Ropn1l-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Ropn1l-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-07681

品系全称

C57BL/6JCya-Ropn1lem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-252967-Ropn1l-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ropn1l-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-07681) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
ropporin 1-like
基因别称
ASP,Akapasp
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_145852.2 | Ensembl: ENSMUST00000110408
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~3
敲除长度
~2242 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2182357Mice homozygous for a gene trap allele exhibit reduced respiratory motile cilia motility.
Ropn1l,也称为rhophilin-associated tail protein 1-like,是一种在多种生物学过程中发挥重要作用的基因。Ropn1l编码的蛋白质与细胞骨架组织、细胞信号传导和细胞粘附等功能密切相关。在男性生殖系统中,Ropn1l的表达与精子发生和分化有关,其表达水平的变化可能影响精子的成熟和功能。此外,Ropn1l还与肥胖和乳腺癌的发生发展相关,其基因多态性与这些疾病的易感性有关。

在男性生殖系统中,Ropn1l的表达与精子发生和分化密切相关。研究表明,在非梗阻性无精症(NOA)和梗阻性无精症(OA)等男性不育疾病中,Ropn1l的表达水平发生改变[1,6]。Ropn1l的表达水平与精子发生的关键基因和信号通路相关,如Dmrt1、Wnt2、PLC、Cyp19a和ZP3等,这些基因的异常表达可能导致精子发生障碍,进而引起男性不育[4]。此外,Ropn1l的表达水平还与精子的运动和成熟相关,如PGK2、RNASE10、ODF1等基因,这些基因的异常表达可能导致精子的运动和成熟障碍,进而引起男性不育[5]。

Ropn1l的表达水平还与肥胖和乳腺癌的发生发展相关。研究表明,Ropn1l的基因多态性与肥胖的易感性相关[2]。此外,Ropn1l的表达水平与乳腺癌的发生发展相关,其基因多态性与乳腺癌的易感性相关[7]。Ropn1l的表达水平与乳腺癌的转移相关,其基因多态性与乳腺癌的转移相关[3]。

Ropn1l的表达水平还与黑色素瘤的发生发展相关。研究表明,Ropn1l的表达水平与黑色素瘤的发生发展相关,其基因多态性与黑色素瘤的易感性相关[8]。Ropn1l的表达水平与黑色素瘤的转移相关,其基因多态性与黑色素瘤的转移相关[3]。

综上所述,Ropn1l是一种在多种生物学过程中发挥重要作用的基因,其表达水平的变化可能影响精子的成熟和功能,以及肥胖、乳腺癌和黑色素瘤的发生发展。Ropn1l的研究有助于深入理解其生物学功能和疾病发生机制,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Omolaoye, Temidayo S, Omolaoye, Victor A, Kandasamy, Richard K, Hachim, Mahmood Yaseen, Du Plessis, Stefan S. 2022. Omics and Male Infertility: Highlighting the Application of Transcriptomic Data. In Life (Basel, Switzerland), 12, . doi:10.3390/life12020280. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35207567/
2. Wang, Ke-Sheng, Liu, Xuefeng, Zheng, Shimin, Pan, Yue, Callahan, Katie. 2012. A novel locus for body mass index on 5p15.2: a meta-analysis of two genome-wide association studies. In Gene, 500, 80-4. doi:10.1016/j.gene.2012.03.046. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22446040/
3. Tian, Feng, Zhao, Jinlong, Fan, Xinlei, Kang, Zhenxing. . Weighted gene co-expression network analysis in identification of metastasis-related genes of lung squamous cell carcinoma based on the Cancer Genome Atlas database. In Journal of thoracic disease, 9, 42-53. doi:10.21037/jtd.2017.01.04. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28203405/
4. Wang, Long, Guan, Tianyu, Gu, Jieyi, Wang, Hui, Li, Jiale. 2023. Comparative transcriptome analysis of gonads in male and female Pseudobagrus ussuriensis (Bagridae, Siluriformes). In Comparative biochemistry and physiology. Part D, Genomics & proteomics, 47, 101105. doi:10.1016/j.cbd.2023.101105. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37354751/
5. Sahoo, Bijayalaxmi, Gupta, Mukesh Kumar. 2023. Effect of arginine-induced motility and capacitation on RNA population in goat spermatozoa. In Veterinary research communications, 47, 1427-1444. doi:10.1007/s11259-023-10092-3. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37162640/
6. Omolaoye, Temidayo S, Hachim, Mahmood Yaseen, du Plessis, Stefan S. 2022. Using publicly available transcriptomic data to identify mechanistic and diagnostic biomarkers in azoospermia and overall male infertility. In Scientific reports, 12, 2584. doi:10.1038/s41598-022-06476-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35173218/
7. Sehrawat, Badan, Sridharan, Malinee, Ghosh, Sunita, Greiner, Russell, Damaraju, Sambasivarao. 2011. Potential novel candidate polymorphisms identified in genome-wide association study for breast cancer susceptibility. In Human genetics, 130, 529-37. doi:10.1007/s00439-011-0973-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21424380/
8. Mazzio, Elizabeth A, Soliman, Karam F A. . Whole-transcriptomic Profile of SK-MEL-3 Melanoma Cells Treated with the Histone Deacetylase Inhibitor: Trichostatin A. In Cancer genomics & proteomics, 15, 349-364. doi:10.21873/cgp.20094. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30194076/