Creld2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Creld2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-16180

品系全称

C57BL/6NCya-Creld2em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-76737-Creld2-B6N-VC

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Creld2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-16180) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cysteine-rich with EGF-like domains 2
基因别称
5730592L21Rik
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_029720 | Ensembl: ENSMUST00000024042
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 5
敲除长度
~0.2 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1923987Male mice homozygous for a knock-out allele show increased susceptibility to hepatic steatosis after pharmacological ER stress induction, increased susceptibility to age-related hepatic steatosis, and decreased susceptibility to diet-induced hepatic steatosis. Females mice do not develop hepatic steatosis with progressing age.
Creld2,即富含半胱氨酸的蛋白质,具有表皮生长因子(EGF)样结构域2,是一种在哺乳动物中发现的蛋白质。Creld2是CRELD家族的第二个成员,该家族的第一个成员是CRELD1,也被称为AVSD2基因,其突变与心脏房室间隔缺损(AVSD)有关。Creld2在发育过程中广泛表达,并在成熟组织中持续表达。最近的研究表明,Creld2的一个特定异构体(CreLD2β)是α4β2烟碱型乙酰胆碱受体表达的调节因子,这表明CRELD家族在发育事件和后续细胞功能中具有广泛多样的生物学作用[1]。

Creld2基因通过荧光原位杂交(FISH)技术被定位在22q13,而不是之前报道的22p13。比较基因组分析显示,上游序列中存在一个高度保守的区域,具有启动子区域的标志性特征。功能分析表明,该区域具有启动子活性。与Creld2的广泛表达一致,该区域富含GC且缺乏TATA框。总体而言,Creld2在成人内分泌组织中的表达水平最高。然而,Creld2的剪接变体广泛存在,大多数正常胎儿和成人组织都表达了几种已确认的剪接变体。这些剪接变体编码5种不同的Creld2异构体,其组成存在显著差异,表明Creld2的功能是多样化的,目前尚不完全清楚[1]。

Creld2是一种新的内质网(ER)应激诱导基因。在Neuro2a细胞中,通过微阵列分析,Creld2被鉴定为Thapsigargin(Tg)诱导的基因。Creld2 mRNA也被证明是由ER应激诱导剂tunicamycin和brefeldin A立即诱导的。在Creld2启动子的基因组序列中,发现了一个典型的ER应激反应元件(ERSE),该元件在多种物种中高度保守。通过使用荧光素酶报告分析,证明了小鼠Creld2中的ERSE是功能性的,并且对Tg和ATF6过表达有反应。小鼠Creld2启动子中ATF6或NF-Y结合位点的每个突变都显著降低了基础活性和对ER应激刺激的反应性。研究表明,Creld2可能是调节ER应激相关疾病发生和进展的新介质[2]。

Creld2是一种新型的钙释放和钙调神经磷酸酶-NFAT信号通路的调节因子,在破骨细胞分化过程中发挥作用。Creld2是一种ER定位的伴侣蛋白,具有钙结合特性。Creld2是一种ER应激调节基因,已证实参与骨骼发育不良的发病机制,并在软骨细胞和成骨细胞的分化中发挥重要作用。尽管Creld2在骨骼发育和骨形成中具有既定作用,但其目前在破骨细胞中的作用尚不清楚。研究表明,Creld2在破骨细胞分化早期通过转运转化生长因子β1(TGF-β1)发挥新作用,这导致Nfat2的表达上调,Nfat2是破骨细胞分化的主要调节因子。尽管有这一发现,但研究发现,Creld2的过表达会损害破骨细胞的分化,这是由于钙依赖性磷酸酶calcineurin的活性降低。这反过来又导致核因子活化T细胞1(NFATc1)的去磷酸化受阻,从而阻止其核定位和作为促破骨生成转录因子的激活。结果表明,Creld2在破骨细胞分化过程中调节钙通量,具有重要的生理意义,对骨重塑和骨骼疾病的发病机制有重要影响[3]。

Creld2和天冬酰胺连接糖基化12同源物(ALG12)基因作为双向(头对头)基因对排列,并由一个共同的启动子调控。这个短的基因间区域包含一个ER应激反应元件(ERSE)序列,并在人类、大鼠和小鼠基因组中高度保守。微阵列分析显示,在Neuro2a细胞中,Tg作为ER应激诱导剂处理时,Creld2和ALG12 mRNA的表达以时间依赖性方式诱导。其他ER应激诱导剂tunicamycin和brefeldin A也增加了Neuro2a细胞中这两种mRNA的表达。使用双向报告构建体的变体,测试了基因间区域中的ERSE基序和其他调节位点在Creld2和ALG12基因转录调控中的可能作用。关于Creld2-ALG12基因对的启动子活性,整个基因间区域对Tg几乎没有反应,而含有ERSE基序的Creld2启动子构建体对Tg表现出显著的响应性。ALG12基因中的ERSE基序在相反方向上对Tg的反应性较低。然而,这个基序与每个转录起始位点之间的方向和距离对这两个基因对Tg治疗的反应性没有影响。此外,在基因间区域发现了三个潜在的序列,它们拮抗ERSE介导的转录激活。结果表明,小鼠Creld2和ALG12基因排列为独特的双向基因对,并且它们可能通过ATF6和多个其他转录因子的相互作用来调节[4]。

Creld2是一种重要的ER应激诱导蛋白,主要由ATF6调控。在Neuro2a细胞中,CRELD2蛋白在心脏和骨骼肌中的表达可以忽略不计。在Tm处理后,与生长停滞和DNA损伤诱导基因153(GADD153)的快速诱导相比,Neuro2a细胞中的CRELD2表达在晚期阶段被诱导。另一方面,另一种ER应激诱导剂Thapsigargin增加了Neuro2a细胞中内源性Creld2的分泌。研究发现,CRELD2不仅与自身相互作用,而且与Neuro2a细胞中的ER定位蛋白相互作用。此外,研究发现,CRELD2缺陷的Neuro2a细胞对Tm处理的反应性降低,表明Creld2缺陷的Neuro2a细胞对Tm刺激更加敏感。这些发现提供了Creld2的新的分子特征,其进一步的特征描述将为我们理解ER稳态和ER应激诱导的细胞功能障碍提供新的见解[5]。

Creld2表达受多种因素通过转录和转录后机制调节。通过构建各种荧光素酶报告器,发现Creld2启动子中一个保守的ATF6结合元件在ATF6短暂过表达时被激活。研究发现,ATF6缺陷显著抑制了Tm诱导的非糖基化CRELD2的表达。这种减少反映了CRELD2转录水平的降低。另一方面,小鼠Creld2启动子中一个假定的ATF4结合位点对Tm刺激没有反应,但ATF4的丧失导致CRELD2 mRNA和蛋白表达减少,伴随着Tm诱导的ATF6表达的降低。相反,GADD34(ATF4下游因子)的短暂抑制抑制了Tm诱导的CRELD2蛋白表达,而没有降低ATF6蛋白表达。此外,通过生成各种CRELD2和NHK(一种已知的ERAD底物,即α1-抗胰蛋白酶截短突变体)构建体,研究了CRELD2与NHK的结合。当Creld2的N端CXXC基序中的半胱氨酸被丙氨酸取代时,观察到这些蛋白的共免疫沉淀。发现这两种蛋白之间的相互作用是二硫键非依赖性的。这些发现表明,Creld2的表达受多种因素通过转录和转录后机制调节。此外,Creld2的N端结构,包括CXXC基序,可能在目标蛋白的结合中发挥作用。未来,识别和表征与Creld2相互作用的因子将有助于理解各种ER应激条件下的蛋白质稳态[6]。

Creld2是内质网蛋白,具有钙结合特性。研究表明,Creld2与α1-抗胰蛋白酶截短突变体NHK结合,但与COMP(另一个已知的ERAD底物)不结合。这表明Creld2可能在ER相关蛋白降解(ERAD)过程中具有选择性。此外,Creld2的CXXC基序对于与NHK的结合是必要的,因为当CXXC基序中的半胱氨酸被丙氨酸取代时,结合消失。这表明Creld2的N端结构在ERAD中的作用中可能发挥重要作用[6]。

Creld2是一种新型的ER应激诱导蛋白,与多种生物学过程相关。Creld2在心脏房室间隔缺损、ER应激、破骨细胞分化、基因调控、钙释放和信号传导等方面发挥作用。Creld2的表达受多种因素调控,包括ATF6、ATF4和GADD34。Creld2的N端结构可能在目标蛋白的结合中发挥作用。Creld2的研究有助于深入理解ER应激的分子机制和生物学功能,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Maslen, Cheryl L, Babcock, Darcie, Redig, Jennifer K, Akkari, Yassmine M, Olson, Susan B. 2006. CRELD2: gene mapping, alternate splicing, and comparative genomic identification of the promoter region. In Gene, 382, 111-20. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16919896/
2. Oh-hashi, Kentaro, Koga, Hisashi, Ikeda, Shun, Hirata, Yoko, Kiuchi, Kazutoshi. 2009. CRELD2 is a novel endoplasmic reticulum stress-inducible gene. In Biochemical and biophysical research communications, 387, 504-10. doi:10.1016/j.bbrc.2009.07.047. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19615339/
3. Duxfield, Adam, Munkley, Jennifer, Briggs, Michael D, Dennis, Ella P. 2022. CRELD2 is a novel modulator of calcium release and calcineurin-NFAT signalling during osteoclast differentiation. In Scientific reports, 12, 13884. doi:10.1038/s41598-022-17347-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35974042/
4. Oh-Hashi, Kentaro, Koga, Hisashi, Ikeda, Shun, Hirata, Yoko, Kiuchi, Kazutoshi. 2010. Role of an ER stress response element in regulating the bidirectional promoter of the mouse CRELD2 - ALG12 gene pair. In BMC genomics, 11, 664. doi:10.1186/1471-2164-11-664. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21106106/
5. Oh-Hashi, Kentaro, Fujimura, Keito, Norisada, Junpei, Hirata, Yoko. 2018. Expression analysis and functional characterization of the mouse cysteine-rich with EGF-like domains 2. In Scientific reports, 8, 12236. doi:10.1038/s41598-018-30362-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30111858/
6. Hinaga, Shohei, Kandeel, Mahmoud, Oh-Hashi, Kentaro. 2024. Molecular characterization of the ER stress-inducible factor CRELD2. In Cell biochemistry and biophysics, 82, 1463-1475. doi:10.1007/s12013-024-01300-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38753249/