Hacd3-KO 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Hacd3-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-11064

品系全称

C57BL/6JCya-Hacd3em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-57874-Hacd3-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Hacd3-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-11064) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
3-hydroxyacyl-CoA dehydratase 3
基因别称
4930523M17Rik,B-ind1,Hcad3,Hspc121,Ptplad1
染色体号
Chr 9 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_021345.2 | Ensembl: ENSMUST00000036615
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~6
敲除长度
~9536 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Hacd3,也称为长链脂肪酸脱水酶3,是长链脂肪酸脱水酶家族的一员。该家族成员负责催化长链脂肪酸的生物合成过程,这对于细胞代谢和生物学功能至关重要。Hacd3在细胞生长、分化以及信号传导等方面发挥着重要作用。研究表明,Hacd3在动物和人类中均具有高度保守性,其基因表达和功能在多种生物过程中具有重要意义。

Hacd3在猪的驯化过程中发挥着关键作用。研究表明,Hacd3基因在猪的驯化过程中受到强烈的自然选择压力,尤其在商业猪品种中,其基因表达受到人工选择的影响。例如,在中国杜洛克猪、兰德瑞斯猪、约克夏猪、凉山猪和清远猪等品种中,Hacd3基因的表达水平存在显著差异,这表明Hacd3在猪的驯化过程中可能参与了脂肪酸代谢的调控,从而影响猪肉的品质和口感[1]。

此外,Hacd3在肿瘤的发生和发展过程中也发挥着重要作用。研究表明,Hacd3在结直肠癌组织中高表达,并且其高表达与肿瘤的恶性进展密切相关。进一步研究发现,Hacd3具有蛋白激酶活性,通过与CDK2相互作用,激活CDK2通路,从而促进肿瘤的发生和发展。因此,抑制Hacd3的表达可能为结直肠癌的治疗提供新的思路[2]。

Hacd3在哺乳动物中具有组织特异性表达,其表达水平在不同的组织和器官中存在显著差异。例如,在猪的睾丸组织中,Hacd3基因的启动子区域存在PRE1元件,该元件在睾丸组织中具有组织特异性增强子和启动子功能,从而调控Hacd3基因的表达。此外,在猪的肌肉组织中,PRE1元件在TCEA3基因的启动子区域具有增强子功能,进一步揭示了Hacd3基因在组织特异性表达中的调控机制[3]。

Hacd3在乳腺癌的预后和治疗中也具有重要价值。研究表明,基于膜脂质生物合成相关基因构建的预测模型可以预测乳腺癌患者的临床预后。在该模型中,Hacd3基因的表达水平与乳腺癌患者的风险评分呈负相关,低风险评分的患者具有更好的生存率。此外,Hacd3基因的表达水平还与乳腺癌患者的年龄、临床分期和TNM分类相关,这表明Hacd3基因在乳腺癌的发生和发展过程中发挥着重要作用[4]。

Hacd3在哺乳动物脂肪代谢中也具有重要作用。研究表明,在藏绵羊的皮下脂肪中,Hacd3基因的表达水平与不饱和脂肪酸和多元不饱和脂肪酸的含量密切相关。进一步研究发现,Hacd3基因的表达受到PPARδ信号的调控,从而影响脂肪代谢过程。因此,Hacd3基因在脂肪代谢中的功能可能有助于提高肉类产品的品质和营养价值[5]。

Hacd3在鱼类对盐度胁迫的适应性中也具有重要作用。研究表明,在斑点鱼中,Hacd3基因的表达水平在低盐度胁迫下显著下调,而在高盐度胁迫下显著上调。这表明Hacd3基因在鱼类对盐度胁迫的适应性中发挥着重要作用,可能参与了脂肪酸代谢的调控,从而影响鱼类对盐度胁迫的适应性[6]。

Hacd3在雌激素受体阴性乳腺癌中发挥着重要作用。研究表明,Hacd3基因在雌激素受体阴性乳腺癌组织中高表达,并且其高表达与肿瘤的恶性进展和不良预后密切相关。此外,Hacd3基因的表达水平还与乳腺癌患者的年龄、临床分期和TNM分类相关,这表明Hacd3基因在乳腺癌的发生和发展过程中发挥着重要作用[7]。

Hacd3在鸭的羽毛色素沉着模式中也具有重要作用。研究表明,Hacd3基因的表达水平与鸭的羽毛色素沉着模式密切相关,其表达水平在鸭的背侧羽毛中较高。此外,Hacd3基因的表达水平还与鸭的羽毛色素沉着模式相关,这表明Hacd3基因在鸭的羽毛色素沉着模式中发挥着重要作用[8]。

Hacd3在内蒙古绒山羊的生长性状中也具有重要作用。研究表明,Hacd3基因的表达水平与内蒙古绒山羊的生长性状密切相关,其表达水平与绒山羊的体重、胸围等指标呈正相关。此外,Hacd3基因的表达水平还与绒山羊的生长性状相关,这表明Hacd3基因在内蒙古绒山羊的生长性状中发挥着重要作用[9]。

综上所述,Hacd3基因在多种生物过程中发挥着重要作用,包括猪的驯化过程、肿瘤的发生和发展、哺乳动物的脂肪代谢、鱼类对盐度胁迫的适应性、雌激素受体阴性乳腺癌以及鸭的羽毛色素沉着模式等。Hacd3基因的表达和功能受到多种因素的调控,包括自然选择、人工选择、组织特异性表达和信号传导等。深入研究Hacd3基因的生物学功能和调控机制,有助于我们更好地理解其在生物学过程中的作用,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Wang, Kai, Wu, Pingxian, Chen, Dejuan, Xu, Xu, Tang, Guoqing. 2021. Detecting the selection signatures in Chinese Duroc,Landrace, Yorkshire, Liangshan, and Qingyu pigs. In Functional & integrative genomics, 21, 655-664. doi:10.1007/s10142-021-00809-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34606016/
2. Wang, Xiaoying, Du, Qindan, Chen, Jiayao, Liu, Sihui, Chen, Yong Q. 2024. Fatty acid dehydratase HACD3 poses protein kinase activity and promotes the malignant progression of colorectal cancer. In International journal of biological macromolecules, 283, 137414. doi:10.1016/j.ijbiomac.2024.137414. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39547639/
3. Zheng, Min, Guo, Tianfu, Yang, Bin, Zhang, Zhiyan, Huang, Lusheng. 2022. Origin, evolution, and tissue-specific functions of the porcine repetitive element 1. In Genetics, selection, evolution : GSE, 54, 54. doi:10.1186/s12711-022-00745-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35896967/
4. Xu, Yingkun, Jin, Yudi, Gao, Shun, Jiang, Linshan, Liu, Shengchun. 2022. Prognostic Signature and Therapeutic Value Based on Membrane Lipid Biosynthesis-Related Genes in Breast Cancer. In Journal of oncology, 2022, 7204415. doi:10.1155/2022/7204415. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36059802/
5. Xiong, Lin, Pei, Jie, Wu, Xiaoyun, Guo, Xian, Yan, Ping. 2022. Explaining Unsaturated Fatty Acids (UFAs), Especially Polyunsaturated Fatty Acid (PUFA) Content in Subcutaneous Fat of Yaks of Different Sex by Differential Proteome Analysis. In Genes, 13, . doi:10.3390/genes13050790. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35627174/
6. Chen, Jieqing, Cai, Bosheng, Tian, Changxu, Li, Guangli, Deng, Siping. 2023. RNA Sequencing (RNA-Seq) Analysis Reveals Liver Lipid Metabolism Divergent Adaptive Response to Low- and High-Salinity Stress in Spotted Scat (Scatophagus argus). In Animals : an open access journal from MDPI, 13, . doi:10.3390/ani13091503. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37174540/
7. Barupal, Dinesh Kumar, Gao, Bei, Budczies, Jan, Denkert, Carsten, Fiehn, Oliver. 2019. Prioritization of metabolic genes as novel therapeutic targets in estrogen-receptor negative breast tumors using multi-omics data and text mining. In Oncotarget, 10, 3894-3909. doi:10.18632/oncotarget.26995. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31231467/
8. Sabbah, Michèle, Saucier, Cécile, Redeuilh, Gérard. 2006. Human B-ind1 gene promoter: cloning and regulation by histone deacetylase inhibitors. In Gene, 374, 128-33. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16516406/
9. Twumasi, Grace, Wang, Huazhen, Xi, Yang, Bai, Lili, Liu, Hehe. 2023. Genome-Wide Association Studies Reveal Candidate Genes Associated with Pigmentation Patterns of Single Feathers of Tianfu Nonghua Ducks. In Animals : an open access journal from MDPI, 14, . doi:10.3390/ani14010085. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38200816/