Pkd2l2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Pkd2l2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-10441

品系全称

C57BL/6JCya-Pkd2l2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-53871-Pkd2l2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Pkd2l2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-10441) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
polycystic kidney disease 2-like 2
基因别称
TRPP5
染色体号
Chr 18 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_016927 | Ensembl: ENSMUST00000014647
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~5
敲除长度
~5.8 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1858231Mice homozygous for a targeted gene disruption display hyperactivity.
Pkd2l2,即PKD2L2,是PKD2基因家族的一个成员,编码一个重要的阳离子通道蛋白,参与多种发育过程。PKD2基因家族在哺乳动物进化过程中高度保守,并且在各种生理过程中发挥关键作用。研究表明,PKD2基因家族成员在啮齿类动物中进化得更快,这可能是因为纯化选择力的减弱。PKD2L2基因在纯化选择约束下的进化速度较PKD和PKD2L1基因慢。有趣的是,PKD2L2跨膜结构域的一些环状区域表现出比预期更高的P(N)/P(S)比值,这表明这些区域在生物体中具有更高的功能差异,值得特别注意[1]。

PKD2L2基因在哺乳动物睾丸中显著表达,该基因编码的蛋白polycystin-L2主要存在于精子细胞和圆形精细胞以及延长精子细胞的头部和尾部,这些细胞位于小鼠睾丸组织切片中的曲细精管中。Pkd2l2的绿色荧光融合蛋白定位于HEK293和MDCK细胞的质膜中,这表明它可能作为一种质膜蛋白发挥作用。Pkd2l2的过表达增加了MDCK细胞中的细胞内钙浓度。这些数据表明,Pkd2l2可能通过调节细胞内钙浓度参与精子发生的中后期阶段[2]。

研究表明,在缺乏功能性Trpm2、Pkd2、Pkd2l1、Pkd2l2和Pkd1l3的突变小鼠中,毛细胞的机械转导仍然存在。这些结果表明,在毛细胞转导中,没有参与33个小鼠TRP通道[3]。

在沙特阿拉伯慢性肾脏病(CKD)和常染色体显性多囊肾病(ADPKD)患者中,通过全外显子测序鉴定了在PKD1和PKD2L2基因中的两个新的错义突变。这些发现表明,这些突变导致了沙特阿拉伯人群中的ADPKD发展[4]。

在斑马鱼中,PKD基因家族包括pkd1、pkd1b、pkd1l1、pkd1l2a、pkd1l2b、pkd2和pkd2l1等七个基因。这些基因在发育过程中表达,并且大多数结构中表达一个pkd1-like基因和一个pkd2-like基因,这表明这些基因编码一个异源蛋白复合物。例如,pkd2和pkd1l1在Kupffer's囊中表达,而pkd1和pkd2在发育中的原肾中表达。在脊髓中,pkd1l2a和pkd2l1在KA细胞中共表达。此外,还观察到所有七个pkd基因在可能对应于味觉受体的区域中的潜在共表达。这些结果提供了一个重要的斑马鱼pkd基因目录,为阐明细胞和发育过程以及模拟人类疾病提供了重要的模型系统[5]。

直接记录和分子鉴定了初级纤毛的钙通道。初级纤毛是一种结构化的微管(9+0)组成的细长的非运动性突起,被质膜包围。初级纤毛在细胞分裂之间充当细胞分裂装置的组成部分,并作为钙信号和Hedgehog信号通路的特殊隔室。特殊的感官纤毛,如视网膜感光细胞和嗅觉纤毛,使用不同的离子通道。从肾脏细胞的初级纤毛中测量到的离子电流,但其负责的基因尚未被鉴定。在常染色体显性多囊肾病(PKD)的连锁研究中发现的polycystin蛋白(PC和PKD),是候选通道,分为两类结构:11个跨膜蛋白(PKD1、PKD1L1和PKD1L2),具有大的细胞外氨基末端,具有细胞粘附结构域和G蛋白偶联受体蛋白水解位点的特征,以及6个跨膜通道蛋白(PKD2、PKD2L1和PKD2L2;TRPPs)。证据表明,PKD1蛋白通过卷曲螺旋结构域与PKD2蛋白相关联。本研究使用了一种转基因小鼠,其中只有纤毛表达荧光蛋白,并直接从初级纤毛进行记录,证明PKD1L1和PKD2L1在几种细胞类型中形成高密度的离子通道。与另一篇伴随的手稿相结合,本研究表明,PKD1L1-PKD2L1异源通道将纤毛作为一个独特的细胞内钙隔室,调节已建立的Hedgehog途径[6]。

在心脏中表达PKD基因家族的几个成员(PKD2、PKDL和PKD2L2)。最近的研究表明,这些基因编码的polycystin-2和其同源物在异源表达系统中形成Ca(2+)-调节的非选择性阳离子通道。以前,在心肌细胞中已经描述了大型传导非选择性阳离子通道(LCC),但其分子身份仍然不清楚。因此,本研究调查了LCC是否可能由polycystins形成。使用全细胞膜片钳技术和单个细胞RT-PCR对从大鼠左心室分离的肌细胞进行研究。将10 mM咖啡因应用于浴溶液以增加细胞内Ca(2+)浓度,导致在研究的56%的肌细胞中激活LCC(总数为651),其中大约10%检测到超过三个LCC。单通道电导率约为300 pS,对于单价阳离子Na(+)、K(+)、Li(+)和Cs(+)相对非选择性,并且对二价阳离子Ca(2+)和Ba(2+)也具有渗透性,但对NMDG(+)和Cl(-)不渗透。阿米洛利(IC(50)=131+/-1.1 microM)和毫摩尔浓度的三价阳离子Gd(3+)和La(3+)抑制了LCC。单个细胞RT-PCR分析表明,在单个大鼠左心室肌细胞中表达PKD2和PKD2L2的mRNA,而不是PKDL或PKD1。本研究中显示的LCC特性几乎与polycystin-2及其同源物的特性相同,这表明polycystin-2或polycystin-2L2是心室肌细胞中LCC的基础[7]。

全基因组扫描确定了与繁殖力相关的已知和新型区域。最大限度地提高每只雌性产仔数是商业和/或自给自足的畜牧业中的关键功能性状。尽管产仔数与雌性生育力和生殖成功密切相关,但在撒哈拉以南非洲的畜牧业中,这些性状的遗传控制仍然知之甚少。通过对来自埃塞俄比亚多产Bonga绵羊的Ovine HD BeadChip数据进行选择信号分析,鉴定了41个候选区域,这些区域在繁殖中受到选择。分析发现,在染色体X上有一个候选区域跨越BMP15,这表明BMP15是该品种的主要候选繁殖力基因。分析还鉴定了几个跨越以前未报道的候选区域的基因,这些基因在其他物种中与生育力和繁殖相关。与雌性生殖性状相关的基因包括SPOCK1(首次发情年龄)、GPR173(卵巢周期的介质)、HB-EGF(早期妊娠成功的信号传导)、SMARCAL1和HMGN3a(在胚胎发生过程中调节基因表达)。与雄性生殖相关的基因包括FOXJ1(精子功能和成功受精)和NME5(精子发生)。还观察到与两性其他物种的多种生育性状相关的基因,如PKD2L2、MAGED1和KDM3B。结果表明,繁殖的遗传机制非常复杂,而Bonga绵羊的繁殖力,以及可能的其他非洲本地绵羊,部分受到BMP15的控制,而其他增强雄性和雌性生育力的基因对于生殖能力至关重要[8]。

PKD2L2基因在多种生物学过程中发挥重要作用,包括精子发生、毛细胞机械转导、多囊肾病和心脏功能。研究表明,PKD2L2基因在哺乳动物进化过程中高度保守,并且在多种组织中表达。PKD2L2基因的突变与多囊肾病的发生有关。此外,PKD2L2基因在心脏中表达,并且与心脏功能有关。PKD2L2基因的研究有助于深入理解其在各种生物学过程中的作用,并为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Ye, Chun, Sun, Huan, Guo, Wenhu, Wei, Yuquan, Zhou, Qin. 2009. Molecular evolution of PKD2 gene family in mammals. In Genetica, 137, 77-86. doi:10.1007/s10709-009-9352-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19184643/
2. Chen, Ye, Zhang, Zheng, Lv, Xiao-Yan, Wei, Yu-Quan, Zhou, Qin. . Expression of Pkd2l2 in testis is implicated in spermatogenesis. In Biological & pharmaceutical bulletin, 31, 1496-500. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18670078/
3. Wu, Xudong, Indzhykulian, Artur A, Niksch, Paul D, Vollrath, Melissa A, Corey, David P. 2016. Hair-Cell Mechanotransduction Persists in TRP Channel Knockout Mice. In PloS one, 11, e0155577. doi:10.1371/journal.pone.0155577. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27196058/
4. Alzahrani, Othman R, Alatwi, Hanan E, Alharbi, Amnah A, Elfaki, Imadeldin, Hawsawi, Yousef M. 2022. Identification and Characterization of Novel Mutations in Chronic Kidney Disease (CKD) and Autosomal Dominant Polycystic Kidney Disease (ADPKD) in Saudi Subjects by Whole-Exome Sequencing. In Medicina (Kaunas, Lithuania), 58, . doi:10.3390/medicina58111657. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36422197/
5. England, Samantha J, Campbell, Paul C, Banerjee, Santanu, Swanson, Annika J, Lewis, Katharine E. 2017. Identification and Expression Analysis of the Complete Family of Zebrafish pkd Genes. In Frontiers in cell and developmental biology, 5, 5. doi:10.3389/fcell.2017.00005. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28271061/
6. DeCaen, Paul G, Delling, Markus, Vien, Thuy N, Clapham, David E. . Direct recording and molecular identification of the calcium channel of primary cilia. In Nature, 504, 315-8. doi:10.1038/nature12832. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24336289/
7. Volk, Tilmann, Schwoerer, Alexander Peter, Thiessen, Susanne, Schultz, Jobst-Hendrik, Ehmke, Heimo. . A polycystin-2-like large conductance cation channel in rat left ventricular myocytes. In Cardiovascular research, 58, 76-88. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12667948/
8. Dolebo, Asrat Tera, Khayatzadeh, Negar, Melesse, Aberra, Rothschild, Max F, Mwacharo, Joram M. 2019. Genome-wide scans identify known and novel regions associated with prolificacy and reproduction traits in a sub-Saharan African indigenous sheep (Ovis aries). In Mammalian genome : official journal of the International Mammalian Genome Society, 30, 339-352. doi:10.1007/s00335-019-09820-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31758253/