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Stox2-KO 基因敲除小鼠
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复苏/繁育服务
基本信息
基因研究概述
质控标准
基因
基因全称
storkhead box 2
基因别称
4933409N07Rik，mKIAA1392
染色体号
Chr 8 (Mouse)
NCBI ID
转录本 ID
NCBI: NM_001114311.1 | Ensembl: ENSMUST00000079195
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~2266 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
表型提示
STOX2，即Storkhead box 2，是一种重要的转录因子，在多种生物学过程中发挥关键作用。STOX2基因位于人类染色体4q35.1上，其编码的蛋白质含有高度保守的Storkhead结构域，该结构域在转录调控中起着重要作用。STOX2的表达和功能受到多种因素的调控，包括长链非编码RNA（lncRNA）、微小RNA（miRNA）和染色质修饰蛋白等。
在早期妊娠并发症中，如子痫前期和胎儿生长受限（FGR），STOX2的表达和功能发生了显著变化。研究发现，STOX2基因内含子3中的一个lncRNA可以作为一种顺式作用调节因子，影响STOX2的替代剪接。当这个lncRNA发生突变或缺失时，STOX2基因的替代外显子3B被包含在内，导致STOX2蛋白C端的一个高度保守的64个氨基酸区域被删除。此外，STOX2基因内含子1中的一个调控区域发生突变后，使用CRISPR技术可以观察到STOX2的替代外显子3B的表达上调。这一过程可能与染色质-剪接适配器复合物的转录控制有关，其中CHD5蛋白（编码染色质结构域螺旋酶DNA结合蛋白）被认为是染色质修饰因子[1]。
miRNA也参与了STOX2的调控。研究发现，miR-30a可以靶向STOX2，通过ERK、AKT和P38信号通路促进滋养层细胞的增殖和转移。低表达的miR-30a可以促进滋养层细胞的增殖、迁移和侵袭。双荧光素酶报告基因实验证实了STOX2是miR-30a的靶基因，并且miR-30a的上调可以抵抗STOX2的抑制效应。此外，miR-30a下调STOX2可以激活ERK、AKT和P38信号通路，导致滋养层细胞在葡萄胎中的过度增殖[2]。
STOX2的表达与子痫前期的发生有关。研究发现，STOX2基因在子痫前期患者的蜕膜组织中表达下调。在子痫前期和/或FGR的妊娠中，与正常妊娠相比，STOX2的表达显著降低。此外，STOX2的转录改变与子痫前期妇女的蜕膜组织中STOX1A过表达的转录改变高度相关[3]。
STOX2的调控还与肿瘤的发生和发展有关。研究发现，在MDA-MB-231乳腺癌细胞中，敲除五个赖氨酰氧化酶家族基因可以识别出由赖氨酰氧化酶原酶调控的基因。其中，AGR2和STOX2基因在敲除细胞中表达下调，但在重新表达赖氨酰氧化酶后可以恢复。这表明STOX2可能受到赖氨酰氧化酶原酶的调控[4]。
STOX2还参与了人胚胎干细胞（hESCs）的信号通路。研究发现，FGF和TGF-β信号通路参与了hESCs的维持和分化。抑制FGF和TGF-β信号通路后，hESCs的转录组发生了显著变化。研究发现，STOX2是TGF-β信号通路的一个新靶基因，可能作为SMAD2/4的辅因子发挥作用[5]。
STOX2的表达与猪的精液性状有关。研究发现，STOX2基因与猪的精液体积有关，是精液体积相关候选基因之一。此外，STOX2基因的表达与鸡的骨骼发育有关。研究发现，STOX2基因是鸡的骨骼发育相关候选基因之一[6]。
STOX2的调控还与骨关节炎的发生和发展有关。研究发现，miR-21-5p和miR-143-3p可以靶向STOX2，抑制其表达。这些miRNA在hBM-MSCs中持续存在，并可能限制这些细胞分化为类似于目标天然关节软骨的工程化软骨的能力[7]。
STOX2的调控还与鸽子的特殊表型有关。研究发现，STOX2基因与鸽子的特殊表型相关，包括白斑、冠和多趾。STOX2基因的突变和变异可能与鸽子特殊表型的形成有关[8]。
综上所述，STOX2是一种重要的转录因子，在多种生物学过程中发挥关键作用。STOX2的表达和功能受到多种因素的调控，包括lncRNA、miRNA和染色质修饰蛋白等。STOX2在多种疾病中发挥重要作用，包括子痫前期、葡萄胎、肿瘤和骨关节炎等。STOX2的研究有助于深入理解转录调控的生物学功能和疾病发生机制，为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。
参考文献：
1. Oudejans, Cees Bm, Poutsma, Ankie, Michel, Omar J, Sistermans, Erik A, van Dijk, Marie. 2016. Noncoding RNA-regulated gain-of-function of STOX2 in Finnish pre-eclamptic families. In Scientific reports, 6, 32129. doi:10.1038/srep32129. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27555360/
2. Guo, Zhenzhen, Zhu, Chenyu, Wang, Youhui, Li, Dong, Sui, Linlin. 2022. miR-30a targets STOX2 to increase cell proliferation and metastasis in hydatidiform moles via ERK, AKT, and P38 signaling pathways. In Cancer cell international, 22, 103. doi:10.1186/s12935-022-02503-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35246136/
3. Fenstad, M H, Johnson, M P, Løset, M, Moses, E K, Austgulen, R. 2010. STOX2 but not STOX1 is differentially expressed in decidua from pre-eclamptic women: data from the Second Nord-Trondelag Health Study. In Molecular human reproduction, 16, 960-8. doi:10.1093/molehr/gaq064. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20643876/
4. Liburkin-Dan, Tatyana, Nir-Zvi, Inbal, Razon, Hila, Kessler, Ofra, Neufeld, Gera. 2022. Knock-Out of the Five Lysyl-Oxidase Family Genes Enables Identification of Lysyl-Oxidase Pro-Enzyme Regulated Genes. In International journal of molecular sciences, 23, . doi:10.3390/ijms231911322. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36232621/
5. Renz, Peter F, Spies, Daniel, Tsikrika, Panagiota, Beyer, Tobias A, Ciaudo, Constance. 2020. Inhibition of FGF and TGF-β Pathways in hESCs Identify STOX2 as a Novel SMAD2/4 Cofactor. In Biology, 9, . doi:10.3390/biology9120470. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33339109/
6. Mei, Quanshun, Fu, Chuanke, Sahana, Goutam, Zhao, Shuhong, Xiang, Tao. . Identification of new semen trait-related candidate genes in Duroc boars through genome-wide association and weighted gene co-expression network analyses. In Journal of animal science, 99, . doi:10.1093/jas/skab188. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34110414/
7. Vail, Daniel J, Somoza, Rodrigo A, Caplan, Arnold I. 2021. MicroRNA Regulation of Bone Marrow Mesenchymal Stem Cell Chondrogenesis: Toward Articular Cartilage. In Tissue engineering. Part A, 28, 254-269. doi:10.1089/ten.TEA.2021.0112. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34328786/
8. Zhang, Rui, Mu, Chunyu, Chang, Lingling, Liu, Peiyao, Yang, Xiaoming. 2024. Whole-Genome Sequencing for Identifying Candidate Genes Related to the Special Phenotypes of the Taihu Dianzi Pigeon. In Animals : an open access journal from MDPI, 14, . doi:10.3390/ani14071047. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38612286/
| 精子检测 | ① 冷冻前验证精子活力观察 ② 冷冻验证每批次进行复苏验证 | 交付状态 | 活体/精子 |
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