Arl6ip5-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Arl6ip5-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-20235

品系全称

C57BL/6JCya-Arl6ip5em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-65106-Arl6ip5-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Arl6ip5-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-20235) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ADP-ribosylation factor-like 6 interacting protein 5
基因别称
5930404D22Rik,Aip-5,Gtrap3-18,addiscin
染色体号
Chr 6 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_022992 | Ensembl: ENSMUST00000044681
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~2.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1929501Mice homozygous for a knock-out allele exhibit increased resistance to oxidative stress hypoactivity, enhanced motor coordination and learning, and enhanced spatial working memory.
ARL6IP5,也称为JWA(Jun activation domain-binding protein 1),是一种微管相关蛋白和一种环境响应基因。它在多种生物学过程中发挥重要作用,包括细胞生长、细胞周期、DNA损伤修复、细胞凋亡和细胞信号传导。ARL6IP5的表达水平在多种恶性肿瘤中下调,并与患者的总体生存率相关。作为一种肿瘤抑制因子,ARL6IP5通过抑制多种致癌基因或激活肿瘤抑制基因来抑制肿瘤进展。

在卵巢癌中,ARL6IP5的表达水平与化疗反应显著相关,并是高级别浆液性卵巢癌患者无进展生存期和总生存期的独立预后因子[1]。ARL6IP5过表达降低了细胞增殖、侵袭、迁移、黏附,并增加了细胞凋亡;相反,ARL6IP5敲低则导致相反的结果。ARL6IP5过表达降低了卵巢癌细胞及其顺铂耐药性(CisR)细胞的顺铂耐药性,而ARL6IP5敲低则增加了顺铂耐药性。ARL6IP5过表达抑制了DNA修复蛋白的表达,并增加了促凋亡蛋白的表达;相反,ARL6IP5敲低则导致相反的结果。重组ARL6IP5蛋白(rARL6IP5)在卵巢癌细胞及其顺铂耐药性细胞中具有显著的凋亡效应,其凋亡效应高于顺铂和奥拉帕利。这表明ARL6IP5可能是一种有价值的顺铂耐药性卵巢癌的新型化疗药物。

在帕金森病中,ARL6IP5被证实是一种负性调节铁死亡的因子,能够通过抑制NCOA4介导的铁蛋白吞噬来减轻多巴胺能神经元的损失[2]。在铁死亡相关基因的筛选中,发现铁代谢参与了ARL6IP5依赖性抑制多巴胺能神经元铁死亡的过程。基因操作为ARL6IP5的神经保护作用提供了有力证据,将其神经保护作用与NCOA4介导的铁蛋白吞噬的减弱联系起来。分子对接、共免疫沉淀和免疫荧光研究证实,ARL6IP5通过占据NCOA4的铁蛋白结合位点来减轻多巴胺能神经元的铁死亡。JWA激活化合物JAC4通过提高JWA表达,在细胞和动物帕金森病模型中表现出良好的神经保护作用,为帕金森病的神经保护提供了新的途径。

在骨代谢中,ARL6IP5过表达抑制了成骨细胞中的破骨细胞生成,降低了培养上清液中可溶性RANKL的含量,并增加了RANKL在ER中的保留[3]。此外,ARL6IP5与RANKL结合,并干扰了UAMS-32细胞中的RANKL-OPG复合物。ARL6IP5的NH2端1至36个氨基酸的缺失损害了ARL6IP5与RANKL之间的相互作用,恢复了可溶性RANKL的水平,并恢复了破骨细胞生成的能力。这些发现表明,ARL6IP5是一种抗分解代谢因子,通过结合RANKL并干扰其亚细胞转运在成骨细胞中发挥作用。

在乳腺癌中,全外显子组分析揭示了不同阶段、等级和亚型的乳腺癌中存在不同的基因突变特征[4]。ARL6IP5是乳腺癌发展和预后中可能至关重要的基因之一。此外,一些SNVs在乳腺癌的不同比较组中具有显著不同的频率。蛋白质结构建模揭示了非同义SNVs对蛋白质稳定性、结构和功能的潜在有害影响。基因和SNV水平的突变谱揭示了乳腺癌比较组内不同的模式,并且基因特征与乳腺癌类的预期预后特征相关。

在卵巢癌中,机器学习构建了一个CD8+耗竭T细胞特征,用于预测预后、免疫浸润和药物敏感性[5]。ARL6IP5在卵巢癌组织中下调,并抑制肿瘤细胞增殖。该研究构建了一个新的CD8+耗竭T细胞特征,可以作为预测卵巢癌患者预后、免疫浸润和免疫治疗益处的指标。

在急性淋巴细胞白血病中,JWA基因多态性与急性淋巴细胞白血病相关[6]。尽管没有摘要可用,但这项研究揭示了JWA基因多态性与急性淋巴细胞白血病之间的关系。

在神经毒性方面,JWA通过激活Nrf2来对抗百草枯诱导的神经毒性[7]。百草枯是一种广泛使用的农药,通过损害神经元来导致帕金森病的发生和发展。JWA基因,也称为ARL6IP5,对退化的多巴胺能神经元具有保护作用。然而,JWA在百草枯诱导的神经元损伤中的作用仍然未知。研究结果表明,百草枯处理触发了JWA的上调。JWA表达升高可以挽救活性氧(ROS)的积累,并增加谷胱甘肽(GSH)和谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)水平。进一步的研究揭示了JWA的保护作用主要涉及调节MEK/PI3K-Nrf2轴。

在脂肪生成中,ARL15是一种小GTP酶,其基因位点与2型糖尿病风险增加、脂肪细胞因子水平降低和空腹胰岛素水平升高相关[8]。研究结果表明,内源性ARL15在Golgi中棕榈酰化和定位。脂肪细胞中棕榈酰化缺陷的ARL15过表达导致其重新分布到细胞质中,并轻微降低了某些脂肪生成相关基因的表达。进一步的研究发现,ARL15在分化前阶段主要与Golgi顺面标记共定位,并在分化诱导后转移到其他Golgi区室。最后,共免疫沉淀和质谱分析确定了ARL15的潜在相互作用伙伴,包括ER定位蛋白ARL6IP5。这些结果表明,ARL15可能是一种通过ARL6IP5相互作用调节脂肪细胞分化的棕榈酰化依赖性转运相关调节因子。

综上所述,ARL6IP5是一种重要的微管相关蛋白和环境响应基因,在多种生物学过程中发挥重要作用,包括细胞生长、细胞周期、DNA损伤修复、细胞凋亡和细胞信号传导。ARL6IP5在多种恶性肿瘤中下调,并与患者的总体生存率相关。作为一种肿瘤抑制因子,ARL6IP5通过抑制多种致癌基因或激活肿瘤抑制基因来抑制肿瘤进展。此外,ARL6IP5还在帕金森病、骨代谢、乳腺癌、急性淋巴细胞白血病和神经毒性等方面发挥重要作用。ARL6IP5的研究有助于深入理解其在多种生物学过程中的功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Kim, Ji-Ye, Bahar, Entaz, Lee, Jung-Yun, Yoon, Hyonok, Kim, Hyun-Soo. 2022. ARL6IP5 reduces cisplatin-resistance by suppressing DNA repair and promoting apoptosis pathways in ovarian carcinoma. In Cell death & disease, 13, 239. doi:10.1038/s41419-022-04568-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35293383/
2. Zhao, Xinxin, Kang, Zhengwei, Han, Ruixue, Cao, Lei, Lu, Ming. 2024. JWA binding to NCOA4 alleviates degeneration in dopaminergic neurons through suppression of ferritinophagy in Parkinson's disease. In Redox biology, 73, 103190. doi:10.1016/j.redox.2024.103190. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38744191/
3. Wu, Yu, Wang, Miaomiao, Peng, Ying, Deng, Lili, Fu, Qiang. 2015. Overexpression of Arl6ip5 in osteoblast regulates RANKL subcellualr localization. In Biochemical and biophysical research communications, 464, 1275-1281. doi:10.1016/j.bbrc.2015.07.119. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26220341/
4. Li, You, Wang, Xiaosheng, Vural, Suleyman, Cowan, Kenneth H, Guda, Chittibabu. 2015. Exome analysis reveals differentially mutated gene signatures of stage, grade and subtype in breast cancers. In PloS one, 10, e0119383. doi:10.1371/journal.pone.0119383. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25803781/
5. Chen, Rujun, Zheng, Yicai, Fei, Chen, Ye, Jun, Fei, He. 2024. Machine learning developed a CD8+ exhausted T cells signature for predicting prognosis, immune infiltration and drug sensitivity in ovarian cancer. In Scientific reports, 14, 5794. doi:10.1038/s41598-024-55919-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38461331/
6. Dai, Yonggang, Wu, Meiying, Zhuang, Hua. 2019. Correlation between JWA gene polymorphism and acute lymphoblastic leukemia. In Minerva medica, 112, 534-536. doi:10.23736/S0026-4806.19.06305-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31726816/
7. Zhao, X, Wang, R, Xiong, J, Xu, J, Zhou, J. 2017. JWA antagonizes paraquat-induced neurotoxicity via activation of Nrf2. In Toxicology letters, 277, 32-40. doi:10.1016/j.toxlet.2017.04.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28428137/
8. Wu, Yixing, Bai, Ying, McEwan, David G, Aravani, Dimitra, Cox, Roger D. 2021. Palmitoylated small GTPase ARL15 is translocated within Golgi network during adipogenesis. In Biology open, 10, . doi:10.1242/bio.058420. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34779483/