纤维化基因标记物的表达升高,出现向心性肥大,但收缩功能得以保留。在压力过载的情况下,Hspa4敲除小鼠的心脏肥大和重构程度比野生型小鼠更为严重。Hspa4敲除小鼠的心脏肥大与gp130-STAT3、CaMKII和calcineurin-NFAT信号通路的增强激活相关。蛋白质印迹和免疫荧光分析显示,Hspa4敲除小鼠的心脏细胞中泛素化蛋白质的积累显著增加。这些结果表明,Hspa4敲除小鼠的心肌重构是由于伴侣活性受损导致错误折叠蛋白质的积累。进一步分析发现,3.5周龄小鼠心脏中与离子通道、肌肉特异性收缩蛋白和应激反应相关的基因表达谱发生了改变。这些结果表明,Hspa4基因的缺失导致心脏肥大和纤维化,这可能是由于其蛋白质质量控制机制的作用[1]。

HSPA4在黑色素瘤中的作用也引起了广泛关注。研究发现,HSPA4在黑色素瘤中的表达水平显著升高。敲低HSPA4在A-375细胞系中可以抑制肿瘤细胞的生长。ROC曲线分析证实了HSPA4的诊断价值。生存分析显示,HSPA4的高表达与不良预后相关。HSPA4基因变异在3%的黑色素瘤患者中被观察到。五个CpG位点的甲基化水平与黑色素瘤的预后相关。HSPA4与大多数免疫细胞呈负相关。蛋白质相互作用网络显示,HSPA4与DnaJ热休克蛋白家族(Hsp40)成员B1(DNAJB1)和DnaJ热休克蛋白家族(Hsp40)成员B6(DNAJB6)等蛋白质密切相关,DNAJB1的表达水平与HSPA4呈正相关。功能富集分析表明,HSPA4可能参与黑色素瘤肿瘤微环境中的免疫抑制和免疫逃逸。HSPA4可能参与调节肿瘤发展和微环境,这可能是黑色素瘤的潜在诊断和预后标志物[2]。

除了心脏疾病和黑色素瘤,HSPA4在肝细胞癌中也发挥着重要作用。研究发现,HSPA4在肝细胞癌中的表达水平显著升高。高表达HSPA4的患者表现出较差的预后。HSPA4的表达可以准确识别肿瘤组织。HSPA4的遗传变异率为1.3%。在14个DNA甲基化CpG位点中,有7个与肝细胞癌的预后相关。HSPA4与肝细胞癌中的免疫细胞浸润和免疫检查点(PD-1和CTLA-4)呈正相关。KEGG通路富集分析显示,HSPA4与抗原处理和呈递通路密切相关。这些结果表明,HSPA4在肝细胞癌的诊断和预后预测中具有重要价值,可能参与肝细胞癌的发生、进展和免疫调节。因此,HSPA4可能成为肝细胞癌的潜在诊断和预后生物标志物以及治疗靶点[3]。

HSPA4还与胶质瘤的进展相关。研究发现,HSPA4在胶质瘤组织中的表达水平升高,并与肿瘤复发和分级相关。生存分析显示,HSPA4高表达的胶质瘤患者总生存期和疾病无进展生存期较短。在体外,敲低HSPA4可以抑制胶质瘤细胞的增殖,导致细胞周期停滞在G2期并促进细胞凋亡,同时降低迁移能力。在体内,与HSPA4阳性对照组细胞形成的肿瘤相比,HSPA4敲低组的异种移植瘤生长受到显著抑制。基因集富集分析表明,HSPA4与PI3K/Akt信号通路相关。AKT激活剂SC79对细胞增殖和凋亡的调节作用被HSPA4敲低抑制,表明HSPA4能够促进胶质瘤的发展。这些数据表明,HSPA4可能在胶质瘤的进展中发挥重要作用,因此可能成为胶质瘤治疗的潜在靶点[4]。

HSPA4在胚胎肺成熟中也起着重要作用。研究发现,HSPA4和HSPA4L基因缺陷的小鼠胚胎表现出肺发育不良和新生儿死亡。与野生型小鼠胚胎相比,HSPA4/HSPA4L基因缺陷小鼠的肺泡空间减少,间质隔膜增多。间质细胞增多是由于细胞增殖指数增加和细胞凋亡减少。Bcl-2蛋白表达水平的显著升高可能是导致HSPA4/HSPA4L基因缺陷小鼠肺中凋亡过程抑制的原因。糖原积累和肺泡上皮中表面活性蛋白B、前表面活性蛋白C和AQP5表达水平的降低表明,HSPA4/HSPA4L基因缺陷小鼠的肺泡上皮细胞成熟受损。进一步实验表明,HSPA4/HSPA4L基因缺陷小鼠的肺中泛素化蛋白质的积累显著增加,表明伴侣活性受损。这些结果表明,HSPA4和HSPA4L在胚胎肺成熟中协同作用,这对于出生时适应空气呼吸至关重要[5]。

此外,HSPA4的移码突变与胃癌和结直肠癌中的微卫星不稳定性(MSI)相关。研究发现,HSPA4基因在编码序列中存在单核苷酸重复,可能是MSI相关癌症中移码突变的靶点。在公共基因组数据库中,研究人员发现HSPA4基因在两个癌症(一个胃癌和一个结直肠癌)中存在移码突变,而MED13基因在另外两个癌症(一个胃癌和一个结直肠癌)中存在移码突变。这些移码突变可能是导致HSPA4和MED13功能失活的原因,可能是胃癌和结直肠癌中MSI的特征之一[6]。

HSPA4还与银屑病的免疫反应相关。研究发现,银屑病患者中存在显著的PANoptosis信号。PANoptosis是一种新型的细胞死亡形式,通过放大炎症和免疫级联反应参与多种炎症性疾病的发生。多转录组分析和实验验证显示,银屑病患者中存在PANoptosis信号,并且根据PANoptosis水平分为两种不同的模式(非/高)。高PANoptosis相关的组对免疫细胞浸润(如M1巨噬细胞和角质形成细胞)的响应率更高。WGCNA分析显示,S100A12、CYCS、NOD2、STAT1、HSPA4、AIM2和MAPK7等枢纽基因与银屑病的临床表型、PANoptosis信号和免疫反应密切相关。网络药理学分析显示,二硫化钼(DSF)可能是银屑病的候选药物,它通过抗焦亡介导的炎症和增强凋亡进展来改善银屑病症状。PANoptosis及其介导的免疫细胞浸润为银屑病的发病机制和治疗方法研究提供了新的思路[7]。

综上所述,HSPA4是一种重要的热休克蛋白,在多种生物学过程中发挥着重要作用。HSPA4在心脏疾病、黑色素瘤、肝细胞癌、胶质瘤、胚胎肺成熟和银屑病等多种疾病中发挥着重要作用,可能成为这些疾病的潜在诊断和预后生物标志物以及治疗靶点。HSPA4的研究有助于深入理解蛋白质稳态和细胞应激反应的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Mohamed, Belal A, Barakat, Amal Z, Zimmermann, Wolfram-Hubertus, Maier, Lars S, Adham, Ibrahim M. 2012. Targeted disruption of Hspa4 gene leads to cardiac hypertrophy and fibrosis. In Journal of molecular and cellular cardiology, 53, 459-68. doi:10.1016/j.yjmcc.2012.07.014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22884543/
2. Wang, Xudong, Li, Zhiyong, Xu, Jianhong, Niu, Jianrong, Yang, Rongya. 2024. HSPA4 Expression is Correlated with Melanoma Cell Proliferation, Prognosis, and Immune Regulation. In Clinical, cosmetic and investigational dermatology, 17, 2733-2746. doi:10.2147/CCID.S477870. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39629045/
3. Shang, Bing-Bing, Chen, Jun, Wang, Zhi-Guo, Liu, Hui. 2021. Significant correlation between HSPA4 and prognosis and immune regulation in hepatocellular carcinoma. In PeerJ, 9, e12315. doi:10.7717/peerj.12315. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34754620/
4. Yuan, Xi, Sun, Xiangdong, Zhou, Bin, Li, Yikun, Ming, Haolang. 2023. HSPA4 regulated glioma progression via activation of AKT signaling pathway. In Biochemistry and cell biology = Biochimie et biologie cellulaire, 102, 159-168. doi:10.1139/bcb-2022-0321. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37339521/
5. Mohamed, Belal A, Barakat, Amal Z, Held, Torsten, Männer, Jörg, Adham, Ibrahim M. . Respiratory distress and early neonatal lethality in Hspa4l/Hspa4 double-mutant mice. In American journal of respiratory cell and molecular biology, 50, 817-24. doi:10.1165/rcmb.2013-0132OC. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23980576/
6. Jo, Yun Sol, Choi, Mi Ryoung, Song, Sang Yong, Yoo, Nam Jin, Lee, Sug Hyung. 2016. Frameshift Mutations of HSPA4 and MED13 in Gastric and Colorectal Cancers. In Pathology oncology research : POR, 22, 769-72. doi:10.1007/s12253-016-0070-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27129500/
7. Hu, Xi-Min, Zheng, Shengyuan, Zhang, Qi, Yang, Ronghua, Xiong, Kun. 2023. PANoptosis signaling enables broad immune response in psoriasis: From pathogenesis to new therapeutic strategies. In Computational and structural biotechnology journal, 23, 64-76. doi:10.1016/j.csbj.2023.11.049. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38125299/