Capn8-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Capn8-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-16691

品系全称

C57BL/6JCya-Capn8em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-170725-Capn8-B6J-VB

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Capn8-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-16691) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
calpain 8
基因别称
nCL-2,nCL-2'
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_130890 | Ensembl: ENSMUST00000048941
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~1.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2181366Mice homozygous for a knock-out allele or allele that produces a proteolytically inactive protein exhibit increased sensitivity to ethanol-induced gastric mucosa injury.
Capn8,也称为Calpain 8,是钙依赖性半胱氨酸蛋白酶家族的成员之一。钙依赖性半胱氨酸蛋白酶是一类在多种细胞过程中发挥重要作用的酶,包括细胞骨架重排、信号转导、细胞凋亡和细胞迁移等。Capn8在胃肠道中特异性表达,特别是在胃表面粘液细胞中。Capn8的基因结构具有高度的保守性,但也具有一些独特的特征。Capn8基因含有至少23个外显子,跨越超过50kb,并且在其基因结构中有一个独特的内含子,编码了Capn8转录本的3'端。这种独特的基因结构表明,Capn8可能通过选择性剪接产生不同的蛋白质变体,从而在细胞中发挥不同的功能[2]。

Capn8的表达受到多种因素的调控。例如,在甲状腺癌中,Capn8的表达与肿瘤微环境(TME)密切相关,其表达水平可以作为预测甲状腺癌患者预后的生物标志物。此外,Capn8的表达还受到视黄酸(RA)的调控。在早期肢芽的近端到远端轴模式形成中,Capn8的表达在远端区域中显著升高,提示Capn8可能在肢芽发育过程中发挥重要作用[1]。此外,Capn8的表达还受到其他信号通路的调控,例如Fgf、Wnt和RA信号通路等。

在胰腺癌中,Capn8的表达水平与肿瘤的侵袭和转移密切相关。研究发现,Capn8在胰腺癌组织和细胞系中高表达,并且其表达水平与肿瘤的TNM分期和患者的预后不良相关。进一步的研究发现,Capn8通过调节上皮-间质转化(EMT)和AKT/ERK信号通路,促进胰腺癌的侵袭和转移[4]。此外,Capn8还与肿瘤微环境中的免疫细胞浸润密切相关。研究发现,Capn8的表达水平与肿瘤微环境中免疫细胞的浸润程度呈负相关,提示Capn8可能通过调节免疫细胞浸润,影响肿瘤的免疫微环境,从而影响肿瘤的发生和发展[4]。

在肺癌中,Capn8的表达水平与肿瘤的侵袭和转移也密切相关。研究发现,Capn8在肺癌组织和细胞系中高表达,并且其表达水平与肿瘤的TNM分期和患者的预后不良相关。进一步的研究发现,Capn8通过调节细胞增殖、迁移和侵袭,促进肺癌的发生和发展[6]。此外,Capn8还与肿瘤的免疫微环境密切相关。研究发现,Capn8的表达水平与肿瘤微环境中免疫细胞的浸润程度呈负相关,提示Capn8可能通过调节免疫细胞浸润,影响肿瘤的免疫微环境,从而影响肿瘤的发生和发展[6]。

此外,Capn8的表达还与血清α-胡萝卜素浓度相关。研究发现,Capn8基因座与血清α-胡萝卜素浓度相关,提示Capn8可能参与调节α-胡萝卜素的代谢和转运[3]。此外,Capn8的表达还受到其他因素的影响,例如胃酸和胃蛋白酶等,这些因素可能通过影响Capn8的活性,进而影响胃黏膜的防御功能[5]。

综上所述,Capn8是一种重要的钙依赖性半胱氨酸蛋白酶,在多种生物学过程中发挥重要作用。Capn8在多种肿瘤中高表达,并且其表达水平与肿瘤的侵袭、转移和患者的预后不良相关。此外,Capn8还与肿瘤微环境中的免疫细胞浸润密切相关。Capn8的研究有助于深入理解肿瘤的发生和发展机制,为肿瘤的诊断和治疗提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Hudson, Daniel T, Bromell, Jessica S, Day, Robert C, Ward, Joanna M, Beck, Caroline W. 2022. Gene expression analysis of the Xenopus laevis early limb bud proximodistal axis. In Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists, 251, 1880-1896. doi:10.1002/dvdy.517. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35809036/
2. Hata, S, Nishi, K, Kawamoto, T, Sorimachi, H, Suzuki, K. . Both the conserved and the unique gene structure of stomach-specific calpains reveal processes of calpain gene evolution. In Journal of molecular evolution, 53, 191-203. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11523006/
3. D'Adamo, Christopher R, Dawson, Valerie J, Ryan, Kathleen A, Shuldiner, Alan R, McArdle, Patrick F. 2016. The CAPN2/CAPN8 Locus on Chromosome 1q Is Associated with Variation in Serum Alpha-Carotene Concentrations. In Journal of nutrigenetics and nutrigenomics, 9, 254-264. doi:10.1159/000452890. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28002826/
4. Song, Na, Cui, Kai, Zeng, Liqun, Su, Wei, Wang, Haijun. 2024. Calpain 8 as a potential biomarker regulates the progression of pancreatic cancer via EMT and AKT/ERK pathway. In Journal of proteomics, 301, 105182. doi:10.1016/j.jprot.2024.105182. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38697284/
5. Hata, Shoji, Abe, Manabu, Suzuki, Hidenori, Sakimura, Kenji, Sorimachi, Hiroyuki. 2010. Calpain 8/nCL-2 and calpain 9/nCL-4 constitute an active protease complex, G-calpain, involved in gastric mucosal defense. In PLoS genetics, 6, e1001040. doi:10.1371/journal.pgen.1001040. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20686710/
6. Liang, Jiaqi, Chen, Zhencong, Huang, Yiwei, Zhan, Cheng, Wang, Qun. 2022. Signatures of malignant cells and novel therapeutic targets revealed by single-cell sequencing in lung adenocarcinoma. In Cancer medicine, 11, 2244-2258. doi:10.1002/cam4.4547. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35102706/