Ypel5-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Ypel5-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-09884

品系全称

C57BL/6JCya-Ypel5em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-383295-Ypel5-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ypel5-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-09884) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
yippee like 5
基因别称
2310076K21Rik,CGI-127
染色体号
Chr 17 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_027166 | Ensembl: ENSMUST00000045174
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~3.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Ypel5,也称为Yippee-like 5,是YPEL基因家族的成员之一。YPEL基因家族在真核生物中高度保守,其编码的蛋白质含有锌指样金属结合结构域,被认为与细胞增殖和多种类型的癌症有关。Ypel5基因编码的蛋白质在细胞分裂中发挥重要作用,其表达和功能在多种生物学过程中受到调控。

研究表明,Ypel5基因在肝脏发育和功能中发挥重要作用。在斑马鱼中,Ypel5基因的缺失导致肝脏增大,并与肝细胞增殖有关。同时,Ypel5基因缺失的斑马鱼肝代谢和功能失调,这通过代谢组和转录组分析得到证实。机制上,Hnf4a被确定为Ypel5的正向调控下游介质。斑马鱼hnf4a的过表达可以很大程度上挽救由Ypel5缺陷引起的肝脏缺陷。此外,PPARα信号通路通过直接结合Hnf4a基因的转录增强子介导Ypel5对Hnf4a的调控[1]。

Ypel5基因在细胞周期进展中也发挥重要作用。Ypel5蛋白在细胞周期的不同阶段具有不同的亚细胞定位。在间期,Ypel5蛋白位于细胞核和中心体,随后在分裂期依次转移到纺锤体极、有丝分裂纺锤体和纺锤体中部区域,最后在细胞分裂过程中转移到中部体。通过siRNA或反义形态素寡核苷酸敲低Ypel5功能,抑制了培养的COS-7细胞的生长和鱼胚胎的早期发育,表明Ypel5参与了细胞周期进展。有趣的是,通过酵母双杂交方法发现RanBPM(微管组织中心中的Ran结合蛋白,由RANBP9编码)是Ypel5的结合蛋白。RanBPM的旁系同源物RanBP10(由RANBP10编码)也被发现是另一个Ypel5结合蛋白,这两种蛋白基因彼此高度保守。比较基因组分析使我们能够定义一个新的基因家族,由RanBPM和RanBP10组成,命名为Scorpin,为更好地理解它们如何与Ypel5相互作用提供了基础[2]。

Ypel5基因在细胞凋亡中也发挥重要作用。通过功能互补酵母moh1Δ突变,发现人类Ypel5基因的促凋亡作用。当暴露于不同的凋亡诱导剂(包括紫外线照射、甲磺酸甲酯、喜树碱、热休克和渗透压休克)时,与野生型(WT)-MOH1菌株相比,酵母moh1Δ突变体的细胞活力增强。同时,与已知为DNA损伤标志物的Ynk1蛋白水平升高一样,野生型MOH1菌株中的Moh1蛋白水平通常升高。尽管酵母MOH1基因或人类Ypel1-Ypel5基因之一的转化可以消除moh1Δ突变体的紫外线抗性,但携带pYES2-YPEL5的转化体对致命的紫外线照射更为敏感,其紫外线敏感性类似于WT-MOH1菌株。在这些条件下,与WT-MOH1菌株和携带pYES2-MOH1或pYES2-YPEL5的突变菌株相比,moh1Δ突变体中紫外线照射诱导的凋亡事件(如FITC-Annexin V染色性、线粒体膜电位(ΔΨm)丧失和metacaspase激活)发生的程度要小得多。这些结果表明酵母Moh1和人类Ypel5之间的功能保守性,以及它们参与DNA损伤诱导的线粒体依赖性凋亡[3]。

此外,Ypel5基因还与干扰素刺激基因网络相关。功能基因组分析小鼠基因表达显示,Ypel5基因的表达与190个基因转录本的顺式表达和2个基因的顺式表达相关。大多数顺式表达QTL基因是干扰素刺激基因(ISGs),它们在小鼠巨噬细胞细胞系中的表达在IFNB1依赖性方式下被Ypel5沉默所刺激。在人HEK293T细胞中,YPEL5沉默增强了模式识别受体诱导的IFNB1和TBK1/IKBKE激酶的磷酸化。共免疫沉淀实验表明,YPEL5与IKBKE物理相互作用。因此,我们发现Ypel5基因(包含在编码非典型IKK激酶和IFNB1的负调节因子的位点中)是IFNB1产生和先天免疫反应的负调节因子,它与TBK1/IKBKE激酶功能性和物理性相互作用[4]。

在慢性淋巴细胞白血病(CLL)中,也发现了Ypel5基因的异常。通过配对末端转录组测序,在CLL中发现了Yippee like 5(YPEL5)和丝氨酸/苏氨酸蛋白磷酸酶PP1-β催化亚基(PPP1CB)的反复和相互RNA嵌合体。在7例指数病例中,有2例(28%)在初始筛选中携带相互RNA嵌合体。使用定量实时PCR(q real-time PCR),在103例CLL样本中的97例(95%)中检测到YPEL5/PPP1CB和PPP1CB/YPEL5融合转录本,但在配对的正常样本、良性淋巴细胞或各种无关癌症中没有检测到。全基因组测序和Southern印迹分析没有发现YPEL5和PPP1CB之间基因组融合的证据。当将YPEL5/PPP1CB嵌合体引入哺乳动物细胞时,表达了一种截断的PPP1CB蛋白,该蛋白的磷酸酶活性降低。PPP1CB沉默导致MEC1和JVM3细胞的增殖和集落形成增强,这表明其在成熟B细胞白血病的发病机制中发挥作用[5]。

Ypel5基因在透明细胞肾细胞癌(ccRCC)中的表达和预后也受到关注。通过使用更新后的公共数据库中的泛癌数据,系统全面地分析了YPEL基因在33种癌症中的表达和相关性。通过生存分析和Cox回归分析评估了YPEL基因的预后价值。考虑到肿瘤微环境和干细胞指数之间的关系,评估了超氧化物歧化酶的功能。肿瘤免疫评估资源(TIMER)和CIBERSORT算法分析用于评估YPEL基因与肿瘤免疫浸润细胞(TIICs)之间的相关性。此外,还开发了YPEL基因的敲低实验,以探索它们对ccRCC细胞系增殖、迁移和侵袭的影响。YPEL家族成员在ccRCC中表达不同。YPEL1、YPEL2和YPEL5表达水平升高与总体生存和疾病特异性生存改善相关。TIMER和CIBERSORT分析显示YPEL家族成员与TIICs之间有显著相关性。更重要的是,Cell Counting Kit-8、EdU和Transwell实验结果显示,敲除YPEL1、YPEL2和YPEL5可以促进ccRCC细胞系的增殖、迁移和侵袭能力。因此,本研究为YPEL1、YPEL2和YPEL5在ccRCC中的作用提供了新的见解,YPEL1与免疫浸润之间的关系可能为未来的临床治疗提供新的选择[6]。

综上所述,Ypel5基因在多种生物学过程中发挥重要作用,包括肝脏发育和功能、细胞周期进展、细胞凋亡、干扰素刺激基因网络和癌症发生。Ypel5基因的异常表达和功能改变与多种疾病的发生和发展相关。进一步研究Ypel5基因的功能和调控机制,有助于深入理解其生物学作用和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Deng, Yun, Han, Xiao, Chen, Huiqiao, Zhu, Jun, Yuan, Hao. . Ypel5 regulates liver development and function in zebrafish. In Journal of molecular cell biology, 15, . doi:10.1093/jmcb/mjad019. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36948605/
2. Hosono, Katsuhiro, Noda, Setsuko, Shimizu, Atsushi, Shimizu, Nobuyoshi, Minoshima, Shinsei. 2010. YPEL5 protein of the YPEL gene family is involved in the cell cycle progression by interacting with two distinct proteins RanBPM and RanBP10. In Genomics, 96, 102-11. doi:10.1016/j.ygeno.2010.05.003. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20580816/
3. Lee, Ji Young, Jun, Do Youn, Park, Ju Eun, Kim, Jong-Sik, Kim, Young Ho. . Pro-Apoptotic Role of the Human YPEL5 Gene Identified by Functional Complementation of a Yeast moh1Δ Mutation. In Journal of microbiology and biotechnology, 27, 633-643. doi:10.4014/jmb.1610.10045. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28173693/
4. Hosono, Katsuhiro, Sasaki, Takashi, Minoshima, Shinsei, Shimizu, Nobuyoshi. . Identification and characterization of a novel gene family YPEL in a wide spectrum of eukaryotic species. In Gene, 340, 31-43. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15556292/
5. Jeidane, Saloua, Scott-Boyer, Marie-Pier, Tremblay, Nicolas, Lamarre, Daniel, Deschepper, Christian F. . Association of a Network of Interferon-Stimulated Genes with a Locus Encoding a Negative Regulator of Non-conventional IKK Kinases and IFNB1. In Cell reports, 17, 425-435. doi:10.1016/j.celrep.2016.09.009. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27705791/
6. Velusamy, Thirunavukkarasu, Palanisamy, Nallasivam, Kalyana-Sundaram, Shanker, Chinnaiyan, Arul M, Elenitoba-Johnson, Kojo S J. 2013. Recurrent reciprocal RNA chimera involving YPEL5 and PPP1CB in chronic lymphocytic leukemia. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 110, 3035-40. doi:10.1073/pnas.1214326110. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23382248/