Pcdhgb6-KO 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Pcdhgb6-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-15461

品系全称

C57BL/6JCya-Pcdhgb6em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-93703-Pcdhgb6-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Pcdhgb6-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-15461) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
protocadherin gamma subfamily B, 6
基因别称
-
染色体号
Chr 18 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_033578.3 | Ensembl: ENSMUST00000003599
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~2418 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
PCDHGB6,全称为protocadherin γ subfamily B, 6,是一种属于原钙粘蛋白γ亚家族的基因。原钙粘蛋白是一类重要的细胞粘附分子,它们在细胞通讯和信号转导中发挥关键作用。PCDHGB6基因在人体中广泛表达,尤其在神经元和上皮细胞中。它的表达模式表明其在细胞间的相互作用和组织的构建中扮演着重要角色。

PCDHGB6基因的启动子区域甲基化状态在多种癌症中发生改变,这表明它可能与癌症的发生和发展有关。甲基化是一种常见的表观遗传修饰,它可以沉默基因的表达。在非小细胞肺癌(NSCLC)中,PCDHGB6的启动子区域经常发生甲基化,这可能导致其表达沉默,进而影响肿瘤的生长和转移[1]。此外,在乳腺癌中,PCDHGB6的启动子区域也被发现存在异常甲基化,这提示它可能作为一种潜在的癌症生物标志物[2]。

为了检测PCDHGB6的启动子区域甲基化状态,研究者们开发了一种基于微流控芯片的数字PCR技术。该技术利用甲基化敏感的限制性内切酶HpaII,可以区分甲基化和非甲基化的DNA。通过这种方法,研究者们在早期肺癌的样本中检测到PCDHGB6的启动子区域存在高甲基化现象[3]。此外,量子点(QD)基的荧光共振能量转移(FRET)方法也被用于检测PCDHGB6的启动子区域甲基化状态。该方法具有较高的灵敏度和特异性,可以用于NSCLC的早期诊断[6][7]。

除了在癌症中发挥作用,PCDHGB6基因的启动子区域甲基化状态还可能与某些疾病的发生风险相关。例如,在口腔上皮细胞中,PCDHGB6的启动子区域甲基化状态可能与肺癌的发生风险有关。研究者们发现,PCDHGB6的启动子区域甲基化在肺癌患者中更为常见,这提示它可能作为一种潜在的肺癌风险评估的生物标志物[4]。

此外,PCDHGB6基因的启动子区域甲基化状态还可能与药物依赖的发生风险相关。在一项针对甲基苯丙胺依赖的研究中,研究者们发现PCDHGB6的启动子区域甲基化状态与甲基苯丙胺依赖的发生风险相关。这表明PCDHGB6的启动子区域甲基化状态可能作为一种潜在的药物依赖风险评估的生物标志物[5]。

综上所述,PCDHGB6基因的启动子区域甲基化状态在多种癌症和疾病中发生改变,这提示它可能作为一种潜在的癌症和疾病生物标志物。通过开发高灵敏度和特异性的检测方法,我们可以更准确地评估PCDHGB6的启动子区域甲基化状态,从而为癌症和疾病的早期诊断和治疗提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Liu, Fangming, Zhang, Honglian, Lu, Shaohua, Zhang, Qiqing, Mao, Hongju. 2018. Quantitative assessment of gene promoter methylation in non-small cell lung cancer using methylation-sensitive high-resolution melting. In Oncology letters, 15, 7639-7648. doi:10.3892/ol.2018.8321. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29725463/
2. Miyamoto, Kazuaki, Fukutomi, Takashi, Akashi-Tanaka, Sadako, Sugimura, Takashi, Ushijima, Toshikazu. . Identification of 20 genes aberrantly methylated in human breast cancers. In International journal of cancer, 116, 407-14. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15818620/
3. Wu, Zhenhua, Bai, Yanan, Cheng, Zule, Mao, Hongju, Zhao, Jianlong. 2017. Absolute quantification of DNA methylation using microfluidic chip-based digital PCR. In Biosensors & bioelectronics, 96, 339-344. doi:10.1016/j.bios.2017.05.021. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28525852/
4. Harada, Hiroaki, Miyamaoto, Kazuaki, Kimura, Masami, Taniyama, Kiyomi, Okada, Morihito. 2018. Lung cancer risk stratification using methylation profile in the oral epithelium. In Asian cardiovascular & thoracic annals, 27, 87-92. doi:10.1177/0218492318813443. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30417685/
5. Xiao, Jing, Ma, Yitian, Wang, Xiaochen, Lin, Huali, Guan, Fanglin. 2022. The Vulnerability to Methamphetamine Dependence and Genetics: A Case-Control Study Focusing on Genetic Polymorphisms at Chromosomal Region 5q31.3. In Frontiers in psychiatry, 13, 870322. doi:10.3389/fpsyt.2022.870322. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35669261/
6. Ma, Yunfei, Bai, Yanan, Mao, Hailei, Zhong, Xinhua, Mao, Hongju. 2016. A panel of promoter methylation markers for invasive and noninvasive early detection of NSCLC using a quantum dots-based FRET approach. In Biosensors & bioelectronics, 85, 641-648. doi:10.1016/j.bios.2016.05.067. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27240011/
7. Ma, Yunfei, Zhang, Honglian, Liu, Fangming, Zhong, Xinhua, Mao, Hongju. . Highly sensitive detection of DNA methylation levels by using a quantum dot-based FRET method. In Nanoscale, 7, 17547-55. doi:10.1039/c5nr04956c. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26446775/