Slc4a11-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Slc4a11-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-08675

品系全称

C57BL/6NCya-Slc4a11em1/Cya

品系背景

C57BL/6NCya

品系编号

KOCMP-269356-Slc4a11-B6N-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Slc4a11-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-08675) were purchased from Cyagen.
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基因型
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基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
solute carrier family 4, sodium bicarbonate transporter-like, member 11
基因别称
BTR1,NaBC1
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001081162 | Ensembl: ENSMUST00000099362
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 4~8
敲除长度
~2.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2138987Mice homozygous for a gene trapped allele show a collapsed vestibular labyrinth, reduced brainstem auditory potentials, and altered corneal epithelium. Mice homozygous for a reporter allele show corneal endothelial dystrophy, polyuria, natriuresis, urinehypoosmolarity and impaired hearing.
SLC4A11,也称为NaBC1,是SLC4家族的一员,是一种Na+依赖性HCO3-转运蛋白,主要在角膜内皮细胞中表达。SLC4A11的突变会导致先天性遗传性内皮营养不良(CHED)和某些Fuchs内皮角膜营养不良的病例。SLC4A11在维持角膜内皮细胞的离子稳态和能量代谢中发挥着重要作用。此外,SLC4A11还参与细胞黏附和细胞骨架组织,对于维持角膜的完整性和功能至关重要。

在SLC4A11-/-小鼠角膜中,RNA测序结果显示,共有100个基因的表达发生了显著改变。这些基因主要富集在细胞外区、细胞骨架、细胞黏附和质膜功能等方面。这些基因表达的改变进一步被分为细胞命运和发育、细胞外基质和细胞黏附、细胞骨架、离子稳态和能量代谢等类别。这些基因表达的改变证实了SLC4A11在离子稳态、能量代谢、细胞黏附和细胞骨架组织中的重要作用[1]。

研究发现,SLC4A11在调节脱氧雪腐镰刀菌毒素(DON)的细胞毒性方面发挥着重要作用。DON处理导致IPEC-J2细胞活力下降、细胞周期阻滞在G2/M期、细胞凋亡率增加。SLC4A11和MFSD3基因的表达在DON处理后显著下调。过表达SLC4A11和MFSD3可以增强细胞活力。DNA甲基化分析表明,SLC4A11和MFSD3启动子的甲基化水平显著升高,与mRNA表达呈负相关。进一步分析发现,SLC4A11和MFSD3的mC-1位于NF-1和Sp1转录因子结合位点上。这些发现揭示了猪SLC4A11和MFSD3基因在调节DON引起的细胞毒性效应中的新生物学功能,并可能有助于DON潜在毒性的预测和消除[2]。

在印度CHED2家庭中进行的突变分析发现,SLC4A11基因中存在四种新的突变(p.Thr262Ile、p.Gly417Arg、p.Cys611Arg和p.His724Asp)和一种已知的p.Arg869His纯合突变。这些突变增加了SLC4A11基因的突变谱。文献回顾表明,迄今为止,SLC4A11基因中已报道的突变总数为78个,其中大多数为错义突变,其次是插入-缺失突变。这项研究将有助于这些家庭的遗传诊断[3]。

CHED是一种罕见的常染色体隐性遗传性角膜内皮疾病,其特征是出生时出现非进行性双侧角膜水肿和混浊。SLC4A11基因编码SLC4家族的跨膜蛋白,在角膜内皮和内耳中表达,导致CHED和听觉障碍(Harboyan综合征)。slc4a11-null小鼠模型复制了CHED的疾病表型,从而证实了SLC4A11在CHED中的作用。然而,SLC4A11的转运功能尚未明确。SLC4A11被认为具有H+和NH4+渗透、电生性Na+-H+交换和水转运等功能。未来对SLC4A11功能失调后果的研究以及进一步了解角膜内皮细胞离子转运,将有助于阐明SLC4A11在CHED病理生理学中的作用[4]。

SLC4A11在感觉系统中的作用尚不清楚。SLc4a11(-/-)小鼠的研究表明,NaBC1在螺旋韧带成纤维细胞中表达,从耳蜗基底部到顶部均有免疫反应。NaBC1免疫反应还存在于前庭迷路中,在前庭囊、球囊和囊壶腹的非免疫反应感觉上皮下的间质细胞中。Slc4a11(-/-)小鼠的听觉脑干反应和前庭诱发电位波形均显著异常。在角膜中,NaBC1在角膜内皮细胞层中高度表达,在上皮细胞中表达较少。然而,与人类不同,角膜表型较轻,裂隙灯检查正常。角膜内皮细胞形态正常;然而,与野生型小鼠相比,Slc4a11(-/-)小鼠角膜基底上皮细胞的绝对高度和基底上皮细胞/总角膜厚度的相对值均显著增加。这些结果首次证明了NaBC1在听觉前庭系统中的重要性,并为SLC4A11作为具有孤立性前庭听觉障碍患者的潜在候选基因提供了支持[5]。

SLC4A11是一种电生性H+转运蛋白,由NH3和碱性pH激活。SLC4A11突变可导致角膜内皮营养不良和听力下降,在SLC4A11敲除小鼠中得到复制。SLC4A11在细胞内线粒体膜上促进谷氨酰胺分解代谢,并抑制线粒体超氧的产生,通过提供对氨敏感的H+解偶联,减少谷氨酰胺驱动的线粒体膜电位过度极化。SLC4A11 KO中的线粒体氧化应激还会触发功能障碍的自噬和溶酶体,以及内质网应激。SLC4A11的表达通过转录因子NRF2,抗氧化基因的主要调节因子,在氧化应激下被诱导。除了角膜内皮细胞,SLC4A11的功能在耳蜗成纤维细胞、唾液腺和肾脏中得到了证实,但在整体上仍然有待进一步探索。SLC4A11表达的升高是某些“谷氨酰胺依赖性”癌症的一个组成部分,可能与依赖谷氨酰胺分解代谢的细胞和组织有关[6]。

在人类角膜中,SLC4A11的表达与两种盲性角膜营养不良有关:儿童期发病的先天性遗传性内皮营养不良(CHED)和某些晚期发病的Fuchs内皮角膜营养不良(FECD)。三种N端SLC4A11变体:v1、v2和v3在人类中表达。研究发现,在人类角膜内皮细胞中,只有v2和v3 mRNA,但v2最为丰富。免疫印迹分析表明,v2蛋白在人类角膜内皮细胞中的含量是v3的约四倍。生物信息学和蛋白质分析使用变体特异性抗体发现,v2的开放阅读框中的第二个甲硫氨酸(M36)在人类角膜中作为SLC4A11 v2的翻译起始位点。v2从M1(v2-M1)和M36(v2-M36)开始的变体在细胞表面转运和运输功能(水通量)方面没有区别。v2-M36和v3的结构同源模型表明存在结构差异,但其意义尚不清楚。生物信息学、RNA定量和变体特异性抗体的组合分析表明,SLC4A11变体2在角膜内皮细胞中占主导地位[7]。

β-连环蛋白的激活通过刺激谷氨酰胺分解代谢增加HCC中的氨产生。β-连环蛋白/LEF1激活了GLUD1的转录,然后促进氨的利用,增强谷氨酸、天冬氨酸和脯氨酸的产生。β-连环蛋白/TCF4诱导SLC4A11的转录,SLC4A11是一种氨转运蛋白,用于排泄过量的氨。SLC4A11在HCC肿瘤组织中上调,高SLC4A11表达与不良预后和晚期疾病阶段相关。SLC4A11的缺失在体外诱导HCC细胞衰老,通过阻断氨的排泄,并在体内减少β-连环蛋白驱动的肿瘤生长。此外,氨水平的升高促进了β-连环蛋白突变HCC的进展,而SLC4A11的缺失则阻碍了这种进展。SLC4A11的下调导致肿瘤间质液中氨的积累和HCC中激活β-连环蛋白的血浆氨水平降低。总的来说,这项研究表明β-连环蛋白的激活重新编程了氨代谢,而通过靶向SLC4A11阻断氨的排泄可能是一种有希望的诱导β-连环蛋白突变HCC衰老的方法。由β-连环蛋白的异常激活介导的氨代谢重新编程导致HCC对衰老的抵抗,并且可以通过抑制SLC4A11作为β-连环蛋白突变肝细胞癌的潜在治疗方法[8]。

SLC4A11、ZEB1、LOXHD1和AGBL1基因的突变在Fuchs内皮角膜营养不良(FECD)的发展中可能起着一定的作用。SLC4A11基因的突变与FECD的发病密切相关。通过系统回顾SLC4A11、ZEB1、LOXHD1和AGBL1基因在FECD病例中的变异,发现SLC4A11基因的变异在FECD的发病中起着重要作用。然而,ZEB1、LOXHD1和AGBL1基因的变异在FECD中的致病作用尚未得到证实。需要进一步的研究来明确这些基因变异在FECD发病中的确切作用[9]。

研究发现,tBHQ或Nrf2过表达导致HeLa和人类角膜内皮细胞中SLC4A11表达的升高。在几种哺乳动物物种的SLC4A11启动子中发现了一个保守的Nrf2结合序列。报告基因分析显示,tBHQ处理和Nrf2过表达对SLC4A11启动子有转录激活作用。染色质免疫沉淀分析证实了Nrf2与SLC4A11启动子的保守序列结合。Nrf2途径的诱导还导致内源性SLC4A11蛋白含量增加。另一方面,Nrf2的耗竭抑制了SLC4A11的转录和翻译活性。总之,研究发现Nrf2直接结合到SLC4A11启动子内的抗氧化反应元件位点上,并且观察到Nrf2诱导剂导致SLC4A11表达增加。据我们所知,这是首次研究Nrf2在SLC4A11基因表达调节中的重要作用[10]。

综上所述,SLC4A11在维持角膜内皮细胞的离子稳态和能量代谢中发挥着重要作用,同时还参与细胞黏附和细胞骨架组织。SLC4A11的突变与多种疾病相关,包括CHED、FECD和HCC等。SLC4A11的功能失调会导致角膜水肿、听力下降和细胞衰老等病理现象。进一步研究SLC4A11的功能和调控机制,将有助于深入理解其在疾病发生中的作用,并为相关疾病的治疗提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Alvarez, Bernardo V, Piché, Marilyse, Aizouki, Carolin, Brunette, Isabelle, Casey, Joseph R. 2021. Altered gene expression in slc4a11-/- mouse cornea highlights SLC4A11 roles. In Scientific reports, 11, 20885. doi:10.1038/s41598-021-98921-w. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34686736/
2. Xu, Yafei, Chen, Xiaolei, Yu, Luchen, Wu, Shenglong, Bao, Wenbin. 2021. SLC4A11 and MFSD3 Gene Expression Changes in Deoxynivalenol Treated IPEC-J2 Cells. In Frontiers in genetics, 12, 697883. doi:10.3389/fgene.2021.697883. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34367255/
3. Kodaganur, Srinivas Gopinath, Kapoor, Saketh, Veerappa, Avinash M, Prakash, D Ravi, Kumar, Arun. 2013. Mutation analysis of the SLC4A11 gene in Indian families with congenital hereditary endothelial dystrophy 2 and a review of the literature. In Molecular vision, 19, 1694-706. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23922488/
4. Patel, Sangita P, Parker, Mark D. 2015. SLC4A11 and the Pathophysiology of Congenital Hereditary Endothelial Dystrophy. In BioMed research international, 2015, 475392. doi:10.1155/2015/475392. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26451371/
5. Lopez, Ivan A, Rosenblatt, Mark I, Kim, Charles, Abuladze, Natalia, Kurtz, Ira. 2009. Slc4a11 gene disruption in mice: cellular targets of sensorineuronal abnormalities. In The Journal of biological chemistry, 284, 26882-96. doi:10.1074/jbc.M109.008102. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19586905/
6. Bonanno, Joseph A, Shyam, Raji, Choi, Moonjung, Ogando, Diego G. 2022. The H+ Transporter SLC4A11: Roles in Metabolism, Oxidative Stress and Mitochondrial Uncoupling. In Cells, 11, . doi:10.3390/cells11020197. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35053313/
7. Malhotra, Darpan, Loganathan, Sampath K, Chiu, Anthony M, Lukowski, Chris M, Casey, Joseph R. 2019. Human Corneal Expression of SLC4A11, a Gene Mutated in Endothelial Corneal Dystrophies. In Scientific reports, 9, 9681. doi:10.1038/s41598-019-46094-y. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31273259/
8. Wang, Ye, Cheng, Chunxiao, Lu, Yanjun, Li, Binghua, Yu, Decai. . β-Catenin Activation Reprograms Ammonia Metabolism to Promote Senescence Resistance in Hepatocellular Carcinoma. In Cancer research, 84, 1643-1658. doi:10.1158/0008-5472.CAN-23-0673. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38417136/
9. Tsedilina, Tatiana Romanovna, Sharova, Elena, Iakovets, Valeriia, Skorodumova, Liubov Olegovna. 2023. Systematic review of SLC4A11, ZEB1, LOXHD1, and AGBL1 variants in the development of Fuchs' endothelial corneal dystrophy. In Frontiers in medicine, 10, 1153122. doi:10.3389/fmed.2023.1153122. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37441688/
10. Guha, Sanjukta, Roy, Sanhita. 2021. Enhanced expression of SLC4A11 by tert-Butylhydroquinone is mediated by direct binding of Nrf2 to the promoter of SLC4A11. In Free radical biology & medicine, 167, 299-306. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2021.03.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33744340/