Smim20-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Smim20-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-11630

品系全称

C57BL/6JCya-Smim20em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-66278-Smim20-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Smim20-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-11630) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
small integral membrane protein 20
基因别称
1110067B18Rik,1810013D10Rik,MITRAC7
染色体号
Chr 5 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001145433.1 | Ensembl: ENSMUST00000147148
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1~3
敲除长度
~10688 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1913528Mice homozygous for knock-out allele exhibit normal fertility and have no major alterations in their metabolic response to a high-fat diet but show altered behavior in an open field test.
SMIM20,也称为Phoenixin,是一种编码新型生殖配体的基因,其编码的蛋白质在哺乳动物中具有重要的生物学功能。SMIM20基因编码的蛋白质可以通过蛋白水解切割产生两种主要的多肽,PNX14和PNX20,这两种多肽在多种生物学过程中发挥着重要作用,包括生殖、炎症和能量代谢[7]。PNX14和PNX20在非哺乳动物脊椎动物中的生理功能尚不清楚,但在哺乳动物中,它们已经被发现参与调节下丘脑-垂体-性腺(HPG)轴和生殖功能。

SMIM20基因在成年斑马鱼的脑中表达,包括控制生育和生殖的重要下丘脑区域[1]。此外,SMIM20基因在斑马鱼发育早期到成年期间都有表达,这表明它在斑马鱼的生殖发育中起着重要的作用。在斑马鱼中,SMIM20基因的表达受到短期禁食的调节,这表明PNX20可能参与调节食物摄入[3]。PNX20还可以通过增强下丘脑的食欲调节和促进糖酵解来影响斑马鱼的代谢[3]。

在哺乳动物中,SMIM20基因编码的蛋白质和其受体GPR173在下丘脑、卵巢和周围脂肪组织中表达[5]。在犬类中,SMIM20基因在发情周期的不同阶段和患有卵巢囊肿的犬类中表达水平不同,这表明SMIM20基因可能在犬类的生殖周期中发挥重要作用[5]。此外,SMIM20基因在小鼠中的敲除没有影响生育能力,但改变了小鼠在高脂肪饮食下的代谢反应和行为[6]。这些研究结果揭示了SMIM20基因在生殖和能量代谢中的重要作用。

除了生殖和能量代谢,SMIM20基因还与多种疾病相关。在人类胶质母细胞瘤中,SMIM20基因的高表达与不良预后相关[2]。此外,SMIM20基因的表达还与肥胖相关,它可能通过促进白色脂肪的形成来控制体重[4]。

综上所述,SMIM20基因编码的蛋白质在多种生物学过程中发挥着重要作用,包括生殖、能量代谢和疾病发生。SMIM20基因的研究有助于深入理解其在生殖和能量代谢中的作用机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Ceriani, R, Calfún, C, Whitlock, K E. 2020. phoenixin(smim20), a gene coding for a novel reproductive ligand, is expressed in the brain of adult zebrafish. In Gene expression patterns : GEP, 39, 119164. doi:10.1016/j.gep.2020.119164. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33385537/
2. Chen, Kai, Shi, Yu, Luo, Wenzhang, Bao, Kunyang, Huang, Changren. 2023. SMIM20: a new biological signal associated with the prognosis of glioblastoma. In Translational cancer research, 12, 2754-2763. doi:10.21037/tcr-23-796. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37969370/
3. Rajeswari, Jithine Jayakumar, Blanco, Ayelén Melisa, Unniappan, Suraj. 2020. Phoenixin-20 suppresses food intake, modulates glucoregulatory enzymes, and enhances glycolysis in zebrafish. In American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology, 318, R917-R928. doi:10.1152/ajpregu.00019.2020. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32208925/
4. Billert, Maria, Wojciechowicz, Tatiana, Jasaszwili, Mariami, Nowak, Krzysztof W, Skrzypski, Marek. 2018. Phoenixin-14 stimulates differentiation of 3T3-L1 preadipocytes via cAMP/Epac-dependent mechanism. In Biochimica et biophysica acta. Molecular and cell biology of lipids, 1863, 1449-1457. doi:10.1016/j.bbalip.2018.09.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30251651/
5. Rybska, Marta, Billert, Maria, Skrzypski, Marek, Włodarek, Jan, Wąsowska, Barbara. 2023. Expression and localization of the neuropeptide phoenixin-14 and its receptor GRP173 in the canine reproductive organs and periovarian adipose tissue. In Animal reproduction science, 255, 107282. doi:10.1016/j.anireprosci.2023.107282. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37356348/
6. McIlwraith, Emma K, Loganathan, Neruja, Mak, Kimberly W Y, He, Wenyuan, Belsham, Denise D. 2024. Phoenixin knockout mice show no impairment in fertility or differences in metabolic response to a high-fat diet, but exhibit behavioral differences in an open field test. In Journal of neuroendocrinology, 36, e13398. doi:10.1111/jne.13398. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38733120/
7. Liu, Tuoyuan, Yang, Ming, Wu, Yuping, Zeng, Xianyin, Meng, Fengyan. 2023. PNX14 but not PNX20 as a novel regulator of preadipocyte differentiation via activating Epac-ERK signaling pathway in Gallus gallus. In General and comparative endocrinology, 335, 114232. doi:10.1016/j.ygcen.2023.114232. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36774983/