Lyg2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Lyg2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-09572

品系全称

C57BL/6JCya-Lyg2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-332427-Lyg2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Lyg2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-09572) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
lysozyme G-like 2
基因别称
Gm776
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001033427.3 | Ensembl: ENSMUST00000078307
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~6
敲除长度
~8201 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Lyg2,也称为鹅型溶菌酶基因2,是溶菌酶基因家族成员之一。溶菌酶是一种具有抗菌活性的酶,能够破坏细菌细胞壁中的肽聚糖,从而发挥免疫防御作用。Lyg2在多种动物中均有发现,包括哺乳动物和鱼类。在哺乳动物中,Lyg2与另一个溶菌酶基因Lyg1一起存在于基因组中,这两个基因来源于早期基因复制事件。然而,在某些哺乳动物中,Lyg1或Lyg2基因可能发生丢失,导致该物种只保留一个溶菌酶基因。例如,在完全水生的哺乳动物中,如鲸类和海牛,以及树鼩等物种中,Lyg2基因丢失的现象较为普遍[1]。

研究发现,Lyg2基因的表达与毛发生长和脱发相关。在毛发生长过程中,Lyg2基因的表达会显著上调,而在脱发过程中则会下调。这表明Lyg2基因可能参与了毛发的生长和发育过程。此外,Lyg2基因的表达还与肠道菌群有关。在鸡蛋产蛋期,肠道菌群发生了显著变化,其中乳酸菌、毛螺菌和弯曲菌等微生物的丰度与Lyg2基因的表达相关。这表明肠道菌群和宿主基因表达可能共同影响鸡蛋产量[2]。

在鱼类中,Lyg2基因的表达模式在黏膜屏障对抗细菌感染过程中也具有重要意义。研究发现,在鲽鱼中,Lyg2基因在受到不同细菌感染后,其表达模式与Lyg1基因不同。在受到维氏气单胞菌和链球菌感染后,Lyg2基因在黏膜组织中的表达显著上调,而Lyg1基因则呈下调趋势。这表明Lyg2基因在黏膜免疫应答中发挥着关键作用,有助于防止病原体附着和入侵[3]。

此外,Lyg2基因在鸡的免疫应答中也具有重要作用。在鸡感染沙门氏菌后,Lyg2基因的表达显著上调,这表明Lyg2基因参与了鸡的天然免疫反应。研究发现,Lyg2基因的表达与多种免疫相关基因的表达相关,如MMP7、IRG1、SAA、ExFABP、IL-22、TRAP6、IFNγ、iNOS、ES1和IL-1β等[4,5,6]。

在马的基因组中,Lyg2基因也发生了选择性进化。研究发现,冰岛马和埃克斯穆尔矮种马中存在多个与性能相关的选择性进化区域,其中一些区域与代谢过程、体型和免疫系统相关。此外,在埃克斯穆尔矮种马中,还存在与毛色、免疫系统和生育能力相关的选择性进化区域,其中包括Lyg1和Lyg2基因[7]。

综上所述,Lyg2基因在多种动物中具有重要的生物学功能,包括参与毛发生长和发育、调节肠道菌群和免疫应答等。Lyg2基因的表达模式受到多种因素的影响,如物种、组织类型和生理状态等。Lyg2基因的研究有助于深入理解溶菌酶基因家族的进化历程和功能多样性,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Zhang, Xiaoqing, Chi, Hai, Li, Gang, Rossiter, Stephen J, Liu, Yang. . Parallel Independent Losses of G-Type Lysozyme Genes in Hairless Aquatic Mammals. In Genome biology and evolution, 13, . doi:10.1093/gbe/evab201. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34450623/
2. Shi, Kai, Liu, Xiangping, Duan, Ying, Li, Dongfeng, Feng, Chungang. 2024. Dynamic Changes in Intestinal Gene Expression and Microbiota across Chicken Egg-Laying Stages. In Animals : an open access journal from MDPI, 14, . doi:10.3390/ani14111529. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38891577/
3. Gao, Chengbin, Fu, Qiang, Zhou, Shun, Su, Baofeng, Li, Chao. 2016. The mucosal expression signatures of g-type lysozyme in turbot (Scophthalmus maximus) following bacterial challenge. In Fish & shellfish immunology, 54, 612-9. doi:10.1016/j.fsi.2016.05.015. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27189917/
4. Volf, Jiri, Polansky, Ondrej, Varmuzova, Karolina, Velge, Philippe, Rychlik, Ivan. 2016. Transient and Prolonged Response of Chicken Cecum Mucosa to Colonization with Different Gut Microbiota. In PloS one, 11, e0163932. doi:10.1371/journal.pone.0163932. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27685470/
5. Sekelova, Zuzana, Stepanova, Hana, Polansky, Ondrej, Rychlik, Ivan, Vlasatikova, Lenka. 2017. Differential protein expression in chicken macrophages and heterophils in vivo following infection with Salmonella Enteritidis. In Veterinary research, 48, 35. doi:10.1186/s13567-017-0439-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28623956/
6. Matulova, Marta, Varmuzova, Karolina, Sisak, Frantisek, Zdrahal, Zbynek, Rychlik, Ivan. 2013. Chicken innate immune response to oral infection with Salmonella enterica serovar Enteritidis. In Veterinary research, 44, 37. doi:10.1186/1297-9716-44-37. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23687968/
7. Sigurðardóttir, Heiðrún, Ablondi, Michela, Kristjansson, Thorvaldur, Lindgren, Gabriella, Eriksson, Susanne. 2024. Genetic diversity and signatures of selection in Icelandic horses and Exmoor ponies. In BMC genomics, 25, 772. doi:10.1186/s12864-024-10682-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39118059/