Stk32a-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Stk32a-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-08637

品系全称

C57BL/6JCya-Stk32aem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-269019-Stk32a-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Stk32a-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-08637) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
serine/threonine kinase 32A
基因别称
A930015B13Rik,YANK1
染色体号
Chr 18 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_178749.3 | Ensembl: ENSMUST00000045477
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~4
敲除长度
~1149 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2442403Homozygous knock-out mice show disruption of the planar polarized organization of vestibular hair cells in the utricle.
Stk32a,也称为Serine/threonine kinase 32A,是一种丝氨酸/苏氨酸激酶。激酶是一类重要的细胞内信号分子,在多种生物过程中发挥着关键作用。Stk32a属于“暗激酶”(dark kinases),这类激酶在生物学功能和疾病发生发展中的作用尚未被充分研究,但已有研究揭示了其在某些生物学过程和疾病中的潜在作用。

在哺乳动物的内耳发育过程中,Stk32a基因的表达对毛细胞平面极性的形成起着重要作用。内耳的耳蜗和前庭斑含有感觉受体毛细胞,这些毛细胞通过检测线性加速度来感知运动,并参与维持姿势和协调运动。毛细胞分为两组,由一条极性反转线(LPR)分隔,这两组毛细胞的静纤毛束分别具有相反的平面极性,从而检测不同方向的运动。转录因子EMX2已被证实通过调节毛细胞边界处跨膜受体GPR156的分布来建立这种平面极化组织。Stk32a基因作为EMX2的下游效应分子,其表达模式与Emx2基因的表达模式互补,Stk32a的表达对于将毛细胞束的内在极性与EMX2阴性区域的核心平面细胞极性(PCP)蛋白对齐至关重要,并且当其在相邻的EMX2阳性区域中异常表达时,足以重新定向毛细胞束。STK32A通过调节GPR156的顶端定位来强化LPR的形成。这些观察结果支持了一种模型,即毛细胞束的定向在耳蜗和前庭斑的两侧通过不同的机制来确定,EMX2介导的Stk32a抑制决定了LPR的最终位置[1]。

除了在内耳发育中的作用外,Stk32a还在肿瘤的发生发展中发挥重要作用。例如,在非小细胞肺癌(NSCLC)中,miR-130a-5p的表达下调,而miR-130a-5p能够通过直接靶向转录因子RUNX2并调节其表达来抑制NSCLC细胞的增殖、迁移、侵袭以及上皮-间质转化(EMT)。RUNX2与STK32A相互作用以促进STK32A的表达,从而促进NSCLC的侵袭和转移。miR-130a-5p通过调节RUNX2/STK32A/NF-κB p65轴来抑制NSCLC的生长和EMT,这为NSCLC的治疗提供了潜在靶点[2]。

此外,泛癌分析揭示了人类激酶组在多种癌症中的DNA甲基化和基因表达模式。通过分析TCGA数据库中32种癌症的数据,发现了一些被忽视的暗激酶,包括STK32A,它们在患者生存中发挥着重要作用。这些暗激酶可能成为癌症诊断和预后评估的潜在生物标志物[3]。

在肺腺癌(LUAD)中,基于不同焦亡相关基因(PRGs)亚型的风险因素分析和生存预测模型的建立表明,STK32A基因在LUAD的异质性中发挥重要作用。基于PRGs的亚型,患者被分为两种亚型,其中亚型1的生存概率高于亚型2。基因风险评分与LUAD患者的预后密切相关。GO分析和KEGG分析揭示了两种亚型之间差异表达蛋白所涉及的重要生物学过程和信号通路。基于13个基因构建的预测模型,包括STK32A,与LUAD患者的总生存期(OS)密切相关,并反映了患者的免疫状态。该模型通过验证显示出良好的预测效率[4]。

在胃癌中,hsa_circ_0005927作为一种新型的环状RNA,与胃癌的侵袭和转移密切相关。hsa_circ_0005927在胃癌组织和血浆中的表达下调,与淋巴结转移、远处转移、总生存期和无病生存期呈负相关。hsa_circ_0005927可以作为早期胃癌筛查的生物标志物。hsa_circ_0005927具有多个miRNA反应元件(MREs),与5个miRNA相互作用。转录组测序和生物信息学分析表明,hsa_circ_0005927的下游靶基因主要参与T细胞凋亡过程的负调控、白介素-27介导的信号通路、生长因子活性、鸟苷酸环化酶活性、癌症中的转录失调、cGMP-PKG信号通路和促性腺激素释放激素信号通路。GUCY1A2和STK32A是hsa_circ_0005927的关键靶基因,与免疫浸润显著相关[5]。

此外,基于缺氧和铁死亡相关基因的肺腺癌预后模型表明,STK32A基因在肺腺癌的预后评估中具有重要意义。通过分析TCGA数据库中的肺腺癌数据,构建了一个包含14个基因的预后模型,包括STK32A,该模型能够准确预测肺腺癌患者的预后。ROC曲线和nomogram分析显示,基于预后特征的风险评分提供了良好的预测准确性和临床应用价值。基因集变异分析表明,不同风险组之间存在33个标志性基因集的差异性富集。此外,研究发现,高风险评分与更多的成纤维细胞和活化的CD4 T细胞相关,但与更少的骨髓树突状细胞、内皮细胞、嗜酸性粒细胞、未成熟的树突状细胞和中性粒细胞相关[6]。

在吸烟与肺癌发展相关基因的甲基化研究中,发现吸烟可以改变与肺癌风险相关的基因的甲基化水平。通过Illumina Infinium Human Methylation450 Beadchip阵列测量全血样本中2854个CpG候选位点的DNA甲基化水平,发现吸烟与STK32A基因中一个CpG位点的甲基化水平相关,并且与吸烟累积量呈负相关[7]。

在创伤性脑损伤(TBI)后海马体中lncRNA和mRNA的特异性表达发现中,STK32A基因的表达在TBI组中发生改变。与假手术组相比,TBI组中有270个lncRNA表达发生变化,其中224个上调,46个下调。在下调的lncRNA中,mRNA分布在6个lncRNA的上游,3个lncRNA的下游,10个lncRNA的重叠区域,以及8个lncRNA的反义链上。STK32A基因的表达变化受到多个lncRNA的调控[8]。

在预测肺腺癌总生存结果中miRNA生物标志物的应用研究中,发现STK32A基因与LUAD患者的OS状态相关。STK32A是13个与LUAD患者的OS状态相关的hub基因之一[9]。

最后,在Wnt/β-catenin信号通路介导的海马神经元早期转录变化研究中,STK32A基因被鉴定为Wnt/β-catenin信号通路的潜在靶基因。Wnt3a处理诱导了包括STK32A在内的170个差异表达基因,这些基因参与了多个生物学过程,包括神经祖细胞、前脑发育和干细胞分化[10]。

综上所述,Stk32a基因在多种生物学过程中发挥着重要作用,包括内耳发育、肿瘤的发生发展、创伤性脑损伤后的神经功能缺损等。Stk32a基因的表达和功能可能受到多种因素的调控,例如EMX2、miR-130a-5p、RUNX2、hsa_circ_0005927、缺氧、铁死亡、吸烟、创伤性脑损伤和Wnt/β-catenin信号通路等。Stk32a基因的研究有助于深入理解其在生物学功能和疾病发生发展中的作用机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Jia, Shihai, Ratzan, Evan M, Goodrich, Ellison J, Tarchini, Basile, Deans, Michael R. 2023. The dark kinase STK32A regulates hair cell planar polarity opposite of EMX2 in the developing mouse inner ear. In eLife, 12, . doi:10.7554/eLife.84910. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37144879/
2. Ma, Fang, Xie, Yangchun, Lei, Yiyu, Kuang, Zengshuyu, Liu, Xianling. 2020. The microRNA-130a-5p/RUNX2/STK32A network modulates tumor invasive and metastatic potential in non-small cell lung cancer. In BMC cancer, 20, 580. doi:10.1186/s12885-020-07056-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32571328/
3. Southekal, Siddesh, Mishra, Nitish Kumar, Guda, Chittibabu. 2021. Pan-Cancer Analysis of Human Kinome Gene Expression and Promoter DNA Methylation Identifies Dark Kinase Biomarkers in Multiple Cancers. In Cancers, 13, . doi:10.3390/cancers13061189. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33801837/
4. Wen, Ziang, Pei, Bei, Dai, Longfei, Zhang, Chengxin, Ge, Shenglin. 2023. Risk factors analysis and survival prediction model establishment of patients with lung adenocarcinoma based on different pyroptosis-related gene subtypes. In European journal of medical research, 28, 601. doi:10.1186/s40001-023-01581-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38111060/
5. Shao, Yongfu, Yu, Xuan, Hu, Meng, Ye, Guoliang, Guo, Junming. 2024. Acting mechanism and clinical significance of hsa_circ_0005927 in the invasion and metastasis of gastric cancer. In Journal of Cancer, 15, 4081-4094. doi:10.7150/jca.96749. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38947400/
6. Liu, Chang, Ruan, Yan-Qin, Qu, Lai-Hao, Li, Hao-Fei, Li, Ding-Biao. 2022. Prognostic Modeling of Lung Adenocarcinoma Based on Hypoxia and Ferroptosis-Related Genes. In Journal of oncology, 2022, 1022580. doi:10.1155/2022/1022580. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36245988/
7. Gao, Xu, Zhang, Yan, Breitling, Lutz Philipp, Brenner, Hermann. . Tobacco smoking and methylation of genes related to lung cancer development. In Oncotarget, 7, 59017-59028. doi:10.18632/oncotarget.10007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27323854/
8. Li, Juan, Pan, Yuan-Tao, Chen, Jun-Jie, Huang, Xue-Yan, Liao, Shi-Xia. 2021. Discoveries of the specific expression of lncRNAs and mRNAs in hippocampus of rats after traumatic brain injury. In Ibrain, 7, 95-107. doi:10.1002/j.2769-2795.2021.tb00071.x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37786908/
9. Li, Tingting, Liu, Huanqing, Dong, Chunsheng, Lyu, Jun. 2022. Application of miRNA Biomarkers in Predicting Overall Survival Outcomes for Lung Adenocarcinoma. In BioMed research international, 2022, 5249576. doi:10.1155/2022/5249576. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36147635/
10. Pérez-Palma, Eduardo, Andrade, Víctor, Caracci, Mario O, Ugarte, Giorgia D, De Ferrari, Giancarlo V. 2016. Early Transcriptional Changes Induced by Wnt/β-Catenin Signaling in Hippocampal Neurons. In Neural plasticity, 2016, 4672841. doi:10.1155/2016/4672841. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28116168/