Gpx1-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Gpx1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-15789

品系全称

C57BL/6JCya-Gpx1em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-14775-Gpx1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Gpx1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-15789) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
glutathione peroxidase 1
基因别称
CGPx,GPx-1,GSHPx-1,Gpx
染色体号
Chr 9 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008160 | Ensembl: ENSMUST00000082429
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1~2
敲除长度
~1.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:104887Homozygotes for targeted null mutations show increased sensitivity to the oxidative stress agents paraquat and hydrogen peroxide and to ischemia/reperfusion and cold-induced brain injury. Mutants also show paradoxical bradykinin-induced vasoconstriction.
谷胱甘肽过氧化物酶1(Glutathione peroxidase 1,GPX1)是一种广泛且丰富表达的抗氧化酶。GPX1利用谷胱甘肽作为底物,催化过氧化氢、脂质过氧化物和过氧硝酸盐,从而降低细胞内的氧化应激。GPX1基因在转录、转录后和翻译水平上受到调控。许多病例对照研究和荟萃分析评估了GPX1基因的功能性遗传多态性(名为Pro198Leu,rs1050450 C>T)与不同人群中癌症易感性的关联。GPX1多态性作为癌症风险的候选标志物具有类型特异性效应,但关于GPX1变异与癌症易感性的关联在不同研究中仍然存在争议。GPX1在大多数类型的癌症中异常升高,但在不同癌症中具有复杂的双重作用,既是肿瘤抑制因子又是肿瘤促进因子。GPX1可以参与多种信号通路,调节肿瘤生物学行为,包括细胞增殖、凋亡、侵袭、免疫反应和化疗耐药性。进一步的研究需要阐明GPX1作为各种恶性肿瘤的潜在预后生物标志物和新型治疗靶点的临床意义[4]。

在结直肠癌中,研究发现GPX1基因在42%的结直肠癌中存在杂合性缺失(LOH),表明GPX1基因在癌症发展中的重要作用[1]。此外,GPX1基因的表达水平与急性髓细胞性白血病(AML)患者的预后密切相关。高表达的GPX1与不良预后相关,与骨髓来源的抑制细胞(MDSCs)、单核细胞和T细胞耗竭的表达水平呈正相关,与CD4+和CD8+ T细胞的低表达水平呈负相关。沉默GPX1的表达可以降低AML细胞的活力和CCR2的表达。此外,GPX1相关的预后标志物(GPS)是一个独立的风险因素,具有较高的受试者工作特征(ROC)曲线下的面积(AUC)值。基于GPS的高风险组不仅富含内吞作用,将线粒体转移到化疗反应中以促进AML细胞的存活,而且还富含NOTCH、WNT和TLR信号通路,这些通路促进化疗耐药性[2]。

在胶质母细胞瘤(GBM)中,研究发现剪接因子NONO在GBM样本中的表达增加,并与患者的不良生存相关。敲低NONO的表达可以抑制GBM的生长,而过表达NONO可以促进GBM的肿瘤发生。RNA测序分析表明,敲低NONO导致全球性的前mRNA内含子保留,并导致GPX1和CCN1的特定前mRNA的异常剪接。NONO与另一个DBHS蛋白家族成员PSPC1结合,定位于GPX1前mRNA内含子中的一个保守基序。敲低NONO通过GPX1的异常剪接损害肿瘤生长、侵袭和氧化还原稳态。最后,NONO的小分子抑制剂Auranofin在体内抑制GBM肿瘤生长[3]。

在乳腺癌中,研究发现GPX1基因的表达水平在肿瘤组织中显著下调,与良性组织相比降低了7.4%。此外,ESR1和GPX1基因的表达水平在肿瘤组织和非肿瘤组织中显著相关。这些数据表明,ESR1和GPX1的表达下调与临床病理学因素无关,而ESR1 mRNA水平随着肿瘤等级的增加而降低。此外,在恶性乳腺组织中,GPX1和ESR1基因表达相互依赖,需要进一步研究来确定这种关系背后的机制[6]。

在子宫内膜癌中,研究发现GPX1基因多态性与子宫内膜癌的易感性无相关性。然而,DIO2基因多态性与子宫内膜癌的易感性相关,CC纯合子的风险比TT纯合子高1.99倍。携带DIO2基因多态性的个体可能更容易发展为子宫内膜癌[7]。

在噪声性听力损失(NIHL)中,研究发现GPX1基因多态性与NIHL的易感性相关。在调整了吸烟状况等协变量后,发现rs1987628位点的基因型与NIHL的发生风险相关。携带rs1987628 GA基因型的个体比携带GG基因型的个体具有更高的NIHL风险,调整后的优势比(OR)值为1.803。同时,携带rs1987628 GA+AA基因型的个体比携带GG基因型的个体具有更高的NIHL风险,调整后的OR值为1.762。这表明GPX1基因多态性可能是NIHL的遗传易感因素[5]。

在自闭症谱系障碍(ASD)中,研究发现GPX1基因的GCG重复多态性与ASD相关。ASD患者中ALA5等位基因的频率较高。此外,与ALA7变异体相比,ALA5变异体的GPX1蛋白活性较低。这表明ALA5 GPX1变异体可能在ASD中发挥作用[8]。

在小鼠肝脏中,研究发现GPX1基因编码线粒体谷胱甘肽过氧化物酶。在野生型小鼠肝脏中,富含线粒体的部分具有H2O2还原GPX活性,约为胞质中特异活性的二分之一。与野生型小鼠肝脏的胞质相比,Gpx1敲除小鼠肝脏的胞质中GPX活性不到0.5%,线粒体中无GPX活性。这些观察结果表明,线粒体GPX是Gpx1基因的产物[9]。

在恶性胸膜间皮瘤(MPM)中,研究发现GPX1基因的表达水平在MPM组织中显著升高,与附近正常胸膜组织相比。GPX1基因的表达水平在MPM的诊断中具有重要特异性,可以区分MPM和正常组织。此外,研究发现GPX1表达水平与患者的生存相关。高GPX1表达水平的患者的中位总生存期约为16个月,而低GPX1表达水平的患者的中位总生存期约为40个月[10]。

综上所述,GPX1基因在多种癌症和其他疾病中发挥着重要作用。GPX1基因的异常表达和基因多态性与癌症的发生、发展和预后密切相关。GPX1基因的异常剪接和与其他基因的相互作用也可能影响疾病的进展。进一步的研究需要阐明GPX1在癌症和其他疾病中的具体作用机制,以及其在临床诊断和预后评估中的应用价值。

参考文献:
1. Hu, Yajun, Benya, Richard V, Carroll, Robert E, Diamond, Alan M. . Allelic loss of the gene for the GPX1 selenium-containing protein is a common event in cancer. In The Journal of nutrition, 135, 3021S-3024S. doi:10.1093/jn/135.12.3021S. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16317164/
2. Zhang, Jian, Peng, Yuhui, He, Yan, Guo, Penxiang, Zhang, Qifang. 2021. GPX1-associated prognostic signature predicts poor survival in patients with acute myeloid leukemia and involves in immunosuppression. In Biochimica et biophysica acta. Molecular basis of disease, 1868, 166268. doi:10.1016/j.bbadis.2021.166268. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34536536/
3. Wang, Xu, Han, Mingzhi, Wang, Shuai, Li, Xingang, Wang, Jian. 2022. Targeting the splicing factor NONO inhibits GBM progression through GPX1 intron retention. In Theranostics, 12, 5451-5469. doi:10.7150/thno.72248. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35910786/
4. Zhao, Yangjing, Wang, Hui, Zhou, Jingdong, Shao, Qixiang. 2022. Glutathione Peroxidase GPX1 and Its Dichotomous Roles in Cancer. In Cancers, 14, . doi:10.3390/cancers14102560. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35626163/
5. Li, J Y, Jiao, J, Chen, G S, Zhang, H L, Yu, S F. . [Association between GPX1 gene polymorphisms and noise-induced hearing loss]. In Zhonghua lao dong wei sheng zhi ye bing za zhi = Zhonghua laodong weisheng zhiyebing zazhi = Chinese journal of industrial hygiene and occupational diseases, 38, 116-120. doi:10.3760/cma.j.issn.1001-9391.2020.02.008. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32306674/
6. Król, Magdalena B, Galicki, Michał, Grešner, Peter, Wąsowicz, Wojciech, Gromadzińska, Jolanta. 2018. The ESR1 and GPX1 gene expression level in human malignant and non-malignant breast tissues. In Acta biochimica Polonica, 65, 51-57. doi:10.18388/abp.2016_1425. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29543921/
7. Janowska, Magdalena, Potocka, Natalia, Paszek, Sylwia, Zawlik, Izabela, Kluz, Tomasz. 2022. An Assessment of GPX1 (rs1050450), DIO2 (rs225014) and SEPP1 (rs7579) Gene Polymorphisms in Women with Endometrial Cancer. In Genes, 13, . doi:10.3390/genes13020188. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35205233/
8. Carducci, Federica, Ardiccioni, Chiara, Fiorini, Rosamaria, Barucca, Marco, Biscotti, Maria Assunta. 2022. The ALA5/ALA6/ALA7 repeat polymorphisms of the glutathione peroxidase-1 (GPx1) gene and autism spectrum disorder. In Autism research : official journal of the International Society for Autism Research, 15, 215-221. doi:10.1002/aur.2655. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34997988/
9. Esworthy, R S, Ho, Y S, Chu, F F. . The Gpx1 gene encodes mitochondrial glutathione peroxidase in the mouse liver. In Archives of biochemistry and biophysics, 340, 59-63. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9126277/
10. Gharib, Amal F, Alaa Eldeen, Muhammad, Khalifa, Amany Salah, Soltan, Mohamed A, Raafat, Nermin. 2021. Assessment of Glutathione Peroxidase-1 (GPX1) Gene Expression as a Specific Diagnostic and Prognostic Biomarker in Malignant Pleural Mesothelioma. In Diagnostics (Basel, Switzerland), 11, . doi:10.3390/diagnostics11122285. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34943522/