Oacyl-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Oacyl-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-09205

品系全称

C57BL/6JCya-Oacylem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-319888-Oacyl-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Oacyl-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-09205) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
O-acyltransferase like
基因别称
5330437I02Rik,Acyl3
染色体号
Chr 18 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_177028.3 | Ensembl: ENSMUST00000115097
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 4~7
敲除长度
~6189 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
基因Oacyl,即Ghrelin O-acyl transferase (GOAT),是一种关键的酶,负责将一个中链脂肪酸侧链(主要是辛酰基)转移到生长激素释放肽(ghrelin)的第3位丝氨酸残基上,从而生成酰化的ghrelin(AG)。酰化的过程对于ghrelin与经典ghrelin受体(生长激素释放肽受体1a,GHSR-1a)的结合和激活是必需的[1]。GOAT在多种组织中表达,包括下丘脑-垂体-性腺轴、胰岛、肾上腺轴以及胃肠道、骨骼和味觉系统[1]。GOAT的功能受到膳食脂肪的影响,并且已经证明它在调节能量稳态和葡萄糖代谢中发挥着重要作用,主要通过调节AG的产生[1]。

GOAT的遗传多态性对饱腹感和代谢变化的影响一直是研究的热点。尽管已经发现了一些与ghrelin基因、其受体基因和ghrelin的酰化酶GOAT相关的遗传多态性,但这些多态性对饱腹感和代谢的影响通常是微小的或无显著性的,并且研究结果之间常常存在矛盾[2]。这可能是因为ghrelin与多种因素相互作用,形成一个复杂的网络。为了更准确地理解这些遗传多态性的作用,可能需要采用系统生物学的方法来研究ghrelin轴的整个网络[2]。

GOAT的遗传研究已经表明,该基因的变异与肥胖、身材、2型糖尿病、心血管疾病、进食障碍和寻求奖励行为等特征相关[3]。这些研究为理解ghrelin信号通路在人类异质性遗传基础中的作用提供了重要信息。

胃ghrelin细胞在肥胖患者中表现出过度活跃的特性。研究发现,肥胖患者的ghrelin和GOAT的mRNA表达水平显著增加,这与血糖值、体重指数和GOAT之间呈正相关。在2型糖尿病的肥胖患者中,ghrelin的高表达与内分泌超活性的超微结构特征相匹配,包括扩张的粗面内质网和内分泌颗粒的密度、大小和电子密度的减少[4]。这些结果表明,胃ghrelin的过度产生可能在2型糖尿病的发病机制中发挥重要作用。

植物中的膜结合O-酰基转移酶(MBOAT)基因家族编码了多种酰基转移酶,这些酶在植物酰基脂质代谢中发挥着重要作用。研究发现,植物MBOAT基因模型可以分为四个主要组,其中两个组可能编码二酰甘油酰基转移酶1(DGAT1)和溶血磷脂酰基转移酶(LPLAT),分别具有1-3个拷贝的旁系同源基因。此外,还发现一组与酵母甘油摄取蛋白(GUP)同源的基因序列,这些基因在植物中具有保守的拷贝数,并且与脊椎动物的同源基因相比,酰基转移酶的关键残基更倾向于被保守[5]。

在鸭类中,肝基因的表达与肝脂肪变性程度和脂质分泌相关。研究发现,在喂食条件下,脂肪合成和甘油三酯合成以及糖酵解相关基因的表达水平升高,而β-氧化相关基因的表达水平下降。此外,还观察到物种效应,特别是在硬脂酰辅酶A去饱和酶1和二酰甘油O-酰基转移酶2的表达上,导致北京鸭和穆尔鸭在喂食过量时的表达水平差异很大,这可能解释了两种鸭类在脂质代谢和脂肪变性能力上的差异[6]。

在ghrelin的研究中,酰化修饰是一个重要的特征。酰化修饰的特异性在于它通过一个易受酯酶影响的酯键发生在ghrelin保守的丝氨酸-3残基上,主要由辛酰基和少量癸酰基组成。这种酯键的特性使得ghrelin容易转化为其去酰化形式。因此,在样本收集后,如果酯酶的作用没有被充分抑制,ghrelin的去酰化可能会导致错误的结果[7]。

最近的研究表明,β-氧化在ghrelin产生细胞中的ghrelin酰基修饰中起着重要作用。研究发现,无脂肪饮食和肠道微生物群的去除并没有降低胃部或血浆中的酰化ghrelin水平。在胰腺来源的ghrelinoma(PG-1)细胞中,通过RT-PCR分析发现,涉及脂肪酸合成、代谢和转运的基因都得到了表达。用不可逆的肉碱棕榈酰转移酶-1(CPT-1)抑制剂处理PG-1细胞后,酰化ghrelin的水平显著降低,但并没有影响ghrelin或GOAT的mRNA水平。这表明,用于ghrelin酰基修饰的中链脂肪酸是由ghrelin产生细胞本身通过β-氧化长链脂肪酸产生的[8]。

此外,代谢组学和脂质组学在研究ghrelin相关疾病中发挥着重要作用。例如,在中央早熟青春期(CPP)的女孩中,通过无靶向代谢组学和脂质组学分析,发现了与CPP相关的差异表达代谢物和脂质。这些研究有助于深入了解CPP的病因和发病机制,并为开发新的诊断和治疗策略提供依据[9]。

综上所述,基因Oacyl(GOAT)是一种关键的酶,负责将中链脂肪酸侧链转移到ghrelin上,生成酰化的ghrelin(AG)。GOAT的功能受到膳食脂肪的影响,并且在调节能量稳态和葡萄糖代谢中发挥着重要作用。GOAT的遗传多态性与肥胖、2型糖尿病等代谢疾病相关。胃ghrelin细胞在肥胖患者中表现出过度活跃的特性,可能与2型糖尿病的发病机制相关。植物中的MBOAT基因家族在酰基脂质代谢中发挥着重要作用。鸭类中的肝基因表达与肝脂肪变性程度和脂质分泌相关。酰化修饰是ghrelin的一个重要特征,其特异性在于通过一个易受酯酶影响的酯键发生在ghrelin保守的丝氨酸-3残基上。β-氧化在ghrelin产生细胞中的ghrelin酰基修饰中起着重要作用。代谢组学和脂质组学在研究ghrelin相关疾病中发挥着重要作用。这些研究为深入理解ghrelin的生物学功能和代谢相关疾病的发生机制提供了重要的理论基础,并为开发新的治疗策略提供了新的思路和策略。

参考文献:
1. Al Massadi, O, Tschöp, M H, Tong, J. 2011. Ghrelin acylation and metabolic control. In Peptides, 32, 2301-8. doi:10.1016/j.peptides.2011.08.020. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21893140/
2. Perret, Jason, De Vriese, Carine, Delporte, Christine. . Polymorphisms for ghrelin with consequences on satiety and metabolic alterations. In Current opinion in clinical nutrition and metabolic care, 17, 306-11. doi:10.1097/MCO.0000000000000072. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24870813/
3. Liu, Boyang, Garcia, Edwin A, Korbonits, Márta. 2011. Genetic studies on the ghrelin, growth hormone secretagogue receptor (GHSR) and ghrelin O-acyl transferase (GOAT) genes. In Peptides, 32, 2191-207. doi:10.1016/j.peptides.2011.09.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21930173/
4. Castorina, Sergio, Barresi, Vincenza, Luca, Tonia, Condorelli, Daniele Filippo, Cinti, Saverio. 2020. Gastric ghrelin cells in obese patients are hyperactive. In International journal of obesity (2005), 45, 184-194. doi:10.1038/s41366-020-00711-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33230309/
5. Wang, Peng, Wang, Zhunian, Dou, Yongchao, Wang, Maoyuan, Tian, Xinmin. 2013. Genome-wide identification and analysis of membrane-bound O-acyltransferase (MBOAT) gene family in plants. In Planta, 238, 907-22. doi:10.1007/s00425-013-1939-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23928653/
6. Hérault, F, Saez, G, Robert, E, Baéza, E, Diot, C. 2009. Liver gene expression in relation to hepatic steatosis and lipid secretion in two duck species. In Animal genetics, 41, 12-20. doi:10.1111/j.1365-2052.2009.01959.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19781035/
7. Gutierrez, Jesus A, Willency, Jill A, Knierman, Michael D, Higgs, Richard E, Hale, John E. . From ghrelin to ghrelin's O-acyl transferase. In Methods in enzymology, 514, 129-46. doi:10.1016/B978-0-12-381272-8.00009-X. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22975051/
8. Ikenoya, Chika, Takemi, Shota, Kaminoda, Arisa, Sakai, Takafumi, Sakata, Ichiro. 2018. β-Oxidation in ghrelin-producing cells is important for ghrelin acyl-modification. In Scientific reports, 8, 9176. doi:10.1038/s41598-018-27458-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29907775/
9. Zhao, Hong-Ying, Zhang, Ya-Rong, Zhang, Ran, Guo, Rong-Lian, Shi, Wen-Sheng. 2023. Comprehensive analysis of untargeted metabolomics and lipidomics in girls with central precocious puberty. In Frontiers in pediatrics, 11, 1157272. doi:10.3389/fped.2023.1157272. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37252040/