Igf2-KO 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Igf2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-20066

品系全称

C57BL/6JCya-Igf2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-16002-Igf2-B6J-VC

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Igf2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-20066) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
KO小鼠库模型
MAPK信号通路
PI3K-Akt信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
insulin-like growth factor 2
基因别称
Igf-2,Igf-II,M6pr,Mpr,Peg2
染色体号
Chr 7 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_010514 | Ensembl: ENSMUST00000121128
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:96434Mutations that are paternally transmitted result in growth deficiency. Heterozygous mice inheriting a mutant allele from their mother appear to be phenotypically normal.
Igf2(胰岛素样生长因子2)是一种在大多数正常组织中表达的基因,它在哺乳动物中表现出印记特性,即来自父系和母系两个等位基因的表达是不均等的。Igf2基因在胚胎发育过程中特别重要,它促进胎儿和胎盘的生长,并促进营养物质的转移。Igf2的表达受到表观遗传调控,包括DNA甲基化、染色质修饰、DNA结合蛋白(如CTCFs)和细胞核中DNA的三维排列等[1]。此外,Igf2的表达还受到长距离基因调控的影响,例如,Igf2的增强子与启动子之间的相互作用受到Paxillin蛋白的调节,Paxillin可以激活Igf2基因的转录,同时抑制H19基因的表达[3]。

在猪中,Igf2:g.3072G>A多态性被认为是母系印记QTL的致病突变,与肌肉生长和脂肪沉积有关。研究表明,Igf2:g.3072G>A多态性与Igf2基因在脂肪组织中的表达有关,并且与脂肪组织中的脂肪酸组成有关。携带A等位基因的动物表现出Igf2基因表达的升高和较高的多不饱和脂肪酸和较低的饱和脂肪酸含量。此外,研究发现,Igf2基因在肌肉和脂肪组织中表现出印记特性,且在肌肉中父系和母系等位基因的差异更为明显[2]。

在鹅中,Igf2基因的G63A突变与生长性状有关。研究发现,Igf2基因在腿肌、肝脏、卵巢和垂体中高度表达,且G63A突变与鹅的体重有关。携带A等位基因的鹅的体重显著高于携带G等位基因的鹅。因此,G63A突变可能是鹅育种的重要遗传标记[4]。

在人类中,Igf2基因也表现出印记特性。研究发现,Igf2基因的四个不同的启动子在出生后的肝脏标本中表现出单等位基因和/或双等位基因的表达模式。此外,研究发现,母系H19基因的缺失会导致Igf2基因的甲基化模式发生改变,且这种改变不仅影响母系等位基因,还会影响父系等位基因的甲基化模式[5,7]。

此外,研究发现,Igf2基因在牛的卵母细胞和早期胚胎中的表达模式具有组织特异性和等位基因特异性。研究发现,P2和P4启动子驱动的转录在卵母细胞成熟和胚胎发育过程中发挥重要作用,而P0/P1启动子可能在早期阶段发挥次要作用[6]。

综上所述,Igf2基因在哺乳动物中的表达受到表观遗传调控和长距离基因调控的影响。Igf2基因的印记特性与其在生长和发育过程中的重要作用密切相关。Igf2基因的表达还受到组织特异性和等位基因特异性的影响。进一步研究Igf2基因的表达调控机制有助于深入理解其生物学功能和在疾病发生中的作用。

参考文献:
1. Nordin, M, Bergman, D, Halje, M, Engström, W, Ward, A. 2014. Epigenetic regulation of the Igf2/H19 gene cluster. In Cell proliferation, 47, 189-99. doi:10.1111/cpr.12106. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24738971/
2. Criado-Mesas, Lourdes, Ballester, Maria, Crespo-Piazuelo, Daniel, Fernández, Ana Isabel, Folch, Josep M. 2019. Analysis of porcine IGF2 gene expression in adipose tissue and its effect on fatty acid composition. In PloS one, 14, e0220708. doi:10.1371/journal.pone.0220708. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31393967/
3. Marášek, Pavel, Dzijak, Rastislav, Studenyak, Irina, Novák, Petr, Hozák, Pavel. 2015. Paxillin-dependent regulation of IGF2 and H19 gene cluster expression. In Journal of cell science, 128, 3106-16. doi:10.1242/jcs.170985. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26116569/
4. Wang, Cui, Liu, Yi, Zhang, Yuting, Chen, Shufang, He, Daqian. 2022. Expression profile and the G63A mutation of IGF2 gene associated with growth traits in Zhedong-White goose. In Animal biotechnology, 34, 3261-3266. doi:10.1080/10495398.2022.2113399. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36001379/
5. Ekström, T J. . Parental imprinting and the IGF2 gene. In Hormone research, 42, 176-81. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7868070/
6. Willhelm, Bruna Rodrigues, Ticiani, Elvis, Campagnolo, Karine, Rodrigues, José Luiz Rigo, Bertolini, Marcelo. 2021. Promoter-specific expression of the imprinted IGF2 gene in bovine oocytes and pre-implantation embryos. In Reproduction in domestic animals = Zuchthygiene, 56, 857-863. doi:10.1111/rda.13925. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33713470/
7. Forné, T, Oswald, J, Dean, W, Walter, J, Reik, W. . Loss of the maternal H19 gene induces changes in Igf2 methylation in both cis and trans. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 94, 10243-8. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9294195/