Clstn3-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Clstn3-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-17542

品系全称

C57BL/6JCya-Clstn3em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-232370-Clstn3-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Clstn3-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-17542) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
calsyntenin 3
基因别称
CSTN3,Clstn3b,Cs3,Cst-3,alc-beta
染色体号
Chr 6 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_153508 | Ensembl: ENSMUST00000008297
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~1.4 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2178323Mice homozygous for a knock-out allele exhibit reductions in excitatory and inhibitory synapse density and deficits in synaptic transmission. Whole-body KO results in reduced sensitivity to diet-induced obesity, reduced body weight and fat amount and increased energy expenditure. It, and neuron-specific homozygous KO, also causes reduction in bone marrow volume, bone mass and femur length.
CLSTN3,也称为Calsyntenin-3,是一种重要的跨膜蛋白,主要在脑部中促进突触发育。然而,研究表明,CLSTN3在脂肪组织中也有表达,并且与肥胖风险和脂肪组织功能失调有关。CLSTN3在白色脂肪组织(WAT)中主要富集在脂肪细胞中,其基因变异与肥胖风险增加相关。研究发现,CLSTN3基因的变异rs7296261与肥胖高风险相关,并且该变异的风险等位基因与CLSTN3在人类WAT中的表达增加有关。此外,小鼠实验中,CLSTN3在腹股沟WAT中的过表达导致饮食诱导的局部功能失调扩张、肝脂肪变性和全身代谢缺陷。在体内和体外脂解试验中,CLSTN3的过表达减弱了去甲肾上腺素刺激的脂解作用。机制上,CLSTN3可以与淀粉样前体蛋白(APP)在WAT中相互作用,并增加线粒体中APP的积累,从而损害脂肪线粒体功能并促进肥胖[1]。

CLSTN3不仅在脂肪组织中发挥作用,还与结直肠癌风险相关。研究发现,13种蛋白质的遗传预测水平与结直肠癌风险相关。其中,4种蛋白质(GREM1、CLSTN3、CSF2RA、CD86)被认为是最有力的证据。这些蛋白质编码基因主要在结肠肿瘤组织的组织干细胞、上皮细胞和单核细胞中表达。CLSTN3的过表达或沉默可以影响脂肪代谢、糖异生和能量稳态,并减少肝脏损伤、炎症和氧化应激损伤[2]。

CLSTN3还与肝脂肪变性相关。研究发现,CLSTN3在非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)小鼠模型中表达降低。过表达CLSTN3可以改善NAFLD小鼠模型中的脂肪代谢紊乱、糖异生和能量稳态,并减少肝脏损伤、炎症和氧化应激损伤。此外,CLSTN3的过表达可以激活法尼醇X受体(FXR),从而改善NAFLD小鼠模型中的脂肪代谢紊乱[3]。

CLSTN3在能量和骨稳态的神经调节中也发挥作用。研究发现,CLSTN3基因敲除小鼠表现出体重减轻、瘦素敏感性改善和能量消耗增加。此外,CLSTN3基因敲除小鼠的骨髓体积和皮质骨质量减少,但骨小梁骨微结构没有改变。这些减少的体重和骨质量表型可以归因于神经元CLSTN3,因为它们在泛神经元但不是交感神经元特异性删除CLSTN3时被复制。这项研究表明,神经元CLSTN3是能量和骨稳态的关键调节因子[4]。

CLSTN3还与脑出血(ICH)中的神经元细胞损伤相关。研究发现,circAFF2在ICH患者中显著增加。circAFF2通过结合miR-488并海绵化miR-488来增加CLSTN3的表达,从而促进神经元细胞损伤和ICH的恶化。circAFF2的敲低或miR-488的过表达可以抑制circAFF2或miR-488过表达引起的神经元细胞损伤,并通过减少氧化应激和脂质过氧化的标记来保护神经元细胞。体内实验进一步证实,circAFF2的敲低通过miR-488/CLSTN3轴减弱了小鼠ICH损伤[5]。

CLSTN3在WAT褐变和棕色脂肪组织(BAT)激活中也发挥作用。研究发现,CLSTN3在WAT褐变和BAT激活过程中表达增加。CLSTN3的过表达可以显著增加UCP1的表达,并促进WAT褐变和BAT激活。此外,CLSTN3在神经-脂肪突触连接的形成或重塑中发挥关键作用[6]。

CLSTN3还与膀胱外翻-尿道上裂复合体(BEEC)的形成相关。研究发现,CLSTN3基因的变异与膀胱外翻相关。CLSTN3基因的变异可能参与BEEC的形成[7]。

CLSTN3与抑郁症的表观遗传学相关。研究发现,抑郁症患者中,左侧腹外侧前额叶皮层(VLPFC)的皮层厚度与与CLSTN3相关的8个DMPs的DNA甲基化水平呈负相关。这表明CLSTN3可能与抑郁症的病理生理学相关[8]。

CLSTN3还与原发性醛固酮增多症相关。研究发现,CLSTN3基因的变异与原发性醛固酮增多症相关。CLSTN3基因的变异可能导致肾上腺Cyp11b2过表达和醛固酮水平升高[9]。

CLSTN3与神经元细胞中维生素C的摄取相关。研究发现,CLSTN3与钠依赖性维生素C转运蛋白-2(SVCT2)相互作用,调节神经元细胞中维生素C的摄取。CLSTN3的表达水平在阿尔茨海默病(AD)患者的海马体中显著降低,这与SVCT2的表达水平降低一致[10]。

综上所述,CLSTN3是一种重要的跨膜蛋白,在脂肪组织、肝脏、神经系统和骨骼中发挥重要作用。CLSTN3的基因变异与肥胖风险、脂肪组织功能失调、结直肠癌、肝脂肪变性、能量和骨稳态、脑出血、膀胱外翻、抑郁症和原发性醛固酮增多症相关。CLSTN3的研究有助于深入理解CLSTN3在多种疾病中的生物学功能和病理生理机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Bai, Ningning, Lu, Xuhong, Jin, Li, Hu, Cheng, Yang, Ying. 2022. CLSTN3 gene variant associates with obesity risk and contributes to dysfunction in white adipose tissue. In Molecular metabolism, 63, 101531. doi:10.1016/j.molmet.2022.101531. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35753632/
2. Sun, Jing, Zhao, Jianhui, Jiang, Fangyuan, Theodoratou, Evropi, Li, Xue. 2023. Identification of novel protein biomarkers and drug targets for colorectal cancer by integrating human plasma proteome with genome. In Genome medicine, 15, 75. doi:10.1186/s13073-023-01229-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37726845/
3. Guo, Jingyi, Huang, Shangyi, Yi, Qincheng, Gao, Yong, Nie, Guangning. 2023. Hepatic Clstn3 Ameliorates Lipid Metabolism Disorders in High Fat Diet-Induced NAFLD through Activation of FXR. In ACS omega, 8, 26158-26169. doi:10.1021/acsomega.3c02347. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37521618/
4. Kim, Sung-Jin, Jeong, Yong Taek, Jeong, Se Rok, Lee, Ji Hyun, Moon, Seok Jun. 2020. Neural regulation of energy and bone homeostasis by the synaptic adhesion molecule Calsyntenin-3. In Experimental & molecular medicine, 52, 793-803. doi:10.1038/s12276-020-0419-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32382066/
5. Qi, Juxing, Meng, Chengjie, Mo, Jianbing, Ding, Liang, Zhi, Tongle. 2023. CircAFF2 Promotes Neuronal Cell Injury in Intracerebral Hemorrhage by Regulating the miR-488/CLSTN3 Axis. In Neuroscience, 535, 75-87. doi:10.1016/j.neuroscience.2023.10.014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37884088/
6. Chen, Shu-Qin, Niu, Qiang, Ju, Li-Ping, Yang, Ying, Jia, Wei-Ping. 2019. Predicted secreted protein analysis reveals synaptogenic function of Clstn3 during WAT browning and BAT activation in mice. In Acta pharmacologica Sinica, 40, 999-1009. doi:10.1038/s41401-019-0211-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30796355/
7. Köllges, Ricarda, Stegmann, Jil, Schneider, Sophia, Ludwig, Kerstin U, Reutter, Heiko. 2023. Exome Survey and Candidate Gene Re-Sequencing Identifies Novel Exstrophy Candidate Genes and Implicates LZTR1 in Disease Formation. In Biomolecules, 13, . doi:10.3390/biom13071117. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37509153/
8. Yang, Hyun-Ho, Han, Kyu-Man, Kim, Aram, Han, Mi-Ryung, Ham, Byung-Joo. 2024. Neuroimaging and epigenetic analysis reveal novel epigenetic loci in major depressive disorder. In Psychological medicine, 54, 2585-2598. doi:10.1017/S0033291724000709. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38721773/
9. Perez-Rivas, L G, Rhayem, Y, Sabrautzki, S, Beuschlein, F, Spyroglou, A. 2016. Genetic characterization of a mouse line with primary aldosteronism. In Journal of molecular endocrinology, 58, 67-78. doi:10.1530/JME-16-0200. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27965370/
10. Subramanian, Veedamali S, Teafatiller, Trevor, Vidal, Janielle, Kitazawa, Masashi, Marchant, Jonathan S. 2021. Calsyntenin-3 interacts with the sodium-dependent vitamin C transporter-2 to regulate vitamin C uptake. In International journal of biological macromolecules, 192, 1178-1184. doi:10.1016/j.ijbiomac.2021.10.058. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34673103/