Rnaseh2a-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Rnaseh2a-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-13167

品系全称

C57BL/6JCya-Rnaseh2aem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-69724-Rnaseh2a-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Rnaseh2a-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-13167) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ribonuclease H2, large subunit
基因别称
2400006P09Rik,RNASEHI,RNHIA,RNHL
染色体号
Chr 8 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_027187 | Ensembl: ENSMUST00000109738
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~7
敲除长度
~7.7 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1916974Mice homozygous for a knock-out allele exhibit decreased embryo and fetal size and complete perinatal lethality, with innate immune activation of IFN-stimulated genes and decreased susceptibility to viral infection observed in mouse embryonic fibroblasts.
RNaseH2A是一种关键酶,负责从DNA-RNA杂交体中去除RNA,在DNA复制、端粒维持和DNA损伤修复等生物学过程中发挥着重要作用。RNase H2是一种三聚体,由三个亚基组成,其中RNaseH2A是催化亚基。RNaseH2A的表达水平在转化和癌细胞中已被证明是上调的。本研究使用生物信息学方法,在人类不同组织中鉴定了与RNASEH2A共表达的基因,以突出与RNASEH2A表达相关的生物学过程。分析显示,RNASEH2A参与了DNA复制和DNA损伤反应等功能网络,以及一个新的假设性功能网络——细胞周期调控[3]。

在细胞衰老过程中,由于癌基因刺激,细胞衰老与多种年龄相关病理的发生有关,其特征是衰老相关的分泌表型(SASP)。SASP是由细胞质核酸传感器的激活介导的。然而,衰老细胞中核苷酸配体的积累的分子机制尚不清楚。研究发现,RNaseH2A的表达受E2F转录因子的调节,并在细胞衰老过程中降低。残留的rNMPs导致基因组DNA片段化,并异常激活细胞质核酸传感器,从而在衰老细胞中引发随后的SASP因子基因表达。此外,RNaseH2A的表达在老年小鼠组织和韦纳氏综合征患者的细胞中显著降低。此外,使用生长素诱导的降解系统降解RNaseH2A导致核苷酸配体的积累和某些肿瘤发生SASP样因子的诱导,促进结直肠癌细胞转移的性质[1]。

Aicardi-Goutières综合征(AGS)是一种罕见的单基因自身免疫性疾病,主要影响儿童患者的大脑。其主要的临床特征包括脑萎缩、基底神经节钙化、脑白质病变、淋巴细胞增多和患者脑脊液(CSF)和血清中干扰素-α(IFN-α)水平的升高。AGS可能是由九个基因(TREX1、RNASEH2A、RNASEH2B、RNASEH2C、SAMHD1、ADAR1、IFIH1、LSM11和RNU7-1)中的任何一个突变引起的,这些突变导致细胞质中自身核酸的积累或自身核酸的异常感知。这会引发I型干扰素(IFNs)的过度产生,随后导致AGS,这是I型干扰素病的原型。本文回顾了AGS的发现历史,以及AGS的各种基因型和临床表现的最新知识。此外,本文还讨论了AGS与I型干扰素病的关系以及AGS的潜在治疗方法[2]。

肾细胞癌(RCC)中,RNASEH2A(核糖核酸酶H2亚基A)的表达被发现是上调的。我们的目标是了解RNASEH2A在癌症预后中的作用,并建立基于RNASEH2A相互作用的基因表达水平的评分系统。我们在14种癌症类型的RNAseq数据中筛选了核苷酸降解酶基因的表达,发现RNASEH2A过表达仅与肾细胞癌患者的较差生存率相关。对预后不良样本的进一步聚类分析表明,分化簇151(CD151)的上调与低细胞周期蛋白依赖性激酶1(CDK1)和高RNASEH2A表达相关。低CD151表达和高RNASEH2A表达的组合导致四种肾癌细胞系的增殖受损,表明RNASEH2A和CD151之间存在潜在的合成剂量致死(SDL)相互作用。基于RNASEH2A、CDK1和CD151相关基因的表达水平,建立了预后评分系统,可以有效地预测TCGA透明细胞肾细胞癌队列(n=533,995.3 vs 2242.2天,p<0.0001)、另一个透明细胞肾细胞癌(ccRCC)队列E-GEOD-22541(n=44,390.0 vs 1889.2天,p=0.0007)和TCGA乳头状肾细胞癌(pRCC)队列(n=287,741.6 vs 1623.7天,p<0.0001)的总生存率[4]。

Aicardi-Goutières综合征是一种炎症性疾病,由于TREX1、RNASEH2A、RNASEH2B、RNASEH2C、SAMHD1、ADAR或IFIH1中的任何一个基因的突变而发生。本研究报告了来自299个家庭的374名患者的突变情况。大多数患者符合两种相当典型的临床特征之一;要么在子宫内发病(74名患者;在可获得数据的所有患者中占22.8%),要么在出生后发病,通常在第一年内(223名患者;占68.6%),表现为亚急性脑病和以前获得的技能的丧失。还观察到其他临床独特的特征;特别是双侧纹状体坏死(13名患者;占3.6%)和非综合征性痉挛性截瘫(12名患者;占3.4%)。记录了69人死亡(随访数据中患者的19.3%)。在可获得数据的285名患者中,210名(73.7%)严重残疾,没有有用的运动、言语和智力功能。冻疮、青光眼、甲状腺功能减退、心肌病、脑内血管炎、周围神经病变、肠道炎症和系统性红斑狼疮在足够多的患者中观察到,以确认与Aicardi-Goutières综合征表型有关。我们发现,所有七个基因的突变都与脑脊液和血清中I型干扰素活性的增加有关,以及外周血中干扰素刺激基因转录本的表达增加。我们记录了疾病发作后一年内测量的脑脊液干扰素活性水平与随后残疾程度之间的正相关。大多数患者的干扰素刺激基因转录本仍然很高,表明疾病仍在进行中。基于大量的发病率和死亡率,我们的数据突出了为与Aicardi-Goutières综合征相关基因突变相关的表型定义协调治疗策略的迫切需要。我们的研究结果还清楚地表明,对于大多数受影响的患者,存在一个治疗机会的窗口,并表明评估I型干扰素活性可能在未来临床试验中作为一个有用的生物标志物[5]。

AGS是一种炎症性疾病,由于TREX1、RNASEH2A、RNASEH2B、RNASEH2C、SAMHD1和ADAR中的任何一个基因的突变而发生。该病严重,迫切需要有效的治疗方法。本研究调查了AGS患者中干扰素相关生物标志物的状态,以供未来在诊断和临床试验中使用。在这项病例对照研究中,从突变确诊的AGS患者中前瞻性地收集了样本。通过定量PCR测量六种干扰素刺激基因(ISGs)的表达,当与健康对照的中位数相比时,使用中位数倍数变化,用于为每位患者创建一个干扰素评分。高于对照中位数加两个标准差(>2·466)的分数被指定为阳性。此外,我们还收集了来自突变阳性AGS患者的脑脊液和血清中干扰素活性的历史数据,并进行了干扰素活性的中和实验,并寻找对一组干扰素蛋白的自身抗体的存在。82名患者中有74名(90%)的干扰素评分呈阳性(中位数12·90,IQR 6·14-20·41),而29名对照中有2名(7%)呈阳性(中位数0·93,IQR 0·57-1·30)。在8名干扰素评分阴性的患者中,7名患有RNASEH2B基因突变(26名RNASEH2B基因突变患者中的7名[27%])。在16名患者的重复采样中,在41次中的39次上,干扰素特征的存在或缺失是一致的。在147名患者中进行的干扰素活性检测(在脑脊液和血清中分别使用病毒细胞病变实验进行)与年龄呈负相关(CSF,r=-0·604;血清,r=-0·289),在136对配对样本中,104个样本的CSF干扰素活性高于血清。中和实验表明,可测量的抗病毒活性与干扰素α的产生有关。我们没有记录到AGS患者对干扰素亚型的自身抗体浓度显著增加,或者自身抗体的存在与干扰素评分或血清干扰素活性之间的关联。AGS与一个干扰素特征持续相关,该特征显然随着时间的推移而持续,因此可以用来区分AGS患者和对照组。如果未来的研究显示干扰素状态是一个反应性生物标志物,那么测量干扰素评分可能对评估临床治疗的有效性有用[6]。

RNaseH2A基因的突变参与了Aicardi-Goutières综合征,这是一种常染色体隐性神经功能障碍。然而,关于RNaseH2A与胶质瘤关系的研究很少。本研究旨在评估RNaseH2A在胶质瘤中的作用,并揭示其潜在的机制。在胶质母细胞瘤细胞系U87和U251中沉默了RNaseH2A。通过微阵列评估了转染了RNaseH2A shRNA或scramble shRNA的细胞中的基因表达,并通过定量实时PCR进行了验证。通过蛋白质印迹分析评估了蛋白质表达。通过MTT试验评估了细胞增殖;通过流式细胞术分析了细胞周期分布和凋亡。最后,通过体外和裸鼠异种移植模型分别评估了RNaseH2A对集落形成和肿瘤发生的影响。RNaseH2A在U87和U251细胞中依次被敲除。值得注意的是,RNaseH2A沉默导致细胞增殖受损,U87和U251细胞分别减少了70.7%和57.8%,细胞周期被阻断在体外G0/G1期。同时,集落形成显著降低,RNaseH2A敲除增加了细胞凋亡,约增加4.5倍。在裸鼠中,与shRNA组(219.29±246.43 vs 1160.26±222.61 mm3)相比,RNaseH2A敲除后肿瘤大小显著减小;类似地,肿瘤重量在shRNA组和对照组中分别为0.261±0.245和1.127±0.232 g。微阵列数据显示,RNaseH2A通过IL-6和FAS途径等几个信号通路来调节细胞增殖和凋亡。RNaseH2A可能参与人类胶质瘤的发生,可能是通过调节负责细胞增殖和凋亡的信号通路[7]。

Aicardi-Goutières综合征(AGS)是一种遗传性疾病,其临床表现具有高度的遗传和临床多样性,包括神经、免疫,有时还包括其他系统的 involvement。鉴于AGS的高遗传和临床多样性,以及RNASEH2复合物在生物系统中的重要性,采用系统的方法来阐明基因诊断和错义突变的影响是非常重要的。在具有AGS临床特征的个体中进行了临床靶向基因测序,随后进行Sanger验证。对迄今为止所有已报道的RNASEH2A错义突变进行了蛋白质建模研究,使用了BioGrid和ShinyGO等可免费使用的网络服务器。蛋白质结构使用Pymol进行可视化。我们鉴定了一个新的纯合子剪接位点供体变异c.549+1G>T在RNASEH2A中。此外,蛋白质互作组研究确定了潜在的遗传互作因子,包括RNASEH2A、RNASEH2B、TYMS、RNASEH2C、RPA1、ORC3、ORC2、CDC6、PCNA、LIG1、PRIM1、RFC2、DUT、GINS1、MCM7、FEN1、MCM4、GINS2、CDK4和MCM5。使用SHINY GO将确定的基因映射到特定的通路。DNA复制和细胞周期、中心体周期、复制后修复、核酸和代谢过程、细胞对压力的细胞反应、DNA代谢过程、核酸磷酸二酯键水解、RNA磷酸二酯键水解和DNA生物合成过程被确定为与优先基因相关的通路。总之,复杂的基因型和表型相关性,随后将基因与关键生物学通路联系起来,为理解疾病病理和计划治疗干预开辟了新的途径[8]。

综上所述,RNaseH2A在DNA复制、端粒维持和DNA损伤修复等生物学过程中发挥着重要作用。RNaseH2A的表达水平在转化和癌细胞中已被证明是上调的,并且与多种癌症的预后不良相关。此外,RNaseH2A还与Aicardi-Goutières综合征等疾病的发生发展有关。RNaseH2A的研究有助于深入理解其在生物学过程中的作用,以及其在疾病发生发展中的作用机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Sugawara, Sho, Okada, Ryo, Loo, Tze Mun, Hara, Eiji, Takahashi, Akiko. 2022. RNaseH2A downregulation drives inflammatory gene expression via genomic DNA fragmentation in senescent and cancer cells. In Communications biology, 5, 1420. doi:10.1038/s42003-022-04369-7. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36577784/
2. Liu, Anran, Ying, Songcheng. 2023. Aicardi-Goutières syndrome: A monogenic type I interferonopathy. In Scandinavian journal of immunology, 98, e13314. doi:10.1111/sji.13314. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37515439/
3. Marsili, Stefania, Tichon, Ailone, Kundnani, Deepali, Storici, Francesca. 2021. Gene Co-Expression Analysis of Human RNASEH2A Reveals Functional Networks Associated with DNA Replication, DNA Damage Response, and Cell Cycle Regulation. In Biology, 10, . doi:10.3390/biology10030221. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33805806/
4. Yang, Chin-An, Huang, Hsi-Yuan, Yen, Ju-Chen, Chang, Jan-Gowth. 2018. Prognostic Value of RNASEH2A-, CDK1-, and CD151-Related Pathway Gene Profiling for Kidney Cancers. In International journal of molecular sciences, 19, . doi:10.3390/ijms19061586. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29843367/
5. Crow, Yanick J, Chase, Diana S, Lowenstein Schmidt, Johanna, Orcesi, Simona, Rice, Gillian I. 2015. Characterization of human disease phenotypes associated with mutations in TREX1, RNASEH2A, RNASEH2B, RNASEH2C, SAMHD1, ADAR, and IFIH1. In American journal of medical genetics. Part A, 167A, 296-312. doi:10.1002/ajmg.a.36887. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25604658/
6. Rice, Gillian I, Forte, Gabriella M A, Szynkiewicz, Marcin, Lebon, Pierre, Crow, Yanick J. 2013. Assessment of interferon-related biomarkers in Aicardi-Goutières syndrome associated with mutations in TREX1, RNASEH2A, RNASEH2B, RNASEH2C, SAMHD1, and ADAR: a case-control study. In The Lancet. Neurology, 12, 1159-69. doi:10.1016/S1474-4422(13)70258-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24183309/
7. Dai, Bin, Zhang, Peng, Zhang, Yisong, Zhang, Junting, Zhang, Liwei. 2016. RNaseH2A is involved in human gliomagenesis through the regulation of cell proliferation and apoptosis. In Oncology reports, 36, 173-80. doi:10.3892/or.2016.4802. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27176716/
8. Nanjundagowda, Vykuntaraju K, Paikaraya, Swabhiman, Srinivasan, Varunvenkat M, Srivastava, Anshika. 2023. In Silico Characterization of RNASEH2A Pathogenic Variants and Identification of Novel Splice Site Donor Variant c.549+1G>T in Indian Population. In Cureus, 15, e40366. doi:10.7759/cureus.40366. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37456470/