Steap4-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Steap4-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-15854

品系全称

C57BL/6JCya-Steap4em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-117167-Steap4-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Steap4-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-15854) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
STEAP family member 4
基因别称
1110021O17Rik,Tiarp,Tnfaip9
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_054098.3 | Ensembl: ENSMUST00000115421
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~2.6 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1923560Mice homozygous for a knock-out allele exhibit adipose accumulation, oxidative stress, increased liver weight, lower metabolic rate, hypoactivity, insulin resistance, glucose intolerance, mild hyperglycemia and dyslipidemia.
STEAP4,也称为六跨膜上皮抗原前列腺4,是一种在多种生物学过程中发挥重要作用的蛋白质。STEAP4是一种新型抗肥胖基因,在肥胖患者的脂肪组织中显著下调。STEAP4的表达受多种炎症细胞因子、激素或脂肪因子的调节。在脂肪组织中,STEAP4的表达水平与胰岛素敏感性相关。STEAP4的过表达可以改善葡萄糖摄取和线粒体功能,增加胰岛素敏感性。STEAP4在调节胰岛素抵抗、脂肪细胞分化和脂质代谢中发挥重要作用。

STEAP4在肥胖和胰岛素抵抗中发挥重要作用。肥胖是一种多因素疾病,由遗传易感基因和环境因素相互作用导致。肥胖被认为是胰岛素抵抗的主要危险因素。STEAP4是一种新型抗肥胖基因,在肥胖患者的脂肪组织中显著下调。过表达STEAP4可以改善葡萄糖摄取和线粒体功能,增加胰岛素敏感性。STEAP4的表达受多种炎症细胞因子、激素或脂肪因子的调节。这些发现表明STEAP4在调节胰岛素抵抗中发挥重要作用[1]。

STEAP4在脂肪细胞分化和脂质代谢中发挥重要作用。STEAP4是一种新型血浆膜蛋白,在肥胖患者中下调,可能在人类肥胖的发生发展中发挥重要作用。STEAP4的过表达可以促进成熟人类脂肪细胞中胰岛素刺激的葡萄糖摄取。进一步的研究发现,脂肪因子如肿瘤坏死因子α(TNFα)、白细胞介素-6(IL-6)和瘦素调节STEAP4的表达。这些结果表明STEAP4不参与人类脂肪细胞的分化,但它参与调节人类脂肪细胞的胰岛素敏感性[2]。

STEAP4在脂质代谢和脂肪形成中发挥重要作用。叉头框蛋白O1(FOXO1)参与脂肪细胞分化和脂质代谢,但其具体机制尚不清楚。干扰FOXO1可以促进牛脂肪细胞的G1/S转化,通过增强增殖标志基因PCNA、CDK1、CDK2、CCNA2、CCNB1和CCNE2的表达,从而积极调节牛脂肪细胞的增殖。此外,干扰FOXO1负调节脂肪生成分化标志基因PPARG和CEBPA以及脂质合成标志基因ACC、FASN、SCD1、SREBP1、FABP4、ACSL1、LPL和DGAT1的表达,从而降低甘油三酯(TG)含量并抑制牛脂肪细胞中脂滴的生成。转录组和代谢组分析表明,FOXO1可以通过影响AMPK和PI3K/AKT通路来调节牛的脂质生成。重要的是,染色质免疫沉淀(ChIP)和定点突变分析表明,FOXO1可以通过结合CD36和STEAP4基因的启动子区域并影响它们的转录活性来调节牛的脂质生成。这些结果为研究FOXO1在牛脂肪生成中的作用和分子机制奠定了基础[3]。

STEAP4在肥胖和相关的疾病中发挥重要作用。肥胖是一种多因素疾病,其中环境和遗传因素发挥着综合作用。确定这样的靶基因将有助于阐明肥胖和糖尿病等复杂疾病的发病机制,这些疾病通常同时出现。一项研究调查了STEAP4和HIF-1α在病态肥胖患者内脏和皮下脂肪组织中的表达水平。内脏脂肪组织中STEAP4的表达显著高于皮下组织。随着BMI的增加,内脏STEAP4的表达也降低。此外,表达子HbA1C超过6的患者也较低。此外,与组I相比,组II中皮下和内脏HIF-1α的表达显著升高。BMI、糖化血红蛋白、STEAP4和HIF-1α基因表达之间存在显著的相关性。肥胖和相关疾病与肥胖个体脂肪组织中的低度炎症有关。STEAP4蛋白家族等代偿性过程被促炎刺激所压倒。由于组织缺氧和促炎刺激,肥胖个体的HIF-1α表达增加,导致内脏STEAP4表达增加[4]。

STEAP4在肝癌的发生发展中发挥重要作用。该研究旨在寻找参与肝癌发生发展的有希望的癌症治疗靶点。通过RNA测序,在GSE54503和TCGA数据集中鉴定了STEAP4在HCC中的表达。通过qRT-PCR确定了STEAP4 mRNA表达水平。DNA甲基化通过MSP和BSP测定。此外,通过体内实验确定了STEAP4对肿瘤发生的影响。STEAP4对甲基化的影响通过脱甲基化剂5-Aza-dC进一步评估。发现HCC组织中STEAP4表达降低。启动子区域甲基化与STEAP4的下调表达相关。STEAP4抑制HCC细胞的增殖和转移。5-Aza-dC诱导STEAP4的重表达。STEAP4通过PI3K/AKT/mTOR通路抑制介导HCC细胞生物学效应。这些发现表明STEAP4是HCC中的抑制基因,而高甲基化是癌症进展的驱动因素[5]。

STEAP4在脂肪细胞分化中发挥重要作用。本研究旨在研究六跨膜上皮抗原前列腺4(STEAP4)基因,基于克隆的山羊STEAP4基因序列。分析了其分子和表达特征,并通过过表达探讨了其对山羊皮下脂肪细胞分化的影响。使用逆转录PCR(RT-PCR)克隆山羊STEAP4序列,并使用在线工具分析分子特征。使用实时定量PCR(qPCR)检测STEAP4在山羊组织和皮下脂肪细胞分化中的表达水平。使用脂质体转染、BODIPY、油红O染色和qPCR探讨过表达STEAP4对脂肪细胞分化的影响。结果显示,克隆的山羊STEAP4基因序列为1388 bp,完整的编码序列(CDS)区域为1197 bp,编码398个氨基酸。与预测序列(XM_005679300.3)相比,山羊STEAP4的CDS区域有3个碱基突变,A188G、T281C和A507G。其中,A507G将位置170的氨基酸从异亮氨酸变为缬氨酸。蛋白质的物理和化学性质分析表明,STEAP4是一种稳定的亲水性碱性蛋白。STEAP4基因在山羊肝脏组织中的表达水平最高(P < 0.01),其次是肺和背部皮下脂肪组织。STEAP4在山羊皮下脂肪细胞分化过程中的不同时间点表现出不同的表达水平。分化后期的表达高于分化前,而在12小时时最低(P < 0.01)。过表达STEAP4促进了细胞内脂滴的积累;CCAAT增强子结合蛋白β(C/EBP β)显著上调(P < 0.01),脂肪酸结合蛋白(aP2)显著上调(P < 0.05)。结论:过表达STEAP4可以促进山羊皮下前脂肪细胞的分化。这项研究为深入研究STEAP4在山羊脂质沉积中的作用奠定了基础[6]。

STEAP4在动脉粥样硬化和血糖波动中发挥重要作用。促动脉粥样硬化和抗动脉粥样硬化因素之间的平衡在动脉粥样硬化病变的发展中非常重要。虽然已知STEAP4在单核细胞中的表达是抗动脉粥样硬化的,但没有研究报告饮食诱导的肥胖早期或血糖波动事件中循环单核细胞中STEAP4表达的状态。研究人员通过在常规饲料和西方饮食喂养的大鼠中每天两次诱导血糖峰值,持续一周,并分析了外周血单个核细胞(PBMCs)中的基因表达变化。研究人员还进行了RAW 264.7细胞的实验,以深入了解体内发现的一些情况。饮食诱导的肥胖和血糖波动独立地导致PBMCs中STEAP4 mRNA表达显著增加。这还伴随着大量促炎细胞因子、趋化因子和趋化因子受体的诱导。然而,西方饮食和血糖峰值联合的效果是微弱且非累加的。在体外环境中,无论是葡萄糖峰值、持续的血糖升高,还是棕榈酸和胰岛素的结合,都会导致STEAP4和促炎基因表达的平行增加。然而,这在使用4-辛基衣康酸或p38MAPK和NF-kB抑制剂时显著减弱。单核细胞中的STEAP4表达是由炎症或氧化应激的增加所诱导的。由于内脏肥胖或血糖波动导致循环单核细胞中STEAP4表达的增加是一种代偿性反应[7]。

STEAP4在高血糖和S100B诱导的肾小球系膜细胞中的作用。六跨膜上皮抗原前列腺4(Steap4)敲除小鼠出现高血糖和炎症,而Steap4过表达可以减轻糖尿病小鼠的动脉粥样硬化。因此,研究人员研究了Steap4在高血糖(HG,27.5 mM)或S100B(1 μM,晚期糖基化终末产物受体或RAGE的配体)诱导的肾小球系膜(MES13)细胞中的作用。研究人员发现,HG诱导的Steap4蛋白表达依赖于S100B。HG增加了细胞膜,而不是细胞质中的Steap4蛋白表达。HG增加了Steap4和S100B之间的蛋白-蛋白相互作用,这通过免疫沉淀S100B的质谱分析得到证实。SP600125、LY294002和AG490减弱了S100B诱导的Steap4蛋白表达或基因转录活性。Steap4启动子构建体中信号转导和激活转录因子3(Stat3)位点2的突变导致HG或S100B诱导的Steap4基因转录激活明显降低。Steap4的过表达减弱了HG或S100B诱导的胶原蛋白IV、纤连蛋白和环氧合酶2蛋白表达。Steap4的过表达减弱了HG或S100B诱导的转化生长因子-β(TGF-β)。此外,Steap4的过表达减弱了S100B诱导的信号传导。最后,Steap4的过表达减弱了链脲佐菌素诱导的糖尿病小鼠肾脏中纤连蛋白、S100B、TGF-β、IV型胶原蛋白、p-Akt、p-细胞外信号调节激酶1/2和p-Stat3的表达。因此,Steap4的过表达减弱了HG或S100B诱导的MES13细胞的作用,并减弱了糖尿病小鼠肾脏中S100B诱导的一些作用[8]。

STEAP4在肥胖儿童中的表达和临床意义。该研究的目的是研究肥胖相关基因STEAP4在肥胖儿童中的表达和临床意义。研究人员招募了53名肥胖儿童和33名体重正常的儿童(对照组)参与这项研究。通过逆转录聚合酶链反应和酶联免疫吸附测定分别检测了脂肪组织中STEAP4 mRNA和蛋白的表达水平,以分析STEAP4 mRNA和蛋白水平与肥胖儿童的血压、血脂、血糖水平和炎症之间的关系。与正常对照组相比,肥胖儿童的脂肪组织中STEAP4 mRNA和蛋白水平显著降低(P < 0.05)。肥胖儿童表现出显著升高的舒张压(DBP)、收缩压(SBP)、总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、低密度脂蛋白(LDL)、空腹血糖(FPG)、白细胞介素(IL)-6和肿瘤坏死因子(TNF)-α水平,以及显著降低的高密度脂蛋白(HDL)水平(P < 0.05)。相关性分析表明,STEAP4表达与DBP、SBP、TC、TG、LDL、FPG、IL-6和TNF-α水平呈负相关,与HDL水平呈正相关(P < 0.05)。结论:肥胖儿童的脂肪组织中STEAP4表达显著下调,并与这些患者的血压、血脂、血糖和炎症密切相关;因此,这些结果为治疗儿童肥胖提供了理论基础[9]。

STEAP4是一种重要的蛋白质,在肥胖、胰岛素抵抗、脂肪细胞分化和脂质代谢等生物学过程中发挥重要作用。STEAP4的表达受多种炎症细胞因子、激素或脂肪因子的调节。STEAP4的过表达可以改善葡萄糖摄取和线粒体功能,增加胰岛素敏感性。STEAP4在调节胰岛素抵抗、脂肪细胞分化和脂质代谢中发挥重要作用。STEAP4在肥胖和相关的疾病中发挥重要作用,包括肥胖、胰岛素抵抗、脂肪细胞分化和脂质代谢。STEAP4在动脉粥样硬化和血糖波动中也发挥重要作用。STEAP4在高血糖和S100B诱导的肾小球系膜细胞中的作用。STEAP4在肥胖儿童中的表达和临床意义。STEAP4的研究有助于深入理解肥胖、胰岛素抵抗和脂质代谢的发病机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Chen, Xiaoling, Huang, Zhiqing, Zhou, Bo, Liu, Guangmang, Zhao, Hua. 2014. STEAP4 and insulin resistance. In Endocrine, 47, 372-9. doi:10.1007/s12020-014-0230-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24627165/
2. Chen, Xiaohui, Zhu, Chun, Ji, Chenbo, Qian, Lingmei, Guo, Xirong. . STEAP4, a gene associated with insulin sensitivity, is regulated by several adipokines in human adipocytes. In International journal of molecular medicine, 25, 361-7. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20127040/
3. Song, Yaping, Zhang, Jiupan, Jiang, Chao, Ma, Yun, Wei, Dawei. 2023. FOXO1 regulates the formation of bovine fat by targeting CD36 and STEAP4. In International journal of biological macromolecules, 248, 126025. doi:10.1016/j.ijbiomac.2023.126025. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37506793/
4. Ozmen, Fusun, Ozmen, M Mahir, Gelecek, Sibel, Moran, Munevver, Sahin, Tevfik Tolga. 2016. STEAP4 and HIF-1α gene expressions in visceral and subcutaneous adipose tissue of the morbidly obese patients. In Molecular immunology, 73, 53-9. doi:10.1016/j.molimm.2016.03.008. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27058639/
5. Tang, Yijie, Wang, Yingda, Xu, Xiaodong, Sun, Hongxia, Tang, Weidong. 2022. STEAP4 promoter methylation correlates with tumorigenesis of hepatocellular carcinoma. In Pathology, research and practice, 233, 153870. doi:10.1016/j.prp.2022.153870. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35390632/
6. Li, Xin, Zhang, Hao, Wang, Yong, Zhu, Jiangjiang, Lin, Yaqiu. 2022. Overexpression of goat STEAP4 promotes the differentiation of subcutaneous adipocytes. In Archives animal breeding, 65, 397-406. doi:10.5194/aab-65-397-2022. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36415757/
7. Shayo, Sigfrid Casmir, Ogiso, Kazuma, Kawade, Shigeru, Deguchi, Takahisa, Nishio, Yoshihiko. 2021. Dietary obesity and glycemic excursions cause a parallel increase in STEAP4 and pro-inflammatory gene expression in murine PBMCs. In Diabetology international, 13, 358-371. doi:10.1007/s13340-021-00542-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35463853/
8. Chuang, Chao-Tang, Guh, Jinn-Yuh, Lu, Chi-Yu, Chen, Hung-Chun, Chuang, Lea-Yea. 2015. Steap4 attenuates high glucose and S100B-induced effects in mesangial cells. In Journal of cellular and molecular medicine, 19, 1234-44. doi:10.1111/jcmm.12472. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25817898/
9. Zhang, Chun-Mei, Chi, Xia, Wang, Bin, Li, Xiao-Nan, Guo, Xi-Rong. . Downregulation of STEAP4, a highly-expressed TNF-alpha-inducible gene in adipose tissue, is associated with obesity in humans. In Acta pharmacologica Sinica, 29, 587-92. doi:10.1111/j.1745-7254.2008.00793.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18430367/