Clasp1-KO 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Clasp1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-14926

品系全称

C57BL/6JCya-Clasp1em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-76707-Clasp1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Clasp1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-14926) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
CLIP associating protein 1
基因别称
1700030C23Rik,5730583A19Rik,B130045P17Rik,CLASP1alpha
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001293300.1 | Ensembl: ENSMUST00000190571
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 9~16
敲除长度
~9384 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
CLASP1,即细胞骨架相关蛋白1,是一种在细胞骨架中发挥关键作用的蛋白。它属于CLASP家族,该家族成员主要参与非中心微管的稳定,这对于神经元形成、轴突运输和神经元迁移至关重要。CLASP1在脑发育中扮演着重要角色,并且与多种生物学过程相关,包括细胞分裂、细胞骨架组织和细胞内运输等。

CLASP1基因的变异与多种疾病相关。例如,一项研究发现,双等位基因CLASP1变异与原发性小头症、严重的神经发育迟缓和早期发病的难治性癫痫相关[1]。这种变异导致了一种典型的脑发育异常,称为脑裂症,其中后部梯度比前部梯度更严重,同时伴随着胼胝体压部的薄/发育不全、侧脑室的轻度扩大以及脑桥发育不全。这些发现强调了CLASP1在脑发育中的重要作用,并表明识别的变异破坏了CLASP1与微管细胞骨架的相互作用,导致脑裂症的发病机制。

CLASP1还与高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)的水平有关。研究表明,HDL-C的遗传风险评分的表型表达依赖于HDL-C在人群中的分布(定量依赖性表达)。这可能是因为遗传突变对HDL代谢的影响是浓度依赖性的。研究发现,一些之前报道的HDL基因-生活方式相互作用可能归因于定量依赖性表达。这些研究包括饮食、酒精、体力活动、肥胖和吸烟等因素与ABCA1、ADH3、ANGPTL4、APOA1、APOA4、APOA5、APOC3、APOE、CETP、CLASP1、CYP7A1、GALNT2、LDLR、LHX1、LIPC、LIPG、LPL、MVK-MMAB、PLTP、PON1、PPARα、SIRT1、SNTA1和UCP1等基因的变异的相互作用。这些研究发现,与较低HDL-C浓度相关的条件下的生活方式条件与较大的遗传效应大小相关。这表明这些报道的相互作用可能是由于选择了区分高和低HDL-C浓度的受试者(例如,瘦与超重、活跃与久坐、高脂肪与高碳水化合物饮食、饮酒者与戒酒者、非吸烟者与吸烟者),产生了较大或较小的遗传效应大小[2]。

CLASP1在卵巢癌的发生和发展中也起着重要作用。一项研究发现,在97例卵巢癌样本中,CLASP1是唯一与无病生存期(DFS)相关的基因,而在先前实验中,它与其他临床终点和BRCA1基因突变相关。这表明CLASP1可能是卵巢癌患者预后预测的潜在生物标志物[3]。

CLASP1还参与原虫寄生虫克鲁兹锥虫的感染过程。研究发现,急性沉默CLASP1会损害克鲁兹锥虫内吞作用,而不会降低钙调节的溶酶体外排能力。此外,克鲁兹锥虫空泡与宿主溶酶体的融合以及其近核定位在CLASP1耗尽细胞中也会延迟。这些后期现象与CLASP1敲低细胞中溶酶体向心运输的普遍损害相关,并模拟了动力蛋白破坏的影响。这项研究提供了克鲁兹锥虫感染过程的新的分子见解,强调了寄生虫诱导的信号传导、宿主微管正端跟踪蛋白和动力蛋白介导的逆向运输之间的功能性联系[4]。

CLASP1在结肠癌细胞中的微管生成中也发挥着作用。研究发现,CLASP1或TPX2的耗尽会显著延迟非中心微管组织中心(ncMTOC)的形成,表明这些蛋白可能在γ-微管蛋白模板缺失的情况下促进微管核化。CLASP1还加速了间期γ-微管蛋白非依赖性微管再生长。因此,微管生成可以通过在没有γ-微管蛋白模板的情况下由MAPs促进[5]。

CLASP1在肌强直性肌营养不良(DM1)的校正中也发挥着作用。研究发现,使用CRISPR-Cas9技术切除CTG重复扩张后,DM1诱导的多能干细胞(iPSC)衍生的心肌细胞中的斑点状核仁核仁焦核蛋白消失。这与RNA测序和选择性剪接分析确定的潜在的剪接校正相关。研究发现,在比较同基因CRISPR-Cas9校正的DM1心肌细胞与非校正的DM1心肌细胞时,与心脏功能、细胞信号传导和其他DM1相关基因相关的许多候选基因的剪接模式存在显著差异。这些发现表明,CLASP1在心脏功能和细胞信号传导中发挥着重要作用,并且在肌强直性肌营养不良的校正中起着关键作用[6]。

CLASP1在中心纺锤体的动态性中也发挥着作用。研究发现,在分裂中期,中心纺锤体的动态性逐渐降低,这与中心纺锤体在晚中期形成过程中的“捆绑、滑动和压缩”模型一致。EB1正端跟踪蛋白显示微管生长普遍减慢,而PRC1则像其酵母同源物Ase1一样,与压缩的反平行微管重叠结合得越来越紧密。KIF4A和CLASP1更动态地结合到中心纺锤体上,但也显示出周转速度减慢。这些结果表明,中心纺锤体在分裂过程中逐渐变得更加稳定[7]。

CLASP1与中心体蛋白E(CENP-E)相互作用,以促进微管周转和极向流动。研究发现,CENP-E通过其马达活性独立地招募CLASP1和CLASP2到着丝粒上。CLASP1和CLASP2的耗尽或CENP-E的耗尽会导致着丝粒微管极向流动和周转率的显著和可比较的减少,并挽救Kif2a耗尽细胞中的纺锤体两极性。这表明CENP-E整合了两个关键功能,这对于准确的染色体运动和纺锤体结构至关重要:一个依赖于其马达活性,另一个涉及将关键的微管调节因子靶向到着丝粒[8]。

CLASP1在寄生虫泰勒虫的转化过程中也发挥着作用。研究发现,CLASP1在寄生虫膜复合物EB1/CD2AP/CLASP1与肿瘤抑制因子STAG2(一种粘合复合物亚基)之间的相互作用中发挥作用。此外,还发现CLASP1与许多与各种癌症相关的宿主核蛋白相互作用,这表明CLASP1在宿主细胞转化和与癌症相关的途径中可能发挥着重要作用[9]。

CLASP1在哺乳动物细胞的分裂纺锤体组织和着丝粒对齐中也发挥着重要作用。研究发现,同时耗尽CLASP1和CLASP2会导致分裂纺锤体缺陷和显著的分裂中期延迟,这通常会导致异常的分裂中期退出。分裂中期延迟与着丝粒张力降低、着丝粒摆动增加和微管生长速度加快相关。研究发现,CLASP2与着丝粒的结合依赖于其C端结构域,但独立于微管或与CLIP-170的结合。这表明CLASPs在着丝粒上表现出类似于在皮质上的活性,通过局部减少微管末端生长/缩短事件的发生幅度来提供明显的微管稳定。这种局部微管稳定对于形成正常的分裂中期纺锤体、完成分裂后期和细胞分裂至关重要[10]。

综上所述,CLASP1是一种重要的细胞骨架相关蛋白,在脑发育、HDL-C水平、卵巢癌、克鲁兹锥虫感染、结肠癌细胞微管生成、肌强直性肌营养不良校正、中心纺锤体动态性、微管周转和极向流动、寄生虫泰勒虫转化和哺乳动物细胞分裂纺锤体组织等方面发挥着重要作用。CLASP1的研究有助于深入理解其在多种生物学过程中的功能和作用机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Alsafh, Rawan, Alhashem, Amal, Elsyed, Aly, Thabet, Farah, Tabarki, Brahim. 2024. Multiplex Consanguineous Family Highlights CLASP1 as a Candidate Gene for Lissencephaly. In Neurology. Genetics, 10, e200172. doi:10.1212/NXG.0000000000200172. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39040917/
2. Williams, Paul T. 2020. Quantile-Dependent Expressivity and Gene-Lifestyle Interactions Involving High-Density Lipoprotein Cholesterol. In Lifestyle genomics, 14, 1-19. doi:10.1159/000511421. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33296900/
3. Lisowska, Katarzyna Marta, Olbryt, Magdalena, Dudaladava, Volha, Jarząb, Barbara, Kupryjańczyk, Jolanta. 2014. Gene expression analysis in ovarian cancer - faults and hints from DNA microarray study. In Frontiers in oncology, 4, 6. doi:10.3389/fonc.2014.00006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24478986/
4. Zhao, Xiaoyan, Kumar, Praveen, Shah-Simpson, Sheena, Wittmann, Torsten, Burleigh, Barbara A. 2012. Host microtubule plus-end binding protein CLASP1 influences sequential steps in the Trypanosoma cruzi infection process. In Cellular microbiology, 15, 571-84. doi:10.1111/cmi.12056. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23107073/
5. Tsuchiya, Kenta, Goshima, Gohta. 2021. Microtubule-associated proteins promote microtubule generation in the absence of γ-tubulin in human colon cancer cells. In The Journal of cell biology, 220, . doi:10.1083/jcb.202104114. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34779859/
6. Dastidar, Sumitava, Majumdar, Debanjana, Tipanee, Jaitip, Chuah, Marinee K, VandenDriessche, Thierry. 2021. Comprehensive transcriptome-wide analysis of spliceopathy correction of myotonic dystrophy using CRISPR-Cas9 in iPSCs-derived cardiomyocytes. In Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy, 30, 75-91. doi:10.1016/j.ymthe.2021.08.004. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34371182/
7. Asthana, Jayant, Cade, Nicholas I, Normanno, Davide, Lim, Wei Ming, Surrey, Thomas. 2021. Gradual compaction of the central spindle decreases its dynamicity in PRC1 and EB1 gene-edited cells. In Life science alliance, 4, . doi:10.26508/lsa.202101222. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34580180/
8. Maffini, Stefano, Maia, Ana R R, Manning, Amity L, Compton, Duane A, Maiato, Helder. 2009. Motor-independent targeting of CLASPs to kinetochores by CENP-E promotes microtubule turnover and poleward flux. In Current biology : CB, 19, 1566-72. doi:10.1016/j.cub.2009.07.059. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19733075/
9. Brühlmann, Francis, Perry, Carmen, Griessen, Charlotte, Woods, Kerry, Olias, Philipp. 2024. TurboID mapping reveals the exportome of secreted intrinsically disordered proteins in the transforming parasite Theileria annulata. In mBio, 15, e0341223. doi:10.1128/mbio.03412-23. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38747635/
10. Mimori-Kiyosue, Yuko, Grigoriev, Ilya, Sasaki, Hiroyuki, Tsukita, Shoichiro, Vorobjev, Ivan. . Mammalian CLASPs are required for mitotic spindle organization and kinetochore alignment. In Genes to cells : devoted to molecular & cellular mechanisms, 11, 845-57. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16866869/