Tlr5-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Tlr5-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-10429

品系全称

C57BL/6JCya-Tlr5em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-53791-Tlr5-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Tlr5-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-10429) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
toll-like receptor 5
基因别称
-
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: XM_017321703 | Ensembl: ENSMUST00000193687
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 4
敲除长度
~2.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1858171Mice homozygous for disruption of this gene have a generally normal phenotype. However they fail to respond immunologically to purified flagellin and are resistant to infection with Salmonella typhimurium.
Toll样受体5(TLR5)是一种模式识别受体,能够识别细菌鞭毛蛋白(flagellin),在宿主的免疫反应中发挥着重要作用。TLR5通过识别病原微生物的保守结构,激活先天免疫和适应性免疫反应,从而维持机体的免疫平衡和抵御病原体的侵袭。TLR5的表达和功能受到多种因素的调控,包括基因多态性、细胞类型和微生物环境等。

在肝脏再生过程中,TLR5信号通路发挥着重要的调节作用。研究表明,TLR5介导的通路在调节肝细胞的免疫反应和肝病的保护作用中起着关键作用。在肝脏部分切除术(PHx)诱导的肝脏再生模型中,TLR5敲除小鼠的肝细胞增殖能力下降,早期基因表达受到抑制,细胞因子和生长因子产生减少,肝细胞核因子κB(NF-κB)和信号转导与转录激活因子3(STAT3)的激活受到抑制。而TLR5激动剂CBLB502能够显著促进PHx介导的肝细胞增殖,这与增强的促炎细胞因子产生和巨噬细胞、中性粒细胞的募集有关。这些研究结果表明,TLR5信号通路在PHx后肝脏再生的早期事件中发挥着重要作用,并可能通过促进肝细胞增殖和调节免疫反应来促进肝脏再生[1]。

TLR5在瘤胃上皮细胞中也发挥着重要作用。研究发现,TLR5在瘤胃上皮细胞的基底部(即基底层和棘层)而非颗粒层表达,而颗粒层是紧密连接最活跃的区域。TLR5配体鞭毛蛋白能够诱导瘤胃上皮细胞中白细胞介素1β(IL-1β)的表达,进而促进抗菌肽和C-X-C趋化因子配体8的表达。这表明,瘤胃TLR5可能通过识别鞭毛蛋白来感知上皮细胞损伤,并通过IL-1β介导免疫反应[2]。

TLR5基因多态性也与婴幼儿支气管炎的病毒病因相关。研究发现,TLR5 rs5744174基因多态性与非呼吸道合胞病毒(RSV)引起的支气管炎的发生率增加相关,而与支气管炎的严重程度或支气管炎后哮喘的发生无关。这表明,TLR5基因多态性可能影响婴幼儿对非RSV引起支气管炎的易感性[3]。

TLR5基因多态性在溃疡性结肠炎(UC)患者中也发挥着重要作用。研究发现,TLR5基因多态性R392X和N592S与UC患者的发病风险增加相关,而TLR1、TLR2、TLR3和TLR6基因多态性则与UC患者的发病风险无关。此外,携带TLR5-R392X基因变异的患者血浆中肿瘤坏死因子α(TNFα)、白细胞介素6(IL-6)和干扰素γ(IFNγ)的水平显著升高,而携带TLR5-R392X基因变异的患者血浆中TNFα、IL-6和IFNγ的水平则显著降低。这些研究结果表明,TLR5基因多态性可能通过影响细胞因子的水平来调节UC的发生和发展[4]。

TLR5在肠道粘膜免疫调节中也发挥着重要作用。TLR5通过激活先天免疫和适应性免疫反应来控制肠道稳态,而过度的TLR5表达可能破坏肠道粘膜屏障,导致肠道疾病的发生。TLR5信号通路在肠道炎症性疾病如炎症性肠病(IBD)的发生发展中发挥着重要作用。TLR5信号通路可以通过调节肠道微生物组成、肠道上皮细胞功能、粘液层、紧密连接、肠道粘膜免疫系统和细胞因子等来维持肠道稳态和免疫平衡[5]。

TLR5信号通路在COVID-19、急性呼吸窘迫综合征(ARDS)和败血症的发生发展中也可能发挥着重要作用。研究发现,COVID-19、ARDS和败血症患者中存在110个共同差异表达基因(DEGs),其中精氨酸酶1(ARG1)、Fc受体1A(FCGR1A)、髓过氧化物酶(MPO)和TLR5是影响最大的枢纽基因。TLR5信号通路与感染和免疫相关通路和功能密切相关,而FOXC1、YY1、GATA2、FOXL、STAT1和STAT3是COVID-19的重要转录因子。此外,miR-335-5p、miR-335-5p和hsa-mir-26a-5p也与COVID-19相关。这些研究结果表明,TLR5信号通路可能参与COVID-19、ARDS和败血症的发病机制,并可能成为这些疾病的治疗靶点[6]。

TLR5信号通路还与2型糖尿病(T2D)的发生发展相关。研究发现,T2D患者的肠道菌群中厚壁菌门/拟杆菌门的比值升高,同时血液中IL-1β、IL-6、IL-8、TLR2、TLR4和TLR5的基因表达水平也升高。这些研究结果表明,TLR5信号通路可能通过调节肠道菌群和细胞因子水平来影响T2D的发生和发展[7]。

TLR5信号通路在肾脏疾病中也发挥着重要作用。研究发现,TLR5激动剂鞭毛蛋白能够诱导足细胞凋亡,而TLR5激活介导的足细胞凋亡可能是细菌感染导致炎症性疾病的原因之一[8]。

TLR5信号通路在囊性纤维化(CF)中也发挥着重要的抗炎作用。研究发现,TLR5基因多态性rs5744168编码一个提前终止密码子,导致TLR5对鞭毛蛋白的响应能力降低。携带TLR5提前终止密码子的CF患者具有更高的体重指数,这表明TLR5信号通路的下调可能有助于改善CF患者的健康状况[9]。

TLR5信号通路在肠道上皮细胞中的表达受到TLR2和TLR4信号通路的调控。研究发现,TLR5的转录水平不受肠道菌群的影响,但依赖于MyD88和TRIF适配器分子。这些研究结果表明,TLR适配器分子可能是肠道上皮细胞中TLR表达的决定因素[10]。

综上所述,TLR5信号通路在肝脏再生、肠道免疫、炎症性疾病、糖尿病和肾脏疾病等过程中发挥着重要作用。TLR5信号通路通过调节免疫反应、细胞因子水平、肠道菌群和肠道上皮细胞功能等来影响机体的健康和疾病的发生发展。因此,TLR5信号通路可能成为治疗多种疾病的新靶点,并为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略[1-10]。

参考文献:
1. Zhang, Wen, Wang, Lei, Sun, Xue-Hua, Yin, Rong-Hua, Yang, Xiao-Ming. 2021. Toll-like receptor 5-mediated signaling enhances liver regeneration in mice. In Military Medical Research, 8, 16. doi:10.1186/s40779-021-00309-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33622404/
2. Nishihara, Koki, Suzuki, Yutaka, Haga, Satoshi, Roh, Sanggun. . TLR5 ligand induces the gene expression of antimicrobial peptides and CXCL8 through IL-1β gene expression in cultured rumen epithelial cells. In Animal science journal = Nihon chikusan Gakkaiho, 95, e13972. doi:10.1111/asj.13972. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38923622/
3. Törmänen, Sari, Teräsjärvi, Johanna, Lauhkonen, Eero, Nuolivirta, Kirsi, He, Qiushui. 2018. TLR5 rs5744174 gene polymorphism is associated with the virus etiology of infant bronchiolitis but not with post-bronchiolitis asthma. In Health science reports, 1, e38. doi:10.1002/hsr2.38. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30623075/
4. Meena, Naresh Kumar, Ahuja, Vineet, Meena, Kusumlata, Paul, Jaishree. 2015. Association of TLR5 gene polymorphisms in ulcerative colitis patients of north India and their role in cytokine homeostasis. In PloS one, 10, e0120697. doi:10.1371/journal.pone.0120697. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25789623/
5. Feng, Shuyan, Zhang, Chi, Chen, Shanshan, Chao, Guanqun, Zhang, Shuo. 2023. TLR5 Signaling in the Regulation of Intestinal Mucosal Immunity. In Journal of inflammation research, 16, 2491-2501. doi:10.2147/JIR.S407521. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37337514/
6. Li, Peiyu, Li, Tao, Zhang, Zhiming, Li, Zhen, Li, Zhiwang. 2023. Bioinformatics and system biology approach to identify the influences among COVID-19, ARDS and sepsis. In Frontiers in immunology, 14, 1152186. doi:10.3389/fimmu.2023.1152186. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37261353/
7. Bahar-Tokman, Hrisi, Demirci, Mehmet, Keskin, Fatma E, Kiraz, Nuri, Kocazeybek, Bekir S. . Firmicutes/Bacteroidetes Ratio in the Gut Microbiota and IL-1β, IL-6, IL-8, TLR2, TLR4, TLR5 Gene Expressions in Type 2 Diabetes. In Clinical laboratory, 68, . doi:10.7754/Clin.Lab.2022.211244. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36125161/
8. Lin, Xu, Huang, Haiting, You, Yanwu, Tan, Junhua, Wang, Jie. 2016. Activation of TLR5 induces podocyte apoptosis. In Cell biochemistry and function, 34, 63-8. doi:10.1002/cbf.3165. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26914743/
9. Blohmke, Christoph J, Park, Julie, Hirschfeld, Aaron F, Daley, Denise, Turvey, Stuart E. 2010. TLR5 as an anti-inflammatory target and modifier gene in cystic fibrosis. In Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950), 185, 7731-8. doi:10.4049/jimmunol.1001513. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21068401/
10. Brandão, Inês, Hörmann, Nives, Jäckel, Sven, Reinhardt, Christoph. 2015. TLR5 expression in the small intestine depends on the adaptors MyD88 and TRIF, but is independent of the enteric microbiota. In Gut microbes, 6, 202-6. doi:10.1080/19490976.2015.1034417. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25923903/