Msl1-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Msl1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-17161

品系全称

C57BL/6NCya-Msl1em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-74026-Msl1-B6N-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Msl1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-17161) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
male specific lethal 1
基因别称
2810017F12Rik,4121402D02Rik,4930463F05Rik,Msl-1
染色体号
Chr 11 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_028722 | Ensembl: ENSMUST00000037915
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~1.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
基因Msl1(Male-specific lethal 1)是一种在基因表达调控中发挥重要作用的蛋白质,它在剂量补偿、基因转录和染色质修饰等方面具有重要作用。Msl1是剂量补偿复合体(MSL complex)的核心组成部分,该复合体负责在雄性果蝇中调节X染色体的表达水平,以实现雄性和雌性之间基因表达的平衡。Msl1与其他MSL复合体成员如Msl2、Msl3和MOF相互作用,共同构成了MSL复合体,该复合体通过乙酰化组蛋白H4的赖氨酸16位点(H4K16ac)来增强基因表达。

在肝脏再生方面,Msl1通过驱动STAT3和组蛋白H4的相分离,并增强它们的乙酰化,从而促进肝脏再生。Msl1与STAT3或H4形成凝聚体,通过液-液相分离来富集乙酰辅酶A(Ac-CoA),而Ac-CoA反过来又增强Msl1凝聚体的形成,从而协同促进STAT3 K685和H4K16的乙酰化,进而刺激肝脏再生。此外,增加Ac-CoA水平可以增强STAT3和H4的乙酰化,从而促进老年小鼠的肝脏再生。这些结果表明,Msl1凝聚体介导的STAT3和H4乙酰化在肝脏再生中发挥着重要作用。因此,促进Msl1的相分离并增加Ac-CoA水平可能是一种治疗急性肝脏疾病和移植的新策略[1]。

Msl1与CDK7的功能相互作用控制RNA聚合酶II Ser5的磷酸化,这对基因表达调控至关重要。Msl1与CDK7的相互作用导致RNA聚合酶II Ser5的磷酸化减少,进而影响基因表达。此外,Msl1是一种磷酸化蛋白,转基因果蝇表达Msl1磷酸化突变体导致组蛋白乙酰转移酶MOF的错位和组蛋白H4 K16乙酰化,从而最终导致雄性致死,因为剂量补偿失败。这表明Msl1通过与通用转录机制组件的相互作用,存在于不同的磷酸化状态,从而调节果蝇中的转录[2]。

Msl1/MSL2蛋白在体外对组蛋白泛素化的分析表明,Msl1/2对组蛋白底物的泛素化效率较高,而对核小体的修饰效率较低,这表明核小体结构的改变对于H2BK34的高效泛素化是必需的。此外,Msl1/2可以在一个核小体上沉积两个泛素分子,这表明Msl1/2在核小体修饰中起着重要作用[3]。

Msl1介导的剂量补偿复合体的二聚化对于果蝇中雄性X染色体的调节是必需的。Msl1的二聚化对于MSL复合体在X染色体上的靶向和扩散是必需的,而Msl1与启动子的结合不受二聚状态和其他MSL蛋白的影响。此外,Msl1二聚化的丧失导致雄性特异性死亡。这表明Msl1介导的剂量补偿复合体的二聚化对于Msl2的结合、X染色体的识别和沿着X染色体的扩散是必需的[4]。

在果蝇中,Msl1蛋白的磷酸化位点的突变不会影响剂量补偿。这表明磷酸化不是Msl1活性调节的关键机制[5]。

果蝇黑色素瘤中Msl1蛋白的N末端对于剂量补偿至关重要。Msl1的N末端区域的氨基酸缺失和替换强烈影响了Msl1与roX2 RNA的相互作用和MSL复合体在X染色体上的高亲和力结合位点(HAS)的结合。特别是,Msl1中保守的N末端氨基酸3-7的替换(MSL1GS)对雄性存活性的影响与编码roX RNA的基因的失活相似。此外,MSL1GS与启动子的结合类似于野生型Msl1(MSL1WT),但不会与Msl2和Msl3共结合到X染色体的HAS上。然而,Msl2的过表达部分恢复了剂量补偿。因此,Msl1与roX RNA的相互作用对于MSL复合体在雄性X染色体HAS上的高效组装至关重要[6]。

在真菌病原体Cryptococcus neoformans中,Msl1-like(MSIL)蛋白在cAMP依赖性和非依赖性方式中发挥着多种作用,这些作用主要独立于Ras。Msl1负向控制抗氧化黑色素生成和性分化,这受到cAMP信号通路的抑制。相反,Msl1以Ras/cAMP非依赖性方式控制热耐受性、多种应激反应和抗真菌药物抗性。Cac2,作为CAF-1的第二种组分,似乎在功能上与Msl1既有冗余又有区别。Msl1对于Cryptococcus neoformans的完全致病性是必需的。转录组分析确定了一组由Msl1调节的基因,包括应激相关基因如HSP12和HSP78。因此,这项研究证明了Msl1在人真菌病原体Cryptococcus neoformans中的多种作用,为潜在的新的抗真菌治疗靶点提供了见解[7]。

Msl1在果蝇中剂量补偿复合体的组装中起着核心作用,这对于剂量补偿是必需的。Msl1与Msl2、Msl3和MOF相互作用,形成MSL复合体,该复合体负责在雄性果蝇中调节X染色体的表达水平,以实现雄性和雌性之间基因表达的平衡。Msl1的N端或C端域的过表达具有显性负效应,即导致雄性特异性死亡。Msl2与Msl1的标记区域共纯化,而Msl3和MOF与Msl1的C端域共纯化。此外,Msl1的C端域与GST-MOF融合蛋白特异性结合,并与HA标记的Msl3共免疫沉淀。Msl1的C端域与小鼠CBP的转录共激活区域相似。这表明Msl1的主要作用是作为MSL复合体组装的骨架[8]。

Msl1与MOF和MSL3结合的结构基础表明,Msl1与MSL3形成广泛的疏水界面,而Msl1与MOF的界面涉及HAT域与Msl1长螺旋之间的静电相互作用。这为MOF的催化机制提供了见解,并使我们能够展示MOF与NSL1的类似相互作用。在果蝇中,选择性破坏Msl1与Msl3或Mof的相互作用严重影响了Msl1在剂量补偿基因和几个高亲和力位点上的靶向,而不会影响启动子的结合。这表明Msl1作为支架,在MSL复合体组装中起作用,以实现X染色体的特异性靶向[9]。

DNA损伤导致Msl1选择性多腺苷酸化的转变,保护癌细胞免受化疗药物诱导的凋亡。DNA损伤通过调节RNA转录和处理重塑了细胞转录组。在癌细胞中,这些变化可以改变免疫监视和细胞死亡途径中基因的表达。研究发现,DNA损伤导致数百个基因的APA转变,PCF11是DNA损伤诱导的APA转变的重要贡献者。其中一个APA转变导致全长Msl1 mRNA亚型的上调,这保护细胞免受DNA损伤诱导的凋亡,并促进细胞在DNA损伤剂中的存活。重要的是,阻断Msl1的上调即使在p53缺失的情况下也能增强化疗药物的治疗效果,并克服化疗耐药性。这项研究表明,描述DNA损伤的适应性APA转变具有治疗意义,并揭示了PCF11、MSL复合体和DNA损伤诱导的凋亡之间的联系[10]。

综上所述,Msl1是一种在基因表达调控、剂量补偿、基因转录和染色质修饰等方面发挥重要作用的蛋白质。Msl1与CDK7的相互作用控制RNA聚合酶II Ser5的磷酸化,这对于基因表达调控至关重要。Msl1/MSL2蛋白在体外对组蛋白泛素化的分析表明,Msl1/2在核小体修饰中起着重要作用。Msl1介导的剂量补偿复合体的二聚化对于果蝇中雄性X染色体的调节是必需的。在果蝇中,Msl1蛋白的磷酸化位点的突变不会影响剂量补偿。果蝇黑色素瘤中Msl1蛋白的N末端对于剂量补偿至关重要。在真菌病原体Cryptococcus neoformans中,Msl1-like(MSIL)蛋白在cAMP依赖性和非依赖性方式中发挥着多种作用,这些作用主要独立于Ras。Msl1在果蝇中剂量补偿复合体的组装中起着核心作用,这对于剂量补偿是必需的。Msl1与MOF和MSL3结合的结构基础表明,Msl1作为支架,在MSL复合体组装中起作用,以实现X染色体的特异性靶向。DNA损伤导致Msl1选择性多腺苷酸化的转变,保护癌细胞免受化疗药物诱导的凋亡。这些研究结果突出了Msl1在多种生物学过程中的重要性,并为疾病的治疗和预防提供了新的思路和策略。

参考文献:
1. He, Yucheng, Wang, Shichao, Liu, Shenghui, Chen, Xiangmei, Zhang, Lisheng. 2023. MSL1 Promotes Liver Regeneration by Driving Phase Separation of STAT3 and Histone H4 and Enhancing Their Acetylation. In Advanced science (Weinheim, Baden-Wurttemberg, Germany), 10, e2301094. doi:10.1002/advs.202301094. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37279389/
2. Chlamydas, Sarantis, Holz, Herbert, Samata, Maria, Steinmetz, Lars M, Akhtar, Asifa. 2016. Functional interplay between MSL1 and CDK7 controls RNA polymerase II Ser5 phosphorylation. In Nature structural & molecular biology, 23, 580-9. doi:10.1038/nsmb.3233. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27183194/
3. Krajewski, Wladyslaw A, Vassiliev, Oleg L. 2019. Analysis of histone ubiquitylation by MSL1/MSL2 proteins in vitro. In Archives of biochemistry and biophysics, 666, 22-30. doi:10.1016/j.abb.2019.03.015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30930284/
4. Hallacli, Erinc, Lipp, Michael, Georgiev, Plamen, Akhtar, Asifa, Kadlec, Jan. 2012. Msl1-mediated dimerization of the dosage compensation complex is essential for male X-chromosome regulation in Drosophila. In Molecular cell, 48, 587-600. doi:10.1016/j.molcel.2012.09.014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23084835/
5. Babosha, V A, Georgiev, P G, Maksimenko, O G. 2021. Mutations of Phosphorylation Sites in MSL1 Protein Do Not Affect Dosage Compensation in Drosophila melanogaster. In Doklady. Biochemistry and biophysics, 499, 225-227. doi:10.1134/S1607672921040025. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34426916/
6. Babosha, Valentin, Klimenko, Natalia, Revel-Muroz, Anastasia, Georgiev, Pavel, Maksimenko, Oksana. 2024. N-terminus of Drosophila melanogaster MSL1 is critical for dosage compensation. In eLife, 13, . doi:10.7554/eLife.93241. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39699942/
7. Yang, Dong-Hoon, Maeng, Shinae, Strain, Anna K, Heitman, Joseph, Bahn, Yong-Sun. 2012. Pleiotropic roles of the Msi1-like protein Msl1 in Cryptococcus neoformans. In Eukaryotic cell, 11, 1482-95. doi:10.1128/EC.00261-12. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23042129/
8. Scott, M J, Pan, L L, Cleland, S B, Knox, A L, Heinrich, J. . MSL1 plays a central role in assembly of the MSL complex, essential for dosage compensation in Drosophila. In The EMBO journal, 19, 144-55. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10619853/
9. Kadlec, Jan, Hallacli, Erinc, Lipp, Michael, Cusack, Stephen, Akhtar, Asifa. 2011. Structural basis for MOF and MSL3 recruitment into the dosage compensation complex by MSL1. In Nature structural & molecular biology, 18, 142-9. doi:10.1038/nsmb.1960. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21217699/
10. Kunisky, Alexander K, Anyaeche, Vivian I, Herron, R Samuel, Park, Christopher Y, Hwang, Hun-Way. . Shift in MSL1 alternative polyadenylation in response to DNA damage protects cancer cells from chemotherapeutic agent-induced apoptosis. In Cell reports, 37, 109815. doi:10.1016/j.celrep.2021.109815. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34644577/