Jmjd7-KO 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Jmjd7-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-17153

品系全称

C57BL/6JCya-Jmjd7em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-433466-Jmjd7-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Jmjd7-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-17153) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
jumonji domain containing 7
基因别称
-
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001114637 | Ensembl: ENSMUST00000044675
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~8
敲除长度
~2.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Jmjd7,也称为Jumonji domain-containing 7,是一种重要的组蛋白赖氨酸去甲基化酶。组蛋白去甲基化是基因表达调控的重要方式,广泛参与生物过程,如动物繁殖和发育。Jmjd7属于Jumonji家族,该家族成员在多种生物学过程中发挥着重要作用,包括转录调控、细胞周期调控、细胞分化等。

研究表明,Jmjd7在多种生物学过程中发挥重要作用。例如,在头颈鳞状细胞癌(HNSCC)中,Jmjd7-PLA2G4B融合基因能够调节HNSCC细胞的增殖和存活,通过促进G1细胞周期停滞和增加饥饿诱导的细胞死亡,从而抑制HNSCC细胞的增殖[1]。此外,Jmjd7-PLA2G4B还能够调节蛋白激酶B(AKT)的磷酸化,促进HNSCC细胞的存活[1]。在骨细胞分化过程中,Jmjd7作为组蛋白去甲基化酶,负调节骨细胞分化,可能成为骨相关疾病的治疗靶点[2]。此外,Jmjd7在结肠腺癌(COAD)中发挥重要作用,其表达水平与COAD的预后相关[3]。在代谢综合征(MetS)中,Jmjd7的表达水平下调,可能与MetS的发生和发展相关[4]。在肝细胞癌(HCC)中,Jmjd7的表达水平上调,与HCC的预后相关[6]。

此外,Jmjd7在动物早期发育和生殖中也发挥重要作用。例如,在扇贝Patinopecten yessoensis中,Jmjd7的表达模式表明其可能参与调节扇贝的早期发育和生殖[5]。在自交的河鳗鱼Kryptolebias marmoratus中,Jmjd7的表达模式表明其可能参与调节河鳗鱼的发育、生殖和神经发生[7]。

综上所述,Jmjd7是一种重要的组蛋白赖氨酸去甲基化酶,在多种生物学过程中发挥重要作用,包括转录调控、细胞周期调控、细胞分化、发育和生殖等。Jmjd7的研究有助于深入理解组蛋白去甲基化修饰的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Cheng, Yingduan, Wang, Yi, Li, Jiong, Chang, Insoon, Wang, Cun-Yu. . A novel read-through transcript JMJD7-PLA2G4B regulates head and neck squamous cell carcinoma cell proliferation and survival. In Oncotarget, 8, 1972-1982. doi:10.18632/oncotarget.14081. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28030848/
2. Liu, Yingci, Arai, Atsushi, Kim, Terresa, Park, No-Hee, Kim, Reuben H. . Histone Demethylase Jmjd7 Negatively Regulates Differentiation of Osteoclast. In The Chinese journal of dental research, 21, 113-118. doi:10.3290/j.cjdr.a40437. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29808174/
3. Zhang, Jingyao, Liu, Ziyue, Chen, Wenhao, Liu, Hengchen. 2023. Identification and validation of a necroptosis-related gene prognostic signature for colon adenocarcinoma. In Translational cancer research, 12, 2239-2255. doi:10.21037/tcr-23-494. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37859737/
4. Wen, Yan, Shang, Yawen, Wang, Qing. 2022. Exploration of the Mechanism of Linoleic Acid Metabolism Dysregulation in Metabolic Syndrome. In Genetics research, 2022, 6793346. doi:10.1155/2022/6793346. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36518097/
5. Guo, Zhenyi, Zhang, Lijing, Li, Yajuan, Zhang, Lingling, Bao, Zhenmin. 2020. Expression profiling of the Kdm genes in scallop Patinopecten yessoensis suggests involvement of histone demethylation in regulation of early development and gametogenesis. In Comparative biochemistry and physiology. Part B, Biochemistry & molecular biology, 243-244, 110434. doi:10.1016/j.cbpb.2020.110434. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32201355/
6. Liu, Yuanbin, Chen, Mingkai. 2023. Histone Demethylation Profiles in Nonalcoholic Fatty Liver Disease and Prognostic Values in Hepatocellular Carcinoma: A Bioinformatic Analysis. In Current issues in molecular biology, 45, 3640-3657. doi:10.3390/cimb45040237. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37185761/
7. Fellous, Alexandre, Earley, Ryan L, Silvestre, Frederic. 2018. The Kdm/Kmt gene families in the self-fertilizing mangrove rivulus fish, Kryptolebias marmoratus, suggest involvement of histone methylation machinery in development and reproduction. In Gene, 687, 173-187. doi:10.1016/j.gene.2018.11.046. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30458291/