Cyp2c55-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Cyp2c55-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-13821

品系全称

C57BL/6JCya-Cyp2c55em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-72082-Cyp2c55-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Cyp2c55-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-13821) were purchased from Cyagen.
交付类型
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基因型
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基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
cytochrome P450, family 2, subfamily c, polypeptide 55
基因别称
2010318C06Rik,CYPIIC55
染色体号
Chr 19 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_028089 | Ensembl: ENSMUST00000025966
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~6.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Cyp2c55是小鼠Cyp2c亚家族中的一种细胞色素P450酶,编码一种具有多种生物学功能的血红素硫醇蛋白。Cyp2c55主要在肝脏中表达,但也存在于结肠和肾脏等组织。Cyp2c55的主要功能是代谢花生四烯酸(AA)和亚油酸(LA)等内源性脂质,产生具有生物活性的二十碳烷酸(如环氧二十碳三烯酸(EETs)和羟基二十碳四烯酸(HETEs))和十八碳烷酸(如环氧十八碳二烯酸(EOAs)和羟基十八碳二烯酸(HOAs))[4]。这些代谢产物在调节血管张力、离子转运、炎症反应、细胞生长和凋亡等生理和病理过程中发挥重要作用。

Cyp2c55的表达受到多种因素的调控,包括核受体、药物和饮食等。例如,细胞色素P450 3A(CYP3A)是一种重要的外源物代谢酶,能够代谢食物中的PXR和CAR激活剂,从而抑制CYP2C55等解毒系统的表达。在Cyp3a(-/-)小鼠中,由于缺乏CYP3A,食物中的PXR和CAR激活剂水平升高,导致CYP2C55等解毒系统表达上调[3]。此外,饮食中的角鲨烯也能够诱导Cyp2c55的表达,且这种诱导作用不受性别、剂量和饮食等因素的影响[2]。

Cyp2c55的异常表达与多种疾病的发生和发展有关。例如,在磺胺吡啶(SASP)诱导的小鼠肝损伤模型中,Cyp2c55的表达显著上调,提示Cyp2c55可能参与了SASP诱导的肝损伤的发生[1]。在2-羟基酰基辅酶A裂解酶(HACL1)缺乏的小鼠中,由于缺乏HACL1,导致肝脏中植烷酸和2-羟基植烷酸积累,进而导致Cyp2c55等ω-氧化酶表达上调,影响花生四烯酸代谢途径[6]。此外,Cyp2c55还与视网膜光损伤有关。在光诱导的视网膜损伤模型中,Cyp2c55的表达上调,而Cyp2c55的敲低能够 rescue 光诱导的细胞死亡[5]。

综上所述,Cyp2c55是一种重要的细胞色素P450酶,参与内源性脂质的代谢和多种生理和病理过程。Cyp2c55的表达受到多种因素的调控,包括核受体、药物和饮食等。Cyp2c55的异常表达与多种疾病的发生和发展有关,如肝损伤、ω-氧化紊乱和视网膜光损伤等。因此,研究Cyp2c55的功能和调控机制对于深入理解其参与的生物学过程和疾病发生机制具有重要意义。

参考文献:
1. Li, Yu-Cheng, Shen, Ji-Duo, Lu, Shuai-Fei, Bai, Ming, Xu, Er-Ping. 2019. Transcriptomic analysis reveals the mechanism of sulfasalazine-induced liver injury in mice. In Toxicology letters, 321, 12-20. doi:10.1016/j.toxlet.2019.12.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31830553/
2. Gabás-Rivera, Clara, Jurado-Ruiz, Enrique, Sánchez-Ortiz, Araceli, Andrés-Lacueva, Cristina, Osada, Jesús. 2020. Dietary Squalene Induces Cytochromes Cyp2b10 and Cyp2c55 Independently of Sex, Dose, and Diet in Several Mouse Models. In Molecular nutrition & food research, 64, e2000354. doi:10.1002/mnfr.202000354. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32918392/
3. van Waterschoot, Robert A B, Rooswinkel, Rogier W, Wagenaar, Els, van Herwaarden, Antonius E, Schinkel, Alfred H. 2008. Intestinal cytochrome P450 3A plays an important role in the regulation of detoxifying systems in the liver. In FASEB journal : official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology, 23, 224-31. doi:10.1096/fj.08-114876. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18794335/
4. Wang, Hong, Zhao, Yun, Bradbury, J Alyce, Goldstein, Joyce A, Zeldin, Darryl C. . Cloning, expression, and characterization of three new mouse cytochrome p450 enzymes and partial characterization of their fatty acid oxidation activities. In Molecular pharmacology, 65, 1148-58. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15102943/
5. Chang, Qing, Berdyshev, Evgeny, Cao, Dingcai, Bettis, Sam, Grassi, Michael A. 2014. Cytochrome P450 2C epoxygenases mediate photochemical stress-induced death of photoreceptors. In The Journal of biological chemistry, 289, 8337-52. doi:10.1074/jbc.M113.507152. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24519941/
6. Khalil, Youssef, Carrino, Sara, Lin, Fujun, Gale, Daniel P, Clayton, Peter T. 2022. Tissue Proteome of 2-Hydroxyacyl-CoA Lyase Deficient Mice Reveals Peroxisome Proliferation and Activation of ω-Oxidation. In International journal of molecular sciences, 23, . doi:10.3390/ijms23020987. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35055171/