Arhgef16-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Arhgef16-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-18993

品系全称

C57BL/6JCya-Arhgef16em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-230972-Arhgef16-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Arhgef16-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-18993) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
Rho guanine nucleotide exchange factor 16
基因别称
-
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001112744 | Ensembl: ENSMUST00000030898
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 4~6
敲除长度
~2.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
ARHGEF16,也称为Rho guanine nucleotide exchange factor 16,是一种重要的Rho家族小GTPase的交换因子。Rho家族小GTPase是一类重要的信号分子,参与调节细胞骨架重组、细胞迁移、细胞分裂和细胞凋亡等多种生物学过程。ARHGEF16通过激活Rho家族小GTPase,如Cdc42和Rac1,参与这些生物学过程的调控。

ARHGEF16在多种癌症中发挥重要作用。在人类胶质瘤细胞中,Hedgehog信号通路的异常激活与胶质母细胞瘤的发生发展密切相关。研究表明,ARHGEF16是GLI2的下游靶基因,GLI2通过结合ARHGEF16启动子并激活其转录,促进胶质瘤细胞的增殖和迁移[1]。此外,ARHGEF16还与HPV16 E6蛋白结合蛋白Tip-1相互作用,激活Cdc42,参与细胞转化、恶性进展和侵袭[2]。在恶性黑色素瘤细胞中,ARHGEF16的表达下调,被证实为肿瘤抑制基因[3]。在卵巢癌中,ARHGEF16的表达水平与患者的预后相关,是预测卵巢癌预后的重要指标[4]。在胶质瘤中,ARHGEF16基因突变导致其PDZ结合域结构破坏,从而丧失肿瘤抑制功能[5]。在胃癌中,ARHGEF16的表达下调与不良预后相关,提示其可能作为一种肿瘤抑制基因发挥作用[6]。在黑色素瘤中,ARHGEF16的启动子区域高甲基化导致其表达下调,从而丧失肿瘤抑制功能[7]。在藏绵羊基因组中,ARHGEF16位于ROH热点区域,表现出高度的保守性,与脂质代谢、泌乳和发育相关[8]。

综上所述,ARHGEF16是一种重要的Rho家族小GTPase的交换因子,参与调节细胞骨架重组、细胞迁移、细胞分裂和细胞凋亡等多种生物学过程。ARHGEF16在多种癌症中发挥重要作用,包括胶质瘤、黑色素瘤、卵巢癌、胃癌和黑色素瘤等。ARHGEF16的表达水平、基因突变和启动子区域甲基化状态与癌症的发生发展、预后和治疗密切相关。深入研究ARHGEF16的生物学功能和作用机制,有助于开发新的癌症治疗策略和药物。

参考文献:
1. Huang, Dengliang, Wang, Yiting, Xu, Linlin, Zalli, Detina, Luo, Shiwen. 2018. GLI2 promotes cell proliferation and migration through transcriptional activation of ARHGEF16 in human glioma cells. In Journal of experimental & clinical cancer research : CR, 37, 247. doi:10.1186/s13046-018-0917-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30305138/
2. Oliver, A W, He, X, Borthwick, K, Hampson, L, Hampson, I N. 2010. The HPV16 E6 binding protein Tip-1 interacts with ARHGEF16, which activates Cdc42. In British journal of cancer, 104, 324-31. doi:10.1038/sj.bjc.6606026. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21139582/
3. Cheng, Sun-Long, Huang Liu, Rosa, Sheu, Jin-Nan, Sinchaikul, Supachok, Tsay, Gregory Jiazer. . Toxicogenomics of kojic acid on gene expression profiling of a375 human malignant melanoma cells. In Biological & pharmaceutical bulletin, 29, 655-69. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16595896/
4. Li, Shenyi, Cao, Tianyue, Wu, Tiantian, Hou, Shunyu, Wu, Yibo. 2023. Identification of a ferroptosis- and oxidative stress-associated gene signature for prognostic stratification of ovarian cancer. In American journal of translational research, 15, 2645-2655. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37193145/
5. Bralten, Linda B, Nouwens, Stephan, Kockx, Christel, Stubbs, Andrew, French, Pim J. 2011. Absence of common somatic alterations in genes on 1p and 19q in oligodendrogliomas. In PloS one, 6, e22000. doi:10.1371/journal.pone.0022000. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21760942/
6. Park, Sun Yi, Park, Ji-Ho, Yang, Jung Wook, Lee, Young-Joon, Jeong, Sang-Ho. . HTATIP2 Overexpression was Associated With a Good Prognosis in Gastric Cancer. In Technology in cancer research & treatment, 23, 15330338231187254. doi:10.1177/15330338231187254. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38303513/
7. Bonazzi, Vanessa F, Irwin, Darryl, Hayward, Nicholas K. . Identification of candidate tumor suppressor genes inactivated by promoter methylation in melanoma. In Genes, chromosomes & cancer, 48, 10-21. doi:10.1002/gcc.20615. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18803327/
8. Sun, Lixia, Yuan, Chao, Guo, Tingting, Lu, Zengkui, Liu, Jianbin. 2025. The accumulation of harmful genes within the ROH hotspot regions of the Tibetan sheep genome does not lead to genetic load. In BMC genomics, 26, 60. doi:10.1186/s12864-025-11207-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39844045/