Suv39h1-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Suv39h1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-20233

品系全称

C57BL/6JCya-Suv39h1em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-20937-Suv39h1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Suv39h1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-20233) were purchased from Cyagen.
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基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
suppressor of variegation 3-9 1
基因别称
DXHXS7466e,H3-K9-HMTase 1,KMT1A,mIS6
染色体号
Chr X (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_011514 | Ensembl: ENSMUST00000115638
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~2.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1099440About one third of mice either heterozygous or homozygous for a reporter/null allele develop late-onset B cell lymphomas.
SUV39H1,也称为Suppressor of variegation 3-9 homologue 1,是一种重要的组蛋白H3赖氨酸9(H3K9)甲基转移酶。H3K9甲基化是组蛋白修饰的一种形式,它参与了异染色质的形成和基因的转录沉默。SUV39H1和其同源物SUV39H2在维持染色质结构和基因表达调控中发挥着重要作用。这两种酶具有一个催化活性的SET结构域和一个染色质域,后者能够结合H3K9me2/3并参与酶的靶向和调控。它们识别一个RKST基序,并在其两侧有额外的残基,SUV39H1主要是K4,而SUV39H2主要是G12。两种酶都能够甲基化不同的非组蛋白,包括RAG2、DOT1L、SET8和HupB(SUV39H1)以及LSD1(SUV39H2)。这两种酶在胚胎细胞中表达,并在成人体内广泛表达。SUV39H1几乎没有组织特异性,除了胸腺,而SUV39H2在脑、睾丸和胸腺中表达更高。这两种酶与癌症相关,根据肿瘤类型的不同,它们可能具有致癌或肿瘤抑制的作用。此外,SUV39H2在早期神经发育中具有作用[9]。

SUV39H1在肿瘤免疫治疗中的应用引起了广泛关注。研究发现,通过表观遗传学方法调控H3K9甲基化可以优化CAR-T细胞在实体瘤中的长期功能持久性,从而提高治疗效率。在41BB-CAR T细胞中,SUV39H1的失活增强了T细胞干细胞/记忆分化,并增加了T细胞的长期持久性。这种表观遗传学调控使得T细胞能够在肿瘤浸润环境中重新编程为自我更新的干细胞样群体,并在所有T细胞亚群中减少功能障碍基因的表达。因此,通过SUV39H1对H3K9甲基化的表观遗传学调控可以优化BBz-CAR T细胞的长期功能持久性,限制复发,并提供对肿瘤复发的保护。这些发现为实体瘤的过继细胞疗法提供了新的思路[1]。

此外,SUV39H1在组织分化和维持中也发挥着重要作用。H3K9甲基化在异染色质形成中起着关键作用,它确保了转座元件、卫星重复序列和基因的转录沉默。SUV39H1等H3K9甲基转移酶在哺乳动物中高度保守,并在确保组织分化和维持过程中的转录稳态中发挥着重要作用。研究发现,SUV39H1在哺乳动物的组织分化中具有独特的和冗余的作用,它们通过限制转录因子与谱系特异性启动子和增强子元件的结合来维持组织完整性[2]。

SUV39H1的抑制还能够增强转基因基因的表达。研究发现,通过shRNA技术抑制SUV39H1基因的表达可以显著增加转基因Bcap-37细胞中IFNα-2b基因的表达。此外,抑制SUV39H1基因的表达还导致DNMT1、HDAC1和G9a基因的表达显著降低,而HAT1基因的表达显著增加。这些结果表明,抑制SUV39H1基因的表达可以在细胞水平上促进外源转基因基因的表达[3]。

此外,SUV39H1的甲基化活性还与cGAS激活和抗肿瘤免疫相关。研究发现,甲硫氨酸剥夺通过阻断SUV39H1的甲基化来增强cGAS活性,从而激活I型干扰素信号通路并发挥抗肿瘤免疫作用。临床研究表明,cGAS的甲基化与人类癌症的不良预后相关。这表明,营养应激可以通过可逆的甲基化来促进cGAS的激活,为癌症治疗提供了潜在的治疗策略[4]。

SUV39H1在异染色质形成中也发挥着重要作用。研究发现,锌指蛋白ZNF512和ZNF512B能够通过直接结合DNA来特异性定位于着丝粒区域。ZNF512和ZNF512B能够通过直接招募SUV39H1和SUV39H2来催化H3K9甲基化,从而在着丝粒区域形成异染色质。这些发现解答了两个长期存在的问题:构成性异染色质是如何形成的,以及为什么不同物种的着丝粒区域被同一套保守的机制所靶向[5]。

SUV39H1在癌症细胞中的DNA复制过程中也发挥着重要作用。研究发现,FBXO44能够结合H3K9me3修饰的核小体,并招募SUV39H1、CRL4和Mi-2/NuRD来转录沉默重复元件。FBXO44/SUV39H1的抑制能够重新激活重复元件,导致DNA复制应激,并刺激MAVS/STING抗病毒途径和干扰素信号通路,从而降低肿瘤的发生率和增强免疫治疗反应。FBXO44的表达与复制应激、抗病毒途径和干扰素信号通路呈负相关,而FBXO44的免疫基因特征与癌症患者中免疫治疗反应的改善相关[6]。

SUV39H1在心脏缺血再灌注损伤中也发挥着重要作用。研究发现,在心脏缺血再灌注损伤过程中,内皮细胞中的H3K9me3水平显著增加。通过沉默SUV39H1基因或过表达其去甲基化酶Kdm4d可以消除H3K9甲基化,从而减轻心脏功能障碍和病理性重塑。此外,H3K9me3结合在缺氧条件下显著增加,抑制H3K9me3可以挽救内皮细胞的功能。这些结果表明,SUV39H1是心脏缺血再灌注损伤后病理性重塑的潜在治疗靶点[7]。

SUV39H1在胶质母细胞瘤中也具有重要的预后意义。研究发现,SUV39H1在胶质母细胞瘤中显著过表达,并与不良预后相关。SUV39H1相关的差异表达基因在免疫和炎症相关通路中富集,并且SUV39H1表达水平高的患者组中五种免疫细胞的浸润丰度显著不同。通过单细胞RNA测序分析发现,SUV39H1表达水平高的患者组中GSCs中的CRYAB-GSC和PTPRZ1-GSC之间存在强烈的相互作用。体外实验证实,敲低SUV39H1可以抑制U87和U251胶质母细胞瘤细胞的活力和增殖,并下调CSC1589和TS576 GSC系中干细胞标志物的表达。这些结果表明,SUV39H1可能是一个胶质母细胞瘤的预后预测因子和免疫治疗靶点[8]。

综上所述,SUV39H1是一种重要的组蛋白H3赖氨酸9甲基转移酶,在维持染色质结构和基因表达调控中发挥着重要作用。SUV39H1在肿瘤免疫治疗、组织分化和维持、DNA复制、心脏缺血再灌注损伤和胶质母细胞瘤等领域中具有广泛的应用和研究价值。通过深入了解SUV39H1的功能和调控机制,可以为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. López-Cobo, Sheila, Fuentealba, Jaime R, Gueguen, Paul, Saitakis, Michael, Amigorena, Sebastian. . SUV39H1 Ablation Enhances Long-term CAR T Function in Solid Tumors. In Cancer discovery, 14, 120-141. doi:10.1158/2159-8290.CD-22-1350. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37934001/
2. Padeken, Jan, Methot, Stephen P, Gasser, Susan M. 2022. Establishment of H3K9-methylated heterochromatin and its functions in tissue differentiation and maintenance. In Nature reviews. Molecular cell biology, 23, 623-640. doi:10.1038/s41580-022-00483-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35562425/
3. Xie, Liangliang, Lin, Lang, Huang, Shihai, Shi, Deshun, Li, Xiangping. 2018. Inhibition of Suv39H1 enhances transgenic IFNα-2b gene expression in Bcap-37 cells. In Animal biotechnology, 30, 358-365. doi:10.1080/10495398.2018.1500373. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30179066/
4. Fang, Lan, Hao, Yun, Yu, Haihong, Qin, Huan-Long, Wang, Ping. 2023. Methionine restriction promotes cGAS activation and chromatin untethering through demethylation to enhance antitumor immunity. In Cancer cell, 41, 1118-1133.e12. doi:10.1016/j.ccell.2023.05.005. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37267951/
5. Ma, Runze, Zhang, Yan, Zhang, Jing, Zhang, Zhuqiang, Zhu, Bing. 2024. Targeting pericentric non-consecutive motifs for heterochromatin initiation. In Nature, 631, 678-685. doi:10.1038/s41586-024-07640-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38961301/
6. Shen, Jia Z, Qiu, Zhixin, Wu, Qiulian, Rich, Jeremy N, Spruck, Charles. 2020. FBXO44 promotes DNA replication-coupled repetitive element silencing in cancer cells. In Cell, 184, 352-369.e23. doi:10.1016/j.cell.2020.11.042. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33357448/
7. Yao, Luyan, He, Funan, Zhao, Quanyi, Zhou, Bingying, Wang, Li. 2023. Spatial Multiplexed Protein Profiling of Cardiac Ischemia-Reperfusion Injury. In Circulation research, 133, 86-103. doi:10.1161/CIRCRESAHA.123.322620. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37249015/
8. Liu, Jixuan, Luo, Qian, Zhao, Haoran, Guo, Baofeng, Zhang, Ling. 2024. Comprehensive gene set enrichment and variation analyses identify SUV39H1 as a potential prognostic biomarker for glioblastoma immunorelevance. In Computational and structural biotechnology journal, 23, 4161-4176. doi:10.1016/j.csbj.2024.11.016. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39640533/
9. Weirich, Sara, Khella, Mina S, Jeltsch, Albert. 2021. Structure, Activity and Function of the Suv39h1 and Suv39h2 Protein Lysine Methyltransferases. In Life (Basel, Switzerland), 11, . doi:10.3390/life11070703. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34357075/