H1f8-KO 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

H1f8-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-19471

品系全称

C57BL/6JCya-H1f8em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-171506-H1f8-B6J-VC

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: H1f8-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-19471) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
H1.8 linker histone
基因别称
H1-8,H1.8,H1fo,H1foo,H1oo
染色体号
Chr 6 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_138311 | Ensembl: ENSMUST00000037831
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2176207Mice homozygous for a targeted mutation exhibit no detectable abnormalities. Oocytes develop normally and no defects in fertility or litter sizes are observed.
H1foo,也称为H1F8,是一种在哺乳动物卵母细胞中特异表达的连接组蛋白H1家族成员。H1foo在卵母细胞和早期胚胎的发育过程中发挥重要作用,参与调控染色质结构和基因表达。H1foo具有与其他H1家族成员较低的序列相似性,这表明其在结构和功能上可能具有独特的特性。

H1foo在卵母细胞中的表达及其在早期胚胎发育中的作用,已经在多个研究中得到证实。例如,有研究发现,H1foo在卵母细胞成熟过程中表达,并在受精后持续表达至两细胞胚胎阶段。H1foo的表达与卵母细胞的成熟和早期胚胎的发育密切相关,可能通过影响染色质结构来调控基因表达[1]。此外,H1foo还与核受体雌激素相关受体β(Esrrb)相互作用,Esrrb是H1foo在特定基因位点发挥染色质去浓缩作用所必需的[1]。

H1foo的表观遗传调控机制也得到了深入研究。研究发现,H1foo基因上游存在一个组织依赖性和差异甲基化区域(T-DMR),该区域在精子、体细胞和干细胞系中高度甲基化,但在卵母细胞中特异性地未甲基化。DNA甲基化在非表达细胞中抑制H1foo的表达,而在卵母细胞中,H1foo的持续未甲基化状态可能与其在早期胚胎发育中的重要作用相关[6]。

H1foo在基因表达调控中的具体作用也得到了探索。研究发现,H1foo可以与特定的基因启动子区域结合,并诱导染色质的去浓缩,从而影响基因的表达。例如,有研究发现,H1foo在卵母细胞中特异性地与一些卵母细胞特异性基因的启动子区域结合,并诱导这些区域的染色质去浓缩,从而促进这些基因的表达[1]。

此外,H1foo还在诱导多能干细胞(iPSCs)的生成中发挥重要作用。研究发现,H1foo的表达可以显著提高iPSCs的生成效率,并促进iPSCs的体外分化特征。H1foo在iPSCs中的表达还增强了生成具有生殖系能力的嵌合小鼠的能力,这表明H1foo在iPSCs的生成和维持中具有重要作用[4]。

总之,H1foo是一种在哺乳动物卵母细胞中特异表达的连接组蛋白H1家族成员,在卵母细胞和早期胚胎的发育过程中发挥重要作用。H1foo通过影响染色质结构和基因表达来调控卵母细胞的成熟和早期胚胎的发育。H1foo的表观遗传调控机制和其在基因表达调控中的具体作用也得到了深入研究。此外,H1foo还在诱导多能干细胞(iPSCs)的生成中发挥重要作用。这些研究结果有助于我们更好地理解H1foo在卵母细胞和早期胚胎发育中的作用机制,并为相关生物学过程和疾病的研究提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Hayakawa, Koji, Tanaka, Satoshi. 2021. Oocyte-specific linker histone H1foo interacts with Esrrb to induce chromatin decondensation at specific gene loci. In Biochemical and biophysical research communications, 561, 165-171. doi:10.1016/j.bbrc.2021.05.033. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34023782/
2. Bales, Katie L, Ianov, Lara, Kennedy, Andrew J, Sweatt, J David, Gross, Alecia K. 2018. Autosomal dominant retinitis pigmentosa rhodopsin mutant Q344X drives specific alterations in chromatin complex gene transcription. In Molecular vision, 24, 153-164. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29463953/
3. Zeng, Fanyi, Schultz, Richard M. . Gene expression in mouse oocytes and preimplantation embryos: use of suppression subtractive hybridization to identify oocyte- and embryo-specific genes. In Biology of reproduction, 68, 31-9. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12493692/
4. Kunitomi, Akira, Yuasa, Shinsuke, Sugiyama, Fumihiro, Tanaka, Mamoru, Fukuda, Keiichi. 2016. H1foo Has a Pivotal Role in Qualifying Induced Pluripotent Stem Cells. In Stem cell reports, 6, 825-833. doi:10.1016/j.stemcr.2016.04.015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27237376/
5. Tanaka, Yudai, Kato, Shingo, Tanaka, Mamoru, Kuji, Naoaki, Yoshimura, Yasunori. . Structure and expression of the human oocyte-specific histone H1 gene elucidated by direct RT-nested PCR of a single oocyte. In Biochemical and biophysical research communications, 304, 351-7. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12711322/
6. Maeda, Chiaki, Sato, Shun, Hattori, Naoko, Yagi, Shintaro, Shiota, Kunio. 2008. DNA hypomethylation circuit of the mouse oocyte-specific histone H1foo gene in female germ cell lineage. In Biology of reproduction, 78, 816-21. doi:10.1095/biolreprod.107.066522. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18184919/
7. Tanaka, M, Hennebold, J D, Macfarlane, J, Adashi, E Y. . A mammalian oocyte-specific linker histone gene H1oo: homology with the genes for the oocyte-specific cleavage stage histone (cs-H1) of sea urchin and the B4/H1M histone of the frog. In Development (Cambridge, England), 128, 655-64. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11171391/