Gmds-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Gmds-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-19986

品系全称

C57BL/6JCya-Gmdsem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-218138-Gmds-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Gmds-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-19986) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
GDP-mannose 4, 6-dehydratase
基因别称
-
染色体号
Chr 13 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_146041 | Ensembl: ENSMUST00000041859
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
GMDS(GDP-甘露糖-4,6-脱水酶)是一种关键的酶,它在哺乳动物细胞中负责将GDP-甘露糖转化为GDP-4-酮-6-脱氧甘露糖,这是fucosylation过程中的第一步,fucosylation是一种重要的糖基化修饰,在细胞识别、信号传导和肿瘤发生等多种生物学过程中发挥着重要作用。

GMDS基因的突变与多种疾病的发生和发展相关。例如,GMDS基因的突变已被证明与遗传性青光眼有关。青光眼是一种导致不可逆性失明的疾病,是全球范围内视力丧失的主要原因。在青光眼的遗传和基因组研究中,包括全基因组关联研究(GWAS)在内的研究已经加速了与青光眼相关的基因的发现。青光眼可以发生在所有年龄段,其中罕见的早发性疾病(40岁前)通常具有孟德尔遗传特征,而成人发病的常见形式则表现出复杂的遗传特征。最近的研究表明,基于MYOC、OPTN和TBK1突变引起的分子和细胞事件,某些早发性青光眼患者可能存在潜在的治疗靶点。使用早发性青光眼基因进行的诊断性基因检测也已被证明有助于无症状疾病检测和遗传咨询。最近完成的针对三种常见成人发病青光眼的GWAS已经确定了新的基因位点,包括POAG(原发性开角型青光眼)(ABCA1、AFAP1、GMDS、PMM2、TGFBR3、FNDC3B、ARHGEF12、GAS7、FOXC1、ATXN2、TXNRD2);PACG(原发性闭角型青光眼)(EPDR1、CHAT、GLIS3、FERMT2、DPM2-FAM102);以及XFS(剥脱综合征)青光眼(CACNA1A)。总共16个基因组区域与POAG相关(包括正常眼压性青光眼(NTG)亚组),8个与PACG相关,2个与XFS相关。这些研究正在定义对疾病发病机制有重要贡献的重要生物学途径和过程[1]。

GMDS基因的突变还与癌症的发生和发展相关。fucosylation是一种常见的与癌症相关的糖基化修饰变化,GMDS作为fucosylation途径中的关键酶,与癌症的发病和进展密切相关。此外,长链非编码RNA(lncRNA)在癌症的发病和转移中的作用越来越受到重视,lncRNA的调控机制已成为生物学研究的热点。GMDS的反义RNA GMDS-AS1被发现具有成为致癌基因的潜力。通过对相关数据的获取和分析,可以更好地理解GMDS-AS1及其lncRNA在生理和肿瘤发生和进展中的作用,以及它们对癌症治疗方法和患者预后的可能影响[2]。

GMDS-AS1是一种新的lncRNA,它在肺腺癌(LUAD)的进展中发挥作用,但其调控LUAD进展的机制尚不清楚。研究发现,LUAD患者中GMDS-AS1的表达下调,其低表达与晚期转移和不良生存相关。GMDS-AS1的过表达显著降低了肿瘤细胞的活力、增殖、迁移、侵袭和上皮-间质转化,但增强了细胞凋亡。此外,GMDS-AS1抑制了小鼠肿瘤的生长。GMDS-AS1通过招募TAF15蛋白来稳定SIRT1 mRNA,并去乙酰化p65,从而抑制MMP-9启动子的招募,进而抑制MMP-9的表达,从而抑制了LUAD的进展。这些发现揭示了一个新的LUAD进展机制,并提出了潜在的预后生物标志物和治疗靶点[3]。

lncRNA GMDS-AS1通过调节miR-96-5p/CYLD信号通路抑制肺腺癌的发展。研究发现,GMDS-AS1在LUAD组织和细胞中的表达显著降低。GMDS-AS1的过表达可以显著抑制LUAD细胞的增殖并促进细胞凋亡。进一步的研究表明,GMDS-AS1是miR-96-5p的靶基因,GMDS-AS1通过miR-96-5p调节LUAD细胞的增殖和凋亡。此外,CYLD赖氨酸63脱泛素化酶(CYLD)也是miR-96-5p的靶基因。通过各种验证,证实GMDS-AS1可以作为竞争性内源RNA(ceRNA)通过海绵化miR-96-5p来上调CYLD的表达。此外,还证实了GMDS-AS1/miR-96-5p/CYLD网络可以调节LUAD细胞的增殖和凋亡。这项研究揭示了基于ceRNA机制的GMDS-AS1/miR-96-5p/CYLD网络在LUAD发展中的重要作用,并为LUAD的靶向治疗提供了新的方向和理论基础[4]。

GMDS基因多态性与原发性开角型青光眼患者对拉坦前列素的反应相关。研究发现,GMDS基因的rs9503012 C>T多态性与POAG患者对拉坦前列素的反应相关。在拉坦前列素治疗1、2和4周后,携带GMDS rs9503012 C>T TT基因型的POAG患者的眼内压(IOP)降低程度明显高于携带CC+CT基因型的患者。这些结果表明,GMDS基因的多态性可能影响POAG患者对拉坦前列素的反应[5]。

GMDS的敲低会损害人肺腺癌细胞的增殖和存活。研究发现,GMDS在人肺腺癌细胞中的mRNA和蛋白质水平上显著上调。慢病毒介导的shRNA策略有效地抑制了人肺腺癌细胞A549和H1299中GMDS的表达,GMDS的敲低损害了细胞增殖、集落形成能力,诱导了细胞周期阻滞和细胞凋亡。此外,GMDS的敲低抑制了肺腺癌异种移植小鼠模型中的肿瘤发生。微阵列分析探索了GMDS介导的分子网络,并揭示了CASP8-CDKN1A轴可能在肺腺癌发展中起着重要作用。这些发现表明,GMDS的上调对肺腺癌细胞的增殖和存活至关重要,可能成为肺腺癌诊断和治疗的一个潜在生物标志物[6]。

GMDS基因的缺陷导致了对自然杀伤细胞(NK细胞)介导的肿瘤监测的逃逸。研究发现,GMDS基因的突变导致了对TRAIL诱导的细胞凋亡的抵抗,从而逃逸了免疫监测。GMDS的敲除损害了细胞增殖、集落形成能力,诱导了细胞周期阻滞和细胞凋亡。此外,GMDS的敲除抑制了异种移植小鼠模型中的肿瘤发生。这些结果表明,GMDS基因的突变可能是一种新型癌症进展途径,通过细胞fucosylation和NK细胞介导的肿瘤监测来发挥作用[7]。

ESET通过表观遗传抑制lncRNA GMDS-AS1促进了肝细胞癌的细胞活力和转移。研究发现,GMDS-AS1在肝细胞癌(HCC)中的表达下调,而ESET的表达上调。GMDS-AS1的抑制促进了肿瘤的发展,并且这种作用与ESET对GMDS-AS1的表观遗传抑制密切相关。PSMB1是GMDS-AS1的下游靶基因,它促进了肿瘤的增殖,并且被GMDS-AS1负向调节。这些结果表明,GMDS-AS1在HCC进展中具有抗肿瘤特性,并且ESET介导的GMDS-AS1的表观遗传抑制是一种新的HCC进展途径[8]。

长期暴露于高水平的砷会导致GMDS基因片段的过度甲基化。研究发现,慢性砷暴露人群中,GMDS基因片段的过度甲基化与砷诱导的皮肤癌的发生相关。GMDS基因片段的过度甲基化可能是砷诱导的致癌机制之一[9]。

氟化糖苷可以抑制细胞fucosylation。研究发现,一类直接靶向从头GDP-fucose生物合成的fucosylation抑制剂可以有效地抑制细胞fucosylation。细胞渗透性氟化鼠李糖1-磷酸衍生物(Fucotrim I & II)是代谢前药物,可以被代谢为其各自的GDP-甘露糖衍生物,并有效地抑制细胞fucosylation。这些发现为阐明fucose糖的生物作用和开发潜在的疗法提供了新的工具[10]。

综上所述,GMDS基因在多种生物学过程中发挥着重要作用,包括细胞识别、信号传导和肿瘤发生等。GMDS基因的突变与多种疾病的发生和发展相关,包括青光眼和癌症。GMDS基因的研究有助于深入理解fucosylation的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Wiggs, Janey L, Pasquale, Louis R. . Genetics of glaucoma. In Human molecular genetics, 26, R21-R27. doi:10.1093/hmg/ddx184. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28505344/
2. Zhang, Ziyan, Wang, Zhuowei, Fan, Hong, Zhou, Gang, Yuan, Chengfu. . The Indispensable Roles of GMDS and GMDS-AS1 in the Advancement of Cancer: Fucosylation, Signal Pathway and Molecular Pathogenesis. In Mini reviews in medicinal chemistry, 24, 1712-1722. doi:10.2174/0113895575285276240324080234. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38591197/
3. Peng, Wei, Jiang, Junjie, Fu, Jia, Wang, Jia, Duan, Chaojun. 2023. lncRNA GMDS-AS1 restrains lung adenocarcinoma progression via recruiting TAF15 protein to stabilize SIRT1 mRNA. In Epigenomics, 15, 417-434. doi:10.2217/epi-2022-0432. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37309595/
4. Zhao, Ming, Xin, Xiao-Feng, Zhang, Jian-Ya, Lv, Tang-Feng, Song, Yong. 2019. LncRNA GMDS-AS1 inhibits lung adenocarcinoma development by regulating miR-96-5p/CYLD signaling. In Cancer medicine, 9, 1196-1208. doi:10.1002/cam4.2776. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31860169/
5. Cui, X-J, Zhao, A-G, Wang, X-L. 2016. Correlations of AFAP1, GMDS and PTGFR gene polymorphisms with intra-ocular pressure response to latanoprost in patients with primary open-angle glaucoma. In Journal of clinical pharmacy and therapeutics, 42, 87-92. doi:10.1111/jcpt.12468. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27862086/
6. Wei, Xing, Zhang, Kun, Qin, Haifeng, Yu, Yang, Wang, Hong. 2018. GMDS knockdown impairs cell proliferation and survival in human lung adenocarcinoma. In BMC cancer, 18, 600. doi:10.1186/s12885-018-4524-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29843634/
7. Moriwaki, Kenta, Noda, Katsuhisa, Furukawa, Yoichi, Hayashi, Norio, Miyoshi, Eiji. 2009. Deficiency of GMDS leads to escape from NK cell-mediated tumor surveillance through modulation of TRAIL signaling. In Gastroenterology, 137, 188-98, 198.e1-2. doi:10.1053/j.gastro.2009.04.002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19361506/
8. Huang, Junling, Zhong, Tengmeng, Li, Guangzhi, Wang, Shuzhen, Qin, Rujuan. 2023. Epigenetic inhibition of lncRNA GMDS-AS1 by methyltransferase ESET promoted cell viability and metastasis of hepatocellular carcinoma. In Clinical & translational oncology : official publication of the Federation of Spanish Oncology Societies and of the National Cancer Institute of Mexico, 25, 1793-1804. doi:10.1007/s12094-023-03077-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36737533/
9. Chanda, Sarmishtha, Dasgupta, Uma B, Mazumder, Debendranath Guha, Saha, Jayita, Gupta, Bhaskar. 2013. Human GMDS gene fragment hypermethylation in chronic high level of arsenic exposure with and without arsenic induced cancer. In SpringerPlus, 2, 557. doi:10.1186/2193-1801-2-557. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24255851/
10. Pijnenborg, Johan F A, Rossing, Emiel, Merx, Jona, Lefeber, Dirk J, Boltje, Thomas J. 2021. Fluorinated rhamnosides inhibit cellular fucosylation. In Nature communications, 12, 7024. doi:10.1038/s41467-021-27355-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34857733/