Stmn4-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Stmn4-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-18325

品系全称

C57BL/6JCya-Stmn4em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-56471-Stmn4-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Stmn4-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-18325) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
stathmin-like 4
基因别称
Lagl,RB3
染色体号
Chr 14 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001310522.1 | Ensembl: ENSMUST00000120229
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~6
敲除长度
~3.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
STMN4,也称为Stathmin-like 4,是一种微管调节蛋白。微管是细胞骨架的重要组成部分,参与细胞分裂、细胞运动、细胞器运输和信号转导等许多生物学过程。STMN4通过调节微管动力学影响细胞功能,包括细胞分裂、细胞迁移和细胞分化。STMN4的表达和活性在多种细胞类型和发育阶段中有所不同,表明其在不同的生物学过程中发挥重要作用。

STMN4在神经系统的发育和功能中发挥重要作用。在视网膜发育中,STMN4的表达减少与铜过载引起的视网膜发育缺陷有关[1]。STMN4的缺乏导致视网膜缺陷,表现为成熟视网膜细胞减少、微管和细胞周期相关基因的表达下调,以及视网膜细胞的细胞周期阻滞和凋亡。这些结果表明,铜应激可能通过下调STMN4的表达导致视网膜发育缺陷,而STMN4缺乏导致细胞周期受损,视网膜祖细胞(RPCs)积累和凋亡。STMN4在神经母细胞瘤细胞分化中也发挥作用。STMN4和ROBO2在神经母细胞瘤细胞分化过程中被上调,并且稳定表达STMN4或ROBO2可以诱导IMR-32细胞分化[2]。此外,神经母细胞瘤患者中STMN4和ROBO2的肿瘤mRNA表达水平较高,与更好的无进展生存期相关。这些研究表明,STMN4和ROBO2在神经母细胞瘤分化中发挥重要作用。

STMN4在结直肠癌(COAD)的发病机制中发挥重要作用。使用特征选择和贝叶斯网络方法,研究人员发现STMN4是区分COAD肿瘤和正常样本的关键基因之一[3]。STMN4和FAM135B的失调是COAD生存结果的独立预后因素。这表明STMN4在COAD的发展和预后中发挥重要作用。

STMN4还与白内障的形成有关。在糖尿病性白内障中,组蛋白乙酰转移酶(HAT)抑制剂可以逆转白内障的不透明度。在HAT抑制剂处理的白内障样本中,STMN4的表达水平显著改变[4]。这表明STMN4在白内障的发生和发展中发挥重要作用。

STMN4在DLK依赖性海马谷氨酸能神经元变性中也发挥作用。DLK信号的升高与微管破坏有关,可能涉及STMN4[5]。这表明STMN4在海马谷氨酸能神经元的变性和神经退行性疾病中发挥作用。

STMN4在神经母细胞瘤的分化中也发挥作用。在神经母细胞瘤细胞系中,全反式维甲酸(ATRA)处理可以诱导STMN4和ROBO2的表达上调,并降低干细胞标记物KLF4的表达[6]。这表明STMN4在神经母细胞瘤的分化中发挥作用。

STMN4在维持神经祖细胞中发挥重要作用。在斑马鱼幼虫的背中脑中,STMN4的表达是特异性和动态的。STMN4的敲低或过表达导致背中脑的过早神经元分化[7]。这表明STMN4在神经发生和神经祖细胞的维持中发挥重要作用。

STMN4在阿尔茨海默病(AD)的发病机制中也发挥作用。在AD小鼠模型中,STMN4的表达水平显著改变[8]。这表明STMN4在AD的发病机制中发挥作用。

综上所述,STMN4是一种重要的微管调节蛋白,参与调节细胞功能、神经系统的发育和功能、癌症的发生和发展,以及神经退行性疾病的发生。STMN4的研究有助于深入理解细胞骨架和微管在生物学过程中的作用,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Jing, YuanYuan, Luo, Yi, Li, LingYa, Liu, Mugen, Liu, Jing-Xia. 2024. Deficiency of copper responsive gene stmn4 induces retinal developmental defects. In Cell biology and toxicology, 40, 2. doi:10.1007/s10565-024-09847-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38252267/
2. Sung, Pei-Ju, Boulos, Nidal, Tilby, Michael John, Tweddle, Deborah Anne, Lunec, John. 2012. Identification and characterisation of STMN4 and ROBO2 gene involvement in neuroblastoma cell differentiation. In Cancer letters, 328, 168-75. doi:10.1016/j.canlet.2012.08.015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22906418/
3. Wang, Yangyang, Gao, Xiaoguang, Ru, Xinxin, Sun, Pengzhan, Wang, Jihan. 2022. Identification of gene signatures for COAD using feature selection and Bayesian network approaches. In Scientific reports, 12, 8761. doi:10.1038/s41598-022-12780-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35610288/
4. Nagaya, Masaya, Yamaoka, Risa, Kanada, Fumito, Inatani, Masaru, Oki, Masaya. 2022. Histone acetyltransferase inhibition reverses opacity in rat galactose-induced cataract. In PloS one, 17, e0273868. doi:10.1371/journal.pone.0273868. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36417410/
5. Ritchie, Erin M, Acar, Dilan, Zhong, Siming, Zheng, Binhai, Jin, Yishi. 2025. Translatome analysis reveals cellular network in DLK-dependent hippocampal glutamatergic neuron degeneration. In eLife, 13, . doi:10.7554/eLife.101173. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40067879/
6. Swadi, Rasha, Mather, Grace, Pizer, Barry L, See, Violaine, Moss, Diana. 2018. Optimising the chick chorioallantoic membrane xenograft model of neuroblastoma for drug delivery. In BMC cancer, 18, 28. doi:10.1186/s12885-017-3978-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29301505/
7. Ringhoff, Danielle N, Cassimeris, Lynne. 2009. Gene expression profiles in mouse embryo fibroblasts lacking stathmin, a microtubule regulatory protein, reveal changes in the expression of genes contributing to cell motility. In BMC genomics, 10, 343. doi:10.1186/1471-2164-10-343. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19643027/
8. Lin, Meng-Ju, Lee, Shyh-Jye. 2016. Stathmin-like 4 is critical for the maintenance of neural progenitor cells in dorsal midbrain of zebrafish larvae. In Scientific reports, 6, 36188. doi:10.1038/srep36188. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27819330/