Rrad-KO 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Rrad-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-16694

品系全称

C57BL/6JCya-Rradem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-56437-Rrad-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Rrad-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-16694) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
Ras-related associated with diabetes
基因别称
REM3,Rad
染色体号
Chr 8 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_019662 | Ensembl: ENSMUST00000034351
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~5
敲除长度
~2.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1930943Mice homozygous for a knock-out allele are more susceptible to pressure overload-induced cardiac hypertrophy and display weaker left ventricular contractility than control mice at higher doses of dobutamine.
RRAD(Ras-related associated with diabetes)是Ras相关GTP酶超家族的一员,主要是一种细胞质蛋白,在质膜中活性。它在2型糖尿病患者中高度表达,是充血性心力衰竭的标志物。越来越多的证据表明,RRAD在肿瘤细胞的进展和转移中起着重要作用,它可能作为致癌基因或肿瘤抑制基因发挥作用,这取决于癌症类型和细胞类型。这些发现具有重要意义,因为相关的分子机制正在被揭示。RRAD在多种通路中被调控,通过调节肿瘤相关基因的表达和与多个下游效应子的相互作用,在肿瘤细胞分裂、运动、凋亡和能量代谢等广泛的细胞活动中发挥作用。此外,RRAD在衰老中的作用可能有助于其在癌症中的作用。尽管RRAD具有双重特性,但靶向治疗已成为对抗癌症的潜在治疗策略。以下是对RRAD在癌症中的双重身份、调节和下游效应子的概述,以提供对读者有价值的见解,探索RRAD在癌症中的细胞内作用,并为未来的机制研究提供参考。

RRAD在鼻咽癌中可能作为功能性的肿瘤抑制因子发挥作用。在鼻咽癌(NPC)患者中,RRAD的表达下调,RRAD的异常甲基化发生在74.3%的原发性肿瘤中,而在正常的鼻咽上皮细胞中未发现。在NPC细胞系中过表达RRAD抑制了细胞生长、集落形成和细胞迁移。这些结果表明,RRAD可能作为功能性的肿瘤抑制因子发挥作用,其表观遗传失活可能在NPC的发展中起重要作用[1]。

在卵巢癌模型中,Ras诱导的RRAD基因的表观遗传失活促进了葡萄糖摄取。RRAD(Ras-related associated with diabetes)是一种小的Ras相关GTP酶,其启动子区域的CpG岛在癌症组织中经常被DNA甲基化失活。然而,甲基化诱导的RRAD失活在肿瘤发生中的作用尚不清楚。研究发现,Ras(V12)介导的致癌转化伴随着RRAD启动子的高甲基化和RRAD表达的丧失。此外,RRAD启动子在高甲基化和卵巢癌组织中转录减少。使用DNA甲基转移酶抑制剂5-aza-2'-脱氧胞苷处理导致RRAD启动子去甲基化,并恢复了T29H细胞中的RRAD表达。此外,使用法尼基转移酶抑制剂FTI277导致RRAD表达恢复和T29H细胞中DNA甲基转移酶表达和活性的抑制。通过在T29和T29H细胞系中分别使用敲低和过表达技术,发现RRAD抑制了葡萄糖摄取和乳酸产生,这是通过抑制葡萄糖转运蛋白的表达实现的。最后,在裸鼠中过表达RRAD抑制了肿瘤形成,表明RRAD是一种肿瘤抑制基因。这些结果表明,Ras(V12)介导的致癌转化诱导了RRAD的表观遗传失活,这反过来促进了葡萄糖摄取,可能有助于卵巢癌的发生[2]。

在胃癌和结直肠癌中,RRAD的表达经常增加。RRAD的表达在胃癌和结直肠癌细胞系中经常增加,siRNA/shRNA介导的RRAD抑制导致体外和体内的肿瘤细胞增殖显著下降。与化疗联合治疗的协同效应产生。值得注意的是,PDCs中的RRAD表达显著增加,RRAD抑制抑制了PDC增殖。RRAD抑制还导致细胞侵袭减少,EMT标记物的表达降低,以及血管生成和VEGF、ANGP2等相关蛋白水平降低。这项研究表明,RRAD可能是治疗胃癌和结直肠癌的一种新型治疗靶点,尤其是在有腹膜种植的患者中[3]。

RRAD在抗病性日本比目鱼(Paralichthys olivaceus)个体中通过NF-κB途径调节抗菌免疫。RRAD是一种参与多种细胞功能的Ras GTPase超家族成员,如细胞增殖和分化。特别是,超家族作为NF-κB信号通路抑制剂和钙调节剂,参与免疫反应途径。最近的一项转录组研究揭示了rrad在抗病性日本比目鱼个体脾脏中的表达,而与易感个体相比,这一结果也得到了qPCR的验证。因此,本研究旨在探讨rrad如何通过NF-κB途径调节抗菌免疫。首先,鉴定了P. olivaceus rrad的编码序列。序列长度为1092 bp,编码364个氨基酸。基于系统发育和结构关系分析,P. olivaceus rrad与硬骨鱼类的相似性更高。接下来,评估了抗病性和易感个体在免疫相关组织中rrad表达的差异,结果表明rrad优先在抗病性个体的脾脏中表达。在埃德华氏菌感染后,脾脏中的rrad表达发生变化。在体外,进行共培养以评估抗病性脾脏中rrad启动子的低甲基化水平,这与高mRNA表达一致。使用比目鱼鳃细胞系进行siRNA介导的rrad敲低影响了rrad网络相关基因,即dcp1b、amagt、rus1、rapgef1、ralbp1、plce1、rasal1、nckipsd、prkab2、cytbc-1、sh3等,以及一些炎症相关基因,如bal2和Il-1β。此外,流式细胞术分析显示,rrad过表达更有可能诱导细胞凋亡,建立了rrad的功能与其在调节NF-κB途径中的作用之间的联系。因此,本研究在理解抗病性和易感P. olivaceus个体中rrad基因差异的免疫反应方面提供了一些见解。这项研究为鱼类rrad基因功能分析提供了分子基础,并可能为深入研究硬骨鱼类的细菌抗病性提供参考[4]。

RRAD介导的口腔鳞状细胞癌(OSCC)肿瘤边缘的增强能量代谢促进了OSCC的进展。肿瘤边缘作为侵袭前沿已被证明与OSCC的进展和转移密切相关。然而,肿瘤边缘的肿瘤细胞如何获得肿瘤进展所需的额外能量仍然未知。研究发现,OSCC肿瘤边缘的肿瘤细胞中RRAD(Ras-related glycolysis inhibitor and calcium channel regulator)的下调介导了这一过程。RRAD的缺乏增强了肿瘤细胞的葡萄糖摄取和恶性行为,无论是在体内还是体外。机制上,RRAD的下调促进了Ca2+的内流,并提高了其在细胞核中的浓度,这导致CAMKIV-CREB1轴的激活,从而诱导葡萄糖转运蛋白GLUT3的转录。GLUT抑制剂-1作为一种GLUT3抑制剂,可以抑制由于RRAD下调而引起的旺盛的能量代谢和恶性行为。总的来说,这项研究表明,RRAD介导的肿瘤边缘的增强能量代谢促进了OSCC的进展,并证明了GLUT3是未来治疗OSCC的潜在靶点[5]。

NEAT1_2/RRAD/EHF正反馈回路促进了乳头状甲状腺癌细胞的有氧糖酵解。乳头状甲状腺癌(PTC)是最常见的内分泌相关恶性肿瘤。尽管预后良好,但在一些PTC患者中可以发展为更具侵略性的疾病,导致生存率差。核斑点组装转录本1(NEAT1)增强肿瘤发生;然而,NEAT1_2与PTC中糖酵解的关系尚未确定。通过定量逆转录聚合酶链反应和免疫细胞化学确定了NEAT1_2、KDM5B、RRAD和EHF的表达。采用体外和体内实验确定了NEAT1_2、KDM5B、RRAD和EHF对PTC糖酵解的影响。采用染色质免疫沉淀(ChIP)、RNA结合蛋白免疫沉淀、荧光素酶报告基因测定和免疫共沉淀分析了NEAT1_2、KDM5B、RRAD和EHF之间的结合能力。NEAT1_2过表达与PTC中的糖酵解相关。NEAT1_2通过调节RRAD的表达激活PTC中的糖酵解。NEAT1_2通过募集KDM5B介导RRAD启动子区域的H3K4me3修饰。RRAD进一步通过结合和调节转录因子EHF的亚细胞定位来负调节糖酵解。EHF可以激活NEAT1_2、己糖激酶2和丙酮酸激酶M2的转录,从而形成NEAT1_2/RRAD/EHF反馈回路。这项研究表明,NEAT1_2/RRAD/EHF正反馈回路促进了PTC中的糖酵解,这可能会为PTC的管理提供有意义的见解[6]。

SETD8通过抑制RRAD的表达抑制了胰腺癌中的铁死亡。作为一种致癌基因,SETD8可以促进肿瘤生长和肿瘤细胞增殖。本研究旨在揭示SETD8与胰腺癌中铁死亡的关系及其在胰腺癌中的作用,为胰腺癌的综合治疗提供可能的新方向。通过RNA测序分析筛选下游靶标。Western blot、实时定量PCR(qPCR)和免疫组化显示基因之间的关系。细胞增殖分析和细胞代谢分析揭示了基因的功能。染色质免疫沉淀(CHIP)实验用于研究分子机制。通过RNA测序分析筛选出SETD8的潜在下游靶标RRAD。通过蛋白印记、实时定量PCR(qPCR)和免疫组化发现SETD8与RRAD呈负相关。通过细胞增殖分析和细胞代谢分析发现,RRAD不仅可以抑制癌细胞的增殖,还可以提高癌细胞的脂质过氧化水平。同时,使用染色质免疫沉淀分析(CHIP)探索SETD8调节RRAD表达的分子机制。SETD8抑制RRAD表达。SETD8与RRAD的启动子区域相互作用,表观遗传沉默RRAD的表达,从而降低胰腺癌细胞中的脂质过氧化水平,从而抑制胰腺癌细胞中的铁死亡,导致胰腺癌的预后不良[7]。

胰岛素受体、IRS1、IRS2、INSIG1、INSIG2、RRAD和BIAIP2基因在U87胶质瘤细胞中表达,并具有ERN1功能缺失:缺氧和谷氨酰胺或葡萄糖剥夺的影响。本研究旨在检验:1)胰岛素受体(INSR)、胰岛素受体底物1(IRS1)和2(IRS2)、胰岛素诱导基因1(INSIG1)和2(INSIG2)、Ras相关糖尿病(RRAD)和脑特异性血管生成抑制因子1相关蛋白2(BIAIP2)基因在胶质瘤细胞中的表达之间的关联;2)内质网应激信号,由内质网到核-1(ERN1)介导,并调节这些基因的表达,受缺氧和葡萄糖或谷氨酰胺剥夺的影响。通过qPCR研究了胶质瘤细胞系U87及其亚系中的INSR、IRS1、IRS2、INSIG1、INSIG2、RRAD和BIAIP2基因的表达,并使其暴露于3%的氧气和5%的二氧化碳以及葡萄糖或谷氨酰胺剥夺。阻断胶质瘤细胞中ERN1信号酶的功能导致INSR、INSIG2和IRS2基因的表达增加,以及BIAIP2和RRAD基因的表达降低。缺氧影响了INSR、IRS1、IRS2、INSIG1、INSIG2和BIAIP2基因的表达,INSIG2和IRS2基因的变化更为显著。此外,缺氧对这些基因表达的影响在很大程度上依赖于ERN1信号酶的功能。数据还表明,葡萄糖或谷氨酰胺剥夺可能会改变所研究的基因的表达,而ERN1酶功能的抑制通常会改变葡萄糖或谷氨酰胺剥夺的影响。这项研究的结果表明,U87胶质瘤细胞中INSR和相关胰岛素受体信号基因的表达依赖于ERN1酶功能,表明其参与通过内质网应激调节代谢和增殖过程,这是肿瘤生长和代谢疾病的重要组成部分。此外,缺氧和葡萄糖或谷氨酰胺剥夺主要受胰岛素受体和相关胰岛素信号基因的表达控制,这些基因大多通过ERN1酶信号发挥作用[8]。

RRAD在肺癌和乳腺癌中的甲基化和基因沉默。RRAD是一种小的Ras相关GTP酶,在人类骨骼肌、肺和心脏中高度表达。尽管据报道RRAD在乳腺癌细胞中的表达丢失,并且可能作为致癌基因,但沉默的机制尚不清楚。研究发现,20个非小细胞肺癌(NSCLC)细胞系中有14个(70%)、11个小细胞肺癌(SCLC)细胞系中有11个(100%)和10个乳腺癌细胞系中有8个(80%)失去了RRAD的表达;表达在正常的支气管和乳腺上皮细胞中未受到影响。使用脱甲基化剂处理23个表达阴性细胞系后,所有细胞系的表达均得到恢复。开发了一种从表达阴性和阳性细胞系中RRAD的5'区域分析亚硫酸氢盐测序的甲基化特异性测定方法,结果表明甲基化和表达之间具有良好的相关性。原发性肺癌和乳腺癌分别有214例中的89例(42%)和63例中的39例(62%)显示出高甲基化。RRAD的高甲基化与吸烟史和肺腺癌的较差预后相关。结论是,RRAD的表观遗传沉默是肺癌和乳腺癌中的常见事件,对其分析可能为这些癌症的预后和治疗提供新的机会[9]。

综上所述,RRAD是一个在多种细胞过程中发挥重要作用的基因,包括肿瘤细胞分裂、运动、凋亡和能量代谢等。RRAD在不同癌症类型和细胞中可能作为致癌基因或肿瘤抑制基因发挥作用,这取决于其表达水平和功能调控。RRAD的表观遗传调控,如DNA甲基化和组蛋白修饰,可能影响其表达和功能。RRAD的下游效应子包括葡萄糖转运蛋白、转录因子和信号通路蛋白等,参与调节肿瘤细胞的生长、代谢和侵袭等过程。未来研究可以进一步探讨RRAD在癌症发生发展中的具体作用机制,以及基于RRAD的靶向治疗策略。

参考文献:
1. Mo, Yingxi, Midorikawa, Kaoru, Zhang, Zhe, Oikawa, Shinji, Murata, Mariko. 2012. Promoter hypermethylation of Ras-related GTPase gene RRAD inactivates a tumor suppressor function in nasopharyngeal carcinoma. In Cancer letters, 323, 147-54. doi:10.1016/j.canlet.2012.03.042. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22487779/
2. Wang, Yan, Li, Guiling, Mao, Fengbiao, Tang, Kai-Fu, Sun, Zhong Sheng. 2014. Ras-induced epigenetic inactivation of the RRAD (Ras-related associated with diabetes) gene promotes glucose uptake in a human ovarian cancer model. In The Journal of biological chemistry, 289, 14225-38. doi:10.1074/jbc.M113.527671. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24648519/
3. Kim, Hee Kyung, Lee, Inkyoung, Kim, Seung Tae, Park, Joon Oh, Kang, Won Ki. 2019. RRAD expression in gastric and colorectal cancer with peritoneal carcinomatosis. In Scientific reports, 9, 19439. doi:10.1038/s41598-019-55767-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31857616/
4. Zhu, Ying, Yang, Xinsheng, Yang, Yingming, Li, Chao, Chen, Songlin. 2024. Identification and Functional Analysis of Ras-Related Associated with Diabetes Gene (rrad) in Edwardsiella piscicida-Resistant Individuals of Japanese Flounder (Paralichthys olivaceus). In International journal of molecular sciences, 25, . doi:10.3390/ijms251910532. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39408905/
5. Cheng, Aoming, Xu, Qiaoshi, Li, Bo, Han, Zhengxue, Feng, Zhien. 2024. The enhanced energy metabolism in the tumor margin mediated by RRAD promotes the progression of oral squamous cell carcinoma. In Cell death & disease, 15, 376. doi:10.1038/s41419-024-06759-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38811531/
6. Sun, Wei, Wang, Zhiyuan, Qin, Yuan, He, Liang, Zhang, Hao. . NEAT1_2/RRAD/EHF Positive Feedback Loop Facilitates Aerobic Glycolysis in Papillary Thyroid Cancer Cells. In Endocrinology, 164, . doi:10.1210/endocr/bqad085. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37279586/
7. Lu, Zekun, Hu, Qiangsheng, Qin, Yi, Xu, Xiaowu, Chen, Xuemin. 2023. SETD8 inhibits ferroptosis in pancreatic cancer by inhibiting the expression of RRAD. In Cancer cell international, 23, 50. doi:10.1186/s12935-023-02899-6. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36934248/
8. Minchenko, D O, Kharkova, A P, Hubenia, O V, Minchenko, O H. . Insulin receptor, IRS1, IRS2, INSIG1, INSIG2, RRAD, and BAIAP2 gene expressions in glioma U87 cells with ERN1 loss of function: effect of hypoxia and glutamine or glucose deprivation. In Endocrine regulations, 47, 15-26. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23363253/
9. Suzuki, Makoto, Shigematsu, Hisayuki, Shames, David S, Fujisawa, Takehiko, Gazdar, Adi F. 2006. Methylation and gene silencing of the Ras-related GTPase gene in lung and breast cancers. In Annals of surgical oncology, 14, 1397-404. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17195088/