Or12e10-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Or12e10-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-07840

品系全称

C57BL/6JCya-Or12e10em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-258317-Or12e10-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Or12e10-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-07840) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
olfactory receptor family 12 subfamily E member 10
基因别称
MOR264-19,Olfr1145
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_146320 | Ensembl: ENSMUST00000090707
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1
敲除长度
~1.0 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Or12e10是一种嗅觉受体基因,属于嗅觉受体家族的成员。嗅觉受体基因家族是最大的基因家族之一,负责编码嗅觉受体蛋白,这些蛋白位于嗅觉上皮细胞上,能够识别和响应不同的气味分子。Or12e10基因在嗅觉信号传导中发挥重要作用,通过识别特定的气味分子来触发嗅觉反应。

Or12e10基因的表达受到多种因素的调控,包括基因启动子区域的cis-acting regulatory elements、转录因子和表观遗传修饰等。例如,PlantCARE数据库中收集了大量的植物cis-acting regulatory elements,这些元素可以影响植物基因的表达和功能[5]。此外,基因的表观遗传修饰,如DNA甲基化和组蛋白修饰,也可以影响基因的表达和功能。例如,Mettl14是一种重要的RNA N6-甲基腺苷(m6A)甲基转移酶,通过m6A修饰影响RNA的稳定性和功能,进而影响基因表达和生物学过程[1,2,3,4,5,6,7]。

Or12e10基因在嗅觉信号传导中的作用可以通过基因敲除实验来研究。基因敲除是一种常用的基因功能研究方法,通过敲除特定基因来观察其对生物体的影响。例如,Mettl14基因的敲除可以导致RNA的m6A修饰减少,进而影响RNA的稳定性和功能,导致细胞功能和生物学过程发生改变[1,2,3,4,5,6,7]。然而,有些基因的敲除会导致生物体死亡,这种基因被称为必需基因。例如,酵母基因组中大约四分之一的基因是必需基因,它们的敲除会导致酵母死亡[3]。对于这些必需基因,可以通过寻找extragenic suppressors来绕过其必需性。例如,在裂殖酵母Schizosaccharomyces pombe中,近30%的必需基因可以通过extragenic suppressors来绕过其必需性[3]。

除了基因敲除,基因功能的研究还可以通过构建和分析基因回路来实现。基因回路是由基因和蛋白质构成的分子网络,可以影响细胞的生物学过程。例如,Mettl14基因可以与H3K27me3结合,招募KDM6B诱导H3K27me3的去甲基化,从而影响基因表达和干细胞的多能性维持[6]。此外,Mettl14还可以通过下调lncRNA XIST的表达抑制结直肠癌的增殖和转移[7]。

综上所述,Or12e10是一种嗅觉受体基因,在嗅觉信号传导中发挥重要作用。Or12e10基因的表达受到多种因素的调控,包括基因启动子区域的cis-acting regulatory elements、转录因子和表观遗传修饰等。Or12e10基因的功能可以通过基因敲除实验和基因回路的研究来深入理解。此外,Or12e10基因的研究有助于深入理解嗅觉信号传导的生物学机制,为嗅觉相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Holland, Peter W H, Marlétaz, Ferdinand, Maeso, Ignacio, Dunwell, Thomas L, Paps, Jordi. . New genes from old: asymmetric divergence of gene duplicates and the evolution of development. In Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 372, . doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27994121/
2. Hasty, Jeff, McMillen, David, Collins, J J. . Engineered gene circuits. In Nature, 420, 224-30. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12432407/
3. Du, Li-Lin. 2020. Resurrection from lethal knockouts: Bypass of gene essentiality. In Biochemical and biophysical research communications, 528, 405-412. doi:10.1016/j.bbrc.2020.05.207. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32507598/
4. Davidson, Eric, Levin, Michael. 2005. Gene regulatory networks. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102, 4935. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15809445/
5. Lescot, Magali, Déhais, Patrice, Thijs, Gert, Rouzé, Pierre, Rombauts, Stephane. . PlantCARE, a database of plant cis-acting regulatory elements and a portal to tools for in silico analysis of promoter sequences. In Nucleic acids research, 30, 325-7. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11752327/
6. Mateles, R I. . Gene fragments. In Bio/technology (Nature Publishing Company), 10, 456. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1368495/
7. Hammond-Kosack, K E, Jones, J D. . Resistance gene-dependent plant defense responses. In The Plant cell, 8, 1773-91. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8914325/