Ddit3-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Ddit3-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-16514

品系全称

C57BL/6NCya-Ddit3em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-13198-Ddit3-B6N-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ddit3-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-16514) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
KO小鼠库模型
MAPK信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
DNA-damage inducible transcript 3
基因别称
AltDDIT3,CHOP-10,CHOP10,chop,gadd153
染色体号
Chr 10 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_007837 | Ensembl: ENSMUST00000026475
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~4
敲除长度
~1.5 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:109247Mice homozygous for a knock-out allele exhibit decreased apoptosis in different cell types.
DDIT3基因,也称为CHOP基因,位于人类染色体12q13.3上,编码一种属于CCAAT/enhancer-binding蛋白家族的转录因子。该基因在细胞增殖控制中发挥作用,特别是在正常条件下对内质网应激的反应,与其他具有基本亮氨酸拉链(bZIP)结构基序的转录因子二聚化。在细胞分化过程中,DDIT3起着重要作用,尤其是在脂肪生成过程中,它能够抑制脂肪细胞的成熟。在疾病中,FUS/EWSR1::DDIT3融合是导致粘液性脂肪肉瘤发展的致病事件。DDIT3在其他脂肪细胞肿瘤中的扩增介导了脂肪细胞样元素的存在。另一种融合,GLI1::DDIT3,在其他肿瘤中很少被记录[1]。

在谷氨酰胺缺乏的情况下,应激反应转录因子DDIT3揭示了糖酵解和线粒体呼吸之间的相互关系。DDIT3在谷氨酰胺缺乏时被诱导,以通过抑制负性糖酵解调节因子TIGAR来促进糖酵解和三磷酸腺苷的产生。同时,一部分DDIT3池转移到线粒体,并通过LONP1介导的COQ9和COX4的下调来抑制氧化磷酸化。这反过来又抑制了谷氨酰胺撤退后持续水平的活性氧。这些机制共同构成了一个适应性生存机制,使肿瘤细胞能够存活由谷氨酰胺饥饿引起的代谢应激[2]。

DNA损伤诱导转录3(DDIT3),一种应激反应基因,参与生物体的生理和病理过程,而其对于牙髓炎的影响尚未被定义。研究表明巨噬细胞极化对炎症有显著影响。实验旨在研究DDIT3对牙髓炎炎症和巨噬细胞极化的影响。与野生型小鼠相比,DDIT3敲除小鼠的炎症细胞因子和M1巨噬细胞减少,而M2巨噬细胞增加。在RAW264.7细胞和骨髓来源的巨噬细胞中,发现DDIT3增强M1极化而抑制M2极化。靶向敲除早期生长反应1(EGR1)可以挽救DDIT3敲除对M1极化的阻断作用。结果表明,DDIT3可以通过调节巨噬细胞极化来加剧牙髓炎的炎症,并通过抑制EGR1来促进M1极化。这为牙髓炎治疗和组织再生提供了新的靶点[3]。

在哺乳动物细胞中,eIF2α激酶在调节基因表达中发挥新的作用,特别是在未折叠蛋白反应(UPR)和氨基酸饥饿细胞中。当被其相应的上游应激信号激活时,哺乳动物eIF2激酶PERK和GCN2抑制大多数mRNA的翻译,但选择性地增加激活转录因子4(ATF4)的翻译,导致下游基因CHOP(GADD153)的诱导。这是第一个哺乳动物信号通路的例子,类似于研究得很好的酵母通用控制反应,其中eIF2α磷酸化激活参与氨基酸生物合成的基因。因此,哺乳动物细胞利用一个古老的途径来调节对多种应激信号的基因表达[4]。

FUS-DDIT3是一种由最常见的染色体易位t(12;16)(q13;p11)产生的嵌合癌基因,与粘液性脂肪肉瘤相关。通过转基因方法研究这种肉瘤相关的FUS-DDIT3基因融合,为它们的体内功能提供了见解,并提出了可能的谱系选择机制[5]。

内质网应激(ERS)在调节雌性哺乳动物的生殖过程中起着重要作用,主要参与卵泡闭锁和黄体退化。DNA损伤诱导转录3(DDIT3)是ERS的标记基因。本研究旨在克隆并分析雌性牦牛中DDIT3基因的序列和组织表达特征。通过逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)策略,获得了全长507-bp DDIT3-cDNA,编码168-aa蛋白质。牦牛DDIT3与野牛和马分别具有最高和最低的相似性。实时PCR分析表明,卵巢中DDIT3基因的表达水平高于心脏、肝脏、肾脏、脾脏、肺、子宫和输卵管(p < 0.05)。在妊娠期间,卵巢和子宫中的DDIT3表达水平高于卵泡期、黄体期和胎儿阶段。DDIT3在MII卵母细胞和颗粒细胞中的表达水平高于GV和MII卵母细胞(p < 0.05)。这是雌性牦牛中DDIT3基因的首次分子表征和表达模式。结果表明,DDIT3基因可能在调节牦牛卵巢功能和维持妊娠中发挥重要作用[6]。

粘液性脂肪肉瘤(MLPS)具有不同的模式,通常难以与其他软组织病变区分。MLPS的特点是涉及DNA损伤诱导转录3基因(DDIT3)的相互易位,可以使用荧光原位杂交(FISH)检测。最近发现,癌症睾丸抗原1b(CTAG1B)在MLPS中表达。本研究旨在评估免疫组化(IHC)对CTAG1B表达和DDIT3重排的诊断MLPS和区分其类似物的潜在用途。在包括MLPS及其类似物的29例病例中,CTAG1B在92.86%的MLPS病例和20%的类似物中表达。DDIT3重排100%敏感且92.86%特异地区分MLPS与其类似物。DDIT3多倍体和扩增在一些病例中被检测到。因此,CTAG1B表达和FISH检测DDIT3基因可以用来区分MLPS和类似肿瘤。CTAG1B的免疫组化和DDIT3基因重排的FISH检测比单独使用任何一个都要特异。然而,DDIT3基因重排单独是区分MLPS与其类似物最敏感的测试[7]。

粘液性脂肪肉瘤(MLPS)是有或没有圆形细胞成分的脂肪肉瘤的最常见亚型。组织学上诊断MLPS可能具有挑战性,因为许多具有粘液样变化的软组织肿瘤可能模仿MLPS,尤其是在小活检组织上。已发现t(12,16)(q13;p11)和t(12;22)(q13;q12)的染色体易位导致DDIT3(以前称为CHOP)与FUS和EWSR1的基因融合,在超过95%的病例中可以识别。因此,这些遗传改变是作为分子标记来促进这种类型肿瘤诊断的理想选择。DDIT3(12q13)双色断裂重排探针用于荧光原位杂交已商业可用。然而,其与DDIT3相关基因融合的一致性及其临床应用,包括敏感性和特异性,尚未得到充分的评估。本研究评估了探针在中期上的位点特异性,然后在8例MLPS、12例其他肉瘤和18例具有粘液分化的肿瘤上进行测试。所有8例MLPS均显示DDIT3基因断裂,而所有12例其他肉瘤均为阴性。所有DDIT3断裂的病例也通过逆转录聚合酶链反应显示FUS-DDIT3融合,一致率为100%。此外,FISH检测已在18例粘液性肿瘤上临床应用,并取得了有希望的成果。总之,FISH与DDIT3断裂探针是一种高度敏感和特异的检测DDIT3相关基因融合的检测方法,因此是诊断或鉴别诊断粘液性脂肪肉瘤的有价值辅助手段[8]。

在阿尔茨海默病(AD)中,铁死亡导致脑细胞死亡,特别是在与痴呆相关的脑区。来自AD的三个微阵列数据集(GSE5281、GSE9770、GSE28146)从基因表达综合数据库(GEO)数据集中下载。从FerrDb数据库中提取铁死亡相关基因。数据集被分为两组。GSE5281和GSE9770用于识别铁死亡相关基因,而GSE28146用于验证结果。在这个过程中,进行了蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)、基因本体(GO)和京都基因与基因组百科全书(KEGG)通路富集分析。最后,通过受试者工作特征(ROC)单因素分析确定了铁死亡相关基因的差异化值,以判断它们作为生物标志物的潜在质量。获得了24个铁死亡相关基因。使用STRING(https://cn.string-db.org/)和Cytoscape与CytoHubba,确定了前10个基因(RB1、AGPAT3、SESN2、KLHL24、ALOX15B、CA9、GDF15、DPP4、PRDX1、UBC、FTH1、ASNS、GOT1、PGD、ATG16L1、SLC3A2、DDIT3、RPL8、VDAC2、GLS2、MTOR、HSF1、AKR1C3、NCF2)作为靶基因。GO分析表明,对羧酸分解代谢过程、有机酸分解代谢过程、α-氨基酸生物合成过程和细胞氨基酸生物合成过程是最富集的术语。KEGG分析显示,这些重叠基因富集在p53信号通路、长寿调节通路、mTOR信号通路、2型糖尿病和铁死亡中。创建了箱形图和小提琴图并验证了确定靶基因的重要性。此外,进行了ROC单因素分析以确定确定基因的诊断价值。随后获得了两个基因(ASNS、SESN2)。对于这两个基因,使用STRING获得了五个相关基因,并确定了这些基因的富集GO术语和KEGG通路。结果表明,ASNS和SESN2可能作为AD的潜在诊断生物标志物,并为铁死亡在AD中的重要作用提供了额外的证据[9]。

DNA损伤诱导转录3(DDIT3),一种候选肿瘤抑制基因(TSG),已被发现参与细胞生长和分化的调节。最近认识到TSGs的表观遗传改变是慢性粒细胞白血病(CML)发展的异常机制。本研究旨在调查CML患者中DDIT3基因的甲基化状态。使用甲基化特异性PCR(MSP)检测53例CML患者的骨髓单个核细胞中DDIT3启动子的甲基化状态。通过实时定量PCR(RQ-PCR)确定DDIT3和bcr/abl转录本的表达水平。收集并分析了这些患者的临床数据。发现53例CML病例中有35例(66%)DDIT3基因启动子存在异常甲基化。DDIT3启动子高甲基化与CML患者的年龄、性别、血红蛋白浓度、血小板计数、染色体异常、bcr/abl转录本和分期之间没有相关性(P > 0.05),但与CML病例的白细胞计数相关(R = 0.781,P < 0.001)。CML患者中DDIT3转录本的水平显著低于对照组(中位数3.28 vs 19.69,P < 0.001),然而,甲基化阳性CML病例(0.05-65.32,中位数2.13)和甲基化阴性CML病例(0.12-126.04,中位数3.92)之间的DDIT3转录本水平没有差异(P > 0.05)。结果表明,CML中DDIT3的异常甲基化发生频繁[10]。

综上所述,DDIT3基因在细胞增殖控制、内质网应激反应、细胞分化、疾病(特别是癌症)发展以及诊断测试中发挥着重要作用。DDIT3基因在粘液性脂肪肉瘤中起着关键作用,并且DDIT3基因重排可以作为诊断和区分类似病变的分子标记。此外,DDIT3在代谢应激反应中发挥作用,并在牙髓炎炎症中通过调节巨噬细胞极化发挥作用。DDIT3基因的甲基化状态在慢性粒细胞白血病中发生异常,表明其可能在该疾病的发展中发挥作用。总之,DDIT3基因的研究为理解其在生物学过程和疾病中的作用提供了重要信息,并为开发新的诊断和治疗策略提供了潜在的靶点。

参考文献:
1. Diaz-Perez, Julio A, Kerr, Darcy A. 2024. Gene of the month: DDIT3. In Journal of clinical pathology, 77, 211-216. doi:10.1136/jcp-2023-208963. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38053287/
2. Li, Mingyue, Thorne, Rick Francis, Shi, Ronghua, Wu, Mian, Liu, Lianxin. 2021. DDIT3 Directs a Dual Mechanism to Balance Glycolysis and Oxidative Phosphorylation during Glutamine Deprivation. In Advanced science (Weinheim, Baden-Wurttemberg, Germany), 8, e2003732. doi:10.1002/advs.202003732. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34105294/
3. Wang, Yan, He, Ying, Dong, Wei, Yang, Chang, Wang, Jiawei. 2023. DDIT3 aggravates pulpitis by modulating M1 polarization through EGR1 in macrophages. In International immunopharmacology, 120, 110328. doi:10.1016/j.intimp.2023.110328. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37235961/
4. Harding, H P, Novoa, I, Zhang, Y, Schapira, M, Ron, D. . Regulated translation initiation controls stress-induced gene expression in mammalian cells. In Molecular cell, 6, 1099-108. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11106749/
5. Pérez-Mancera, P A, Sánchez-García, I. . Understanding mesenchymal cancer: the liposarcoma-associated FUS-DDIT3 fusion gene as a model. In Seminars in cancer biology, 15, 206-14. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15826835/
6. Wu, Jian-Fei, Liu, Yu, Zi, Xiang-Dong, Lu, Jian-Yuan, Jing, Tian. 2021. Molecular cloning, sequence, and expression patterns of DNA damage induced transcript 3 (DDIT3) gene in female yaks (Bos grunniens). In Animal biotechnology, 34, 280-287. doi:10.1080/10495398.2021.1957686. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34353209/
7. Abdelaziz, Marwa M, Tayel, Hanan Y, Abdel-Bary, Amany, Badawy, Omnia M. 2021. Expression of CTAG1B clone EPR13780 versus DDIT3 gene rearrangement distinguishes myxoid liposarcoma from its mimics with detection of novel DDIT3 gene copy number variations. In Journal of histotechnology, 45, 56-65. doi:10.1080/01478885.2021.2004294. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34845972/
8. Narendra, Sonia, Valente, Alfredo, Tull, Jamie, Zhang, Shengle. . DDIT3 gene break-apart as a molecular marker for diagnosis of myxoid liposarcoma--assay validation and clinical experience. In Diagnostic molecular pathology : the American journal of surgical pathology, part B, 20, 218-24. doi:10.1097/PDM.0b013e3182107eb9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22089349/
9. Wang, Binyang, Fu, Chenyang, Wei, Yuanyuan, Yin, Yong, Qin, Dongdong. 2022. Ferroptosis-related biomarkers for Alzheimer's disease: Identification by bioinformatic analysis in hippocampus. In Frontiers in cellular neuroscience, 16, 1023947. doi:10.3389/fncel.2022.1023947. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36467613/
10. Wang, Ya-li, Qian, Jun, Lin, Jiang, Zhu, Zhao-hui, Li, Jian-yong. 2010. Methylation status of DDIT3 gene in chronic myeloid leukemia. In Journal of experimental & clinical cancer research : CR, 29, 54. doi:10.1186/1756-9966-29-54. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20492726/