Chia1-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Chia1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-15356

品系全称

C57BL/6NCya-Chia1em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-81600-Chia1-B6N-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Chia1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-15356) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
chitinase, acidic 1
基因别称
2200003E03Rik,AMCase,Chia,YNL
染色体号
Chr 3 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_023186 | Ensembl: ENSMUST00000079132
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~8
敲除长度
~14.4 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1932052Homozygous knockout causes increased neutrophil and lymphocyte counts in bronchoalveolar lavage in certain pulmonary allergen exposure experiments, but immune response to various pulmonary allergen exposures is unchanged.
Chia1是一种酸性几丁质酶基因,其编码的蛋白质具有水解几丁质的能力。几丁质是一种在许多生物体中存在的多糖,尤其在昆虫的外骨骼、真菌的细胞壁和甲壳类动物的甲壳中含量丰富。Chia1基因的表达和调控对于许多生物过程至关重要,包括营养获取、防御机制、生殖隔离和物种形成等。

在微生物中,几丁质酶基因的表达可以帮助微生物获取营养。例如,在海洋细菌Vibrio harveyi中,ChiA基因编码的几丁质酶蛋白具有一个几丁质结合结构域,该结构域能够帮助几丁质酶蛋白与几丁质结合并水解它。研究显示,具有几丁质结合结构域的ChiA1蛋白比没有该结构域的ChiA2蛋白具有更高的几丁质水解活性,这表明几丁质结合结构域对于几丁质酶的功能至关重要[5]。

在植物中,几丁质酶基因的表达可以作为一种防御机制。例如,在油菜Brassica juncea中,BjCHI1基因编码的几丁质酶蛋白具有两个几丁质结合结构域,该蛋白的表达可以被伤害和茉莉酸甲酯(MeJA)处理所诱导,但不能被乙烯、水杨酸或脱落酸所诱导。这表明BjCHI1基因的表达可能参与植物对伤害和病原体的防御反应[4]。

在哺乳动物中,几丁质酶基因的表达也与营养获取和疾病发生有关。例如,食蚁兽和穿山甲是两种具有高度相似食蚁习性的哺乳动物,它们都具有几丁质酶基因,但食蚁兽的CHIA基因家族成员比穿山甲的多。研究显示,食蚁兽和穿山甲的几丁质酶基因在不同的组织中表达,这表明它们可能通过不同的途径来降解几丁质[2]。

除了营养获取和防御机制外,几丁质酶基因的表达还与生殖隔离和物种形成有关。例如,在Petunia属植物中,ChiA1基因编码的几丁质酶/溶菌酶蛋白与杂交坏死的发生有关。杂交坏死是一种后合子隔离机制,它会导致杂交后代的细胞死亡。研究发现,ChiA1基因的表达水平非常高,并且与染色体2和7上的其他基因紧密连锁,这些基因可能参与了Petunia属植物的适应性进化,并促进了物种的形成[1]。

最后,几丁质酶基因的表达还与人类疾病有关。例如,在煤矿工人肺尘埃沉着病(CWP)的研究中,Chia1基因的表达水平在肺尘埃沉着病小鼠的肺上皮细胞中明显升高,这表明Chia1基因可能参与了肺尘埃沉着病的发生和发展。此外,研究还发现,维生素D可以抑制Chia1基因的表达,并可能有助于减轻肺尘埃沉着病的症状[3]。

综上所述,Chia1基因的表达和调控对于许多生物过程至关重要,包括营养获取、防御机制、生殖隔离和物种形成等。Chia1基因在不同生物体中的表达模式和功能有所不同,这表明几丁质酶基因的进化可能受到环境因素和遗传因素的综合影响。未来研究需要进一步探讨Chia1基因的表达调控机制和功能,以及其在不同生物体中的作用和意义。

参考文献:
1. Li, Chaobin, Binaghi, Marta, Pichon, Vivien, Hanemian, Mathieu, Kuhlemeier, Cris. 2023. Tight genetic linkage of genes causing hybrid necrosis and pollinator isolation between young species. In Nature plants, 9, 420-432. doi:10.1038/s41477-023-01354-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36805038/
2. Allio, Rémi, Teullet, Sophie, Lutgen, Dave, Lefébure, Tristan, Delsuc, Frédéric. . Transcriptomic Data Reveal Divergent Paths of Chitinase Evolution Underlying Dietary Convergence in Anteaters and Pangolins. In Genome biology and evolution, 17, . doi:10.1093/gbe/evaf002. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39780438/
3. Mu, Min, Li, Bing, Zou, Yuanjie, Tao, Xinrong, Wang, Jianhua. 2022. Coal dust exposure triggers heterogeneity of transcriptional profiles in mouse pneumoconiosis and Vitamin D remedies. In Particle and fibre toxicology, 19, 7. doi:10.1186/s12989-022-00449-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35057792/
4. Zhao, K J, Chye, M L. . Methyl jasmonate induces expression of a novel Brassica juncea chitinase with two chitin-binding domains. In Plant molecular biology, 40, 1009-18. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10527425/
5. Svitil, Amy L, Kirchman, David L. . A chitin-binding domain in a marine bacterial chitinase and other microbial chitinases: implications for the ecology and evolution of 1,4-beta-glycanases. In Microbiology (Reading, England), 144 ( Pt 5), 1299-1308. doi:10.1099/00221287-144-5-1299. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9611805/