Pcgf5-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Pcgf5-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-14787

品系全称

C57BL/6JCya-Pcgf5em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-76073-Pcgf5-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Pcgf5-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-14787) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
polycomb group ring finger 5
基因别称
0610009F02Rik,1110054A01Rik,5830406C17Rik,5830443C21Rik,9530023M17Rik
染色体号
Chr 19 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001368691.1 | Ensembl: ENSMUST00000225411
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~7
敲除长度
~8373 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1923505Bone marrow cells from mice homozygous for a conditional allele exhibit normal hematopoietic and progenitor cell function.
Pcgf5,也称为Polycomb group RING finger protein 5,是一种多梳蛋白复合体1(PRC1)相关复合物的组成部分,催化组蛋白H2A在赖氨酸119位点的单泛素化(H2AK119ub1),这是一种与基因抑制相关的表观遗传标记。Pcgf5在多种生物学过程中发挥重要作用,包括细胞分化、发育、代谢和疾病发生。

Pcgf5在神经分化中发挥着关键作用。研究表明,Pcgf5是小鼠胚胎干细胞(mESCs)向神经细胞命运分化的必要条件[1]。Pcgf5的缺失会阻断mESC的神经分化,并激活SMAD2/TGF-β信号通路。Pcgf5的缺失功能会损害H2AK119ub1和H3K27me3在神经特异性基因周围的减少,并使它们保持抑制状态。这些结果表明,Pcgf5可能既作为SMAD2/TGF-β信号通路的抑制因子,又作为神经分化的促进因子。

Pcgf5在早期胚胎神经诱导中发挥着重要作用。研究表明,Pcgf5的敲低导致神经标记物Sox2、Zfp521和Pax6的表达水平显著降低,而多能标记物Oct4和Nanog的表达水平升高。相反,Pcgf5的过表达上调了Sox2和Pax6的表达,同时下调了Oct4和Nanog的表达。此外,Pcgf5通过激活Notch1/Hes1抑制Wnt3的表达,最终控制神经干细胞的分化命运[2]。在斑马鱼中进行的体内实验进一步证实了Pcgf5在神经诱导和神经细胞命运决定中的重要作用。

Pcgf5在造血干细胞和祖细胞(HSPCs)中的作用也得到了研究。研究表明,Pcgf5在造血干细胞(HSCs)和多能祖细胞(MPPs)中表达较高,而在已承诺的髓系祖细胞和分化细胞中表达较低。Pcgf5的缺失导致H2AK119ub1水平显著降低,但并未发现H2AK119ub1水平的变化与基因表达水平有显著相关性。这些结果表明,Pcgf5在HSPCs中的作用有限,可以被其他PRC1相关复合物所补偿[3]。

Pcgf5还与帕金森病(PD)的发生发展相关。研究表明,Pcgf5是PD相关染色质调节因子之一,与PD的免疫功能相关。Pcgf5的表达水平与PD的发生发展相关,可以作为PD诊断和治疗的新靶点[4]。

Pcgf5在体外分化的过程中影响多种发育信号通路。研究表明,Pcgf5的敲除导致胚胎干细胞(mESCs)向中胚层-心脏细胞类型的分化延迟,特别是外胚层。Pcgf5的缺失影响胚胎体形成过程中的上皮-间质转化,并影响Nodal和Wnt等关键发育信号通路的基因表达。此外,Pcgf5的缺失导致Notch通路相关基因的抑制,这可以解释Pcgf5敲除胚胎体中观察到的心肌细胞成熟增强和外胚层-神经分化减弱[5]。

AUTS2剪接异构体在神经元分化中发挥着重要作用。研究表明,当神经元分化开始时,AUTS2的表达从长异构体转移到短异构体。酵母双杂交筛选发现,长异构体和短异构体都与剪接因子SF3B1相互作用,而长异构体与多梳蛋白PCGF3和PCGF5特异性相互作用。报告基因实验表明,长AUTS2异构体的第一个外显子具有转录抑制功能,而短异构体部分具有转录激活功能,这些功能都受细胞环境的影响。PCGF3的表达水平影响长AUTS2异构体激活或抑制转录的能力。Auts2杂合突变的小鼠胚胎干细胞(mESCs)在体外皮质生成过程中细胞死亡增加,而过度表达人类AUTS2转录本可以显著挽救这种现象。Auts2基因缺失的小鼠胚胎干细胞(mESCs)表现出过早的神经元分化,而过表达AUTS2,特别是长转录本,则表现出多能性标记物的表达增加和分化延迟。这些数据表明,AUTS2异构体的精确表达对于调节转录和神经元分化的时间至关重要[6]。

Pcgf5在脑梗死(CI)的发生发展中可能发挥作用。研究表明,与正常对照组相比,CI患者的血清中存在512个差异表达的已知lncRNA,其中371个上调,141个下调,421个已知mRNA差异表达,其中245个上调,176个下调。差异表达的mRNA主要富集在53个基因功能中,目标基因富集在HTLV-I感染和癌症通路等通路中。此外,lnc-ZNF32-1:1和lnc-PCGF5-2:1在CI组和正常对照组的血清lncRNA表达中具有潜在的诊断价值[7]。

NKL同源框基因在B细胞发育和淋巴瘤中发挥作用。研究表明,NKL同源框基因在早期造血和T细胞发育中具有特定的表达模式。在正常B细胞发育中,HHEX和NKX6-3是唯一在幼稚B细胞、生发中心B细胞、浆细胞和记忆B细胞中活性不同的成员。随后对B细胞恶性肿瘤的研究发现,NKL代码成员的异常过表达和生理学上沉默的亚类成员的异常激活,包括BARX2、DLX1、EMX2、NKX2-1、NKX2-2和NKX3-2。基于这些发现,我们对B细胞特异性NKL同源框基因NKX6-3进行了详细研究,发现在滤泡性淋巴瘤、套细胞淋巴瘤和弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL)的患者亚群中,NKX6-3活性增强,并在三个DLBCL细胞系中作为体外模型。虽然排除了NKX6-3(8p11)位点的基因组或染色体重排,但启动子研究发现,B细胞因子MYB和PAX5激活NKX6-3转录。此外,异常的BMP7/SMAD1信号传导和染色质复合物成分AUTS2和PCGF5的表达失调促进了NKX6-3的激活。最后,NKL同源框基因HHEX、HLX、MSX1和NKX6-3在B细胞祖细胞中表达,并在细胞系中生成一个调节基因网络,我们建议这可能为早期B细胞发育中的NKL代码形成提供生理支持。总的来说,我们确定了B细胞发育中的NKL代码,其破坏可能破坏分化并促进恶性转化[8]。

PRC1复合物多样性的遗传基础在动物进化早期就已经出现。研究表明,PCGF蛋白家族的扩张,是建立脊椎动物中发现的大量PRC1复合物多样性的关键步骤,这一扩张发生在两侧对称动物和刺胞动物祖先之前。这表明,形成所有主要脊椎动物PRC1复合物所需的遗传库在动物进化早期,超过5.5亿年前就已经出现。此外,PCGF5基因在刺胞动物和脊椎动物中保守,但在所有其他研究的群体中丢失,在海洋海葵Nematostella vectensis的神经系统中表达,类似于其哺乳动物的同源物。这项工作提供了一个理解PRC1复合物多样性进化的框架,并确立了Nematostella作为进一步探索这种多样化功能影响的理想模型系统[9]。

综上所述,Pcgf5是一种重要的染色质调节因子,在多种生物学过程中发挥重要作用。Pcgf5在神经分化、造血干细胞发育、帕金森病发生发展、脑梗死和淋巴瘤等方面都发挥着关键作用。此外,Pcgf5的缺失导致H2AK119ub1水平降低,但并未发现H2AK119ub1水平的变化与基因表达水平有显著相关性。这些研究结果为深入理解Pcgf5的生物学功能和疾病发生机制提供了新的思路和策略。

参考文献:
1. Yao, Mingze, Zhou, Xueke, Zhou, Jiajian, Wang, Huating, Yao, Hongjie. 2018. PCGF5 is required for neural differentiation of embryonic stem cells. In Nature communications, 9, 1463. doi:10.1038/s41467-018-03781-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29765032/
2. Yang, Xuan, Zhou, Wenjuan, Zhou, Juan, Hao, Aijun, Zhang, Meihua. 2024. Pcgf5: An important regulatory factor in early embryonic neural induction. In Heliyon, 10, e27634. doi:10.1016/j.heliyon.2024.e27634. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38533065/
3. Si, Sha, Nakajima-Takagi, Yaeko, Aoyama, Kazumasa, Koseki, Haruhiko, Iwama, Atsushi. 2016. Loss of Pcgf5 Affects Global H2A Monoubiquitination but Not the Function of Hematopoietic Stem and Progenitor Cells. In PloS one, 11, e0154561. doi:10.1371/journal.pone.0154561. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27136092/
4. Xing, Hailong, Wang, Shanshan, Li, Ke. 2023. Identification of Parkinson's disease-associated chromatin regulators. In Scientific reports, 13, 3084. doi:10.1038/s41598-023-30236-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36813848/
5. Meng, Ying, Liu, Yang, Dakou, Eleni, Gutierrez, Gustavo J, Leyns, Luc. 2020. Polycomb group RING finger protein 5 influences several developmental signaling pathways during the in vitro differentiation of mouse embryonic stem cells. In Development, growth & differentiation, 62, 232-242. doi:10.1111/dgd.12659. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32130724/
6. Monderer-Rothkoff, Galya, Tal, Nitzan, Risman, Marina, Meshorer, Eran, Shifman, Sagiv. 2019. AUTS2 isoforms control neuronal differentiation. In Molecular psychiatry, 26, 666-681. doi:10.1038/s41380-019-0409-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30953002/
7. Li, Man-Tang, Luo, Cheng-Hong, Xu, Peng-Jie, Jin, Ya. 2022. Study on Circulating lncRNA Expression Profile in Patients with Cerebral Infarction. In Disease markers, 2022, 3042105. doi:10.1155/2022/3042105. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35585938/
8. Nagel, Stefan, MacLeod, Roderick A F, Meyer, Corinna, Kaufmann, Maren, Drexler, Hans G. 2018. NKL homeobox gene activities in B-cell development and lymphomas. In PloS one, 13, e0205537. doi:10.1371/journal.pone.0205537. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30308041/
9. Gahan, James M, Rentzsch, Fabian, Schnitzler, Christine E. 2020. The genetic basis for PRC1 complex diversity emerged early in animal evolution. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 117, 22880-22889. doi:10.1073/pnas.2005136117. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32868440/