Ifnlr1-KO 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Ifnlr1-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-07394

品系全称

C57BL/6JCya-Ifnlr1em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-242700-Ifnlr1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Ifnlr1-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-07394) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
KO小鼠库模型
JAK-STAT信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
interferon lambda receptor 1
基因别称
CRF2-12,Il28ra
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_174851 | Ensembl: ENSMUST00000074408
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~0.9 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2429859Homozygous null mice are viable and normal with respect to viral infection, however antiviral response evoked by TLRs are significantly reduced.
IFNLR1,也称为干扰素λ受体1,是一种II型细胞因子受体,它与称为III型干扰素(IFN-λs)的细胞因子结合,包括IL-28A、IL-29B和IL-29。IFN-λs通过JAK-STAT信号通路发挥作用,具有抗病毒效果,能够防止和治疗感染。IFN-λs的免疫功能在病毒入侵中已得到描述,但IFNLR1在其中的分子机制尚不清楚。研究表明,IFNLR1基因的表达在不同组织之间存在差异,例如,在Dapulian猪的肝脏、大肠、小肠、肾脏和肺组织中,IFNLR1基因的表达显著高于Landrace猪[1]。此外,IFNLR1的过表达可以抑制猪肺泡巨噬细胞(PAMs)的增殖,并上调抗病毒和IFN刺激基因的表达。IFNLR1的过表达还可以抑制PAMs的增殖和上调p-STAT1的表达。相反,IFNLR1表达的敲低会促进PAMs的增殖。IFNLR1过表达细胞中G0/G1期比例增加,而IFNLR1低表达细胞中观察到相反的变化。在抑制JAK/STAT信号通路后,IFNLR1过表达细胞中的G2/M期比例显著增加。这些结果表明,IFNLR1的过表达通过激活JAK/STAT通路,从而抑制了感染PRRSV的PAMs的增殖。IFNLR1基因的表达在感染PRRSV的PAMs中起着重要的调节作用,表明它可能是开发新的PRRSV治疗策略的潜在分子靶点[1]。

IFNLR1基因的变异与乳腺癌的易感性有关。研究显示,IFNLR1基因的AA基因型和A等位基因与乳腺癌的较低风险相关。此外,年龄、吸烟习惯和体重指数也与乳腺癌的发生风险相关。研究还发现,IFNLR1基因的AA基因型与孕激素受体相关。这些发现表明,IFNLR1基因的变异可能影响乳腺癌的发生和发展,为乳腺癌的预防和治疗提供了新的思路[2]。

IFNLR1基因的遗传多态性与丙型肝炎病毒(HCV)感染和慢性HCV患者的生化特征相关。研究发现,IFNLR1基因的rs7532146位点的CT和TT基因型在HCV患者中的频率高于正常对照组。此外,IFNLR1基因的某些单倍型与HCV感染风险相关。研究还发现,IFNLR1基因的某些基因型与HCV患者的ALT水平和病毒载量相关。这些结果表明,IFNLR1基因的遗传多态性可能影响HCV感染和慢性HCV患者的生化特征,为HCV的治疗提供了新的思路[3]。

STAT3通过抑制过度的干扰素信号来调节抗病毒免疫。研究发现,STAT3在感染早期被磷酸化,抑制了IFNs的过度产生,从而抑制了病毒复制。此外,STAT3的磷酸化还通过抑制IFNAR1和IFNLR1的表达来保护动物免受肺损伤。这些结果表明,STAT3的激活对于建立有效的抗病毒免疫至关重要,因为它可以抑制病毒感染引起的过度的IFN信号[4]。

NSD1的失活会导致DNA低甲基化和肿瘤免疫逃逸。研究发现,NSD1的失活会导致DNA低甲基化,并沉默先天免疫基因,包括IFNLR1。此外,抑制EZH2可以恢复免疫浸润并抑制Nsd1突变肿瘤的生长。这些结果表明,NSD1的失活会导致DNA低甲基化和肿瘤免疫逃逸,为肿瘤的治疗提供了新的思路[5]。

IFN-λ在TLR7诱导的狼疮中促进免疫失调和组织炎症。研究发现,IFN-λ在狼疮模型中增加,并且IFN-λ受体(Ifnlr1)缺陷可以显著减少免疫细胞活化和相关器官损伤。此外,IFN-λ激活角质形成细胞和系膜细胞产生趋化因子,诱导免疫细胞募集和促进组织炎症。这些数据为SLE的免疫生物学提供了见解,并将III型IFNs确定为该疾病组织特异性病理的重要因素[6]。

IFNLR1亚型的表达影响干扰素λ信号通路。研究发现,IFNLR1亚型1具有最高的转录表达,编码全长功能性形式,支持经典的IFNL信号通路。IFNLR1亚型2和3具有较低的相对表达,并编码信号缺陷蛋白。研究还发现,IFNLR1亚型1的过表达显著增加了IFNL3依赖性抗病毒和促炎症基因的表达。IFNLR1亚型2的过表达导致抗病毒基因的部分诱导,但IFNLR1亚型3的过表达对HBV复制的影响最小。这些结果表明,IFNLR1亚型的表达对干扰素λ信号通路具有不同的影响,为IFNLR1信号通路的调控提供了新的见解[7]。

IFNLR1突变导致听觉功能障碍。研究发现,IFNLR1突变导致听觉功能障碍,并通过转录组分析揭示了IFNLR1突变导致的基因表达变化。研究还发现,IFNLR1突变导致免疫相关通路的富集,为IFNLR1相关听力丧失的发病机制提供了新的线索[8]。

IFNLR1与吸烟和高血压的因果关系相关。研究发现,IFNLR1与吸烟和高血压的因果关系相关,并可能成为治疗高血压的潜在药物靶点。这些发现为高血压的预防和治疗提供了新的思路[9]。

IFNLR1亚型对IFNL诱导的基因表达和HBV复制具有不同的影响。研究发现,IFNLR1亚型1的过表达显著增加了IFNL诱导的抗病毒基因和促炎症基因的表达,并抑制了HBV复制。IFNLR1亚型2和3的过表达对HBV复制的影响最小。这些结果表明,IFNLR1亚型的表达对IFNL诱导的基因表达和HBV复制具有不同的影响,为IFNLR1信号通路的调控提供了新的见解[10]。

综上所述,IFNLR1基因在多种疾病中发挥重要作用,包括PRRSV感染、乳腺癌、HCV感染、狼疮、高血压和HBV感染。IFNLR1基因的表达和功能受到多种因素的影响,包括遗传多态性、亚型表达和组织特异性。IFNLR1基因的研究有助于深入理解其生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Qin, Ming, Chen, Wei, Li, Zhixin, Zhao, Jing, Zeng, Yongqing. . Role of IFNLR1 gene in PRRSV infection of PAM cells. In Journal of veterinary science, 22, e39. doi:10.4142/jvs.2021.22.e39. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34056880/
2. Hausmann, Leili Daiane, de Almeida, Bibiana Sgorla, de Souza, Ilíada Rainha, de Toledo E Silva, Guilherme, Muniz, Yara Costa Netto. 2021. Association of TNFRSF1A and IFNLR1 Gene Polymorphisms with the Risk of Developing Breast Cancer and Clinical Pathologic Features. In Biochemical genetics, 59, 1233-1246. doi:10.1007/s10528-021-10060-z. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33751344/
3. Zhang, A-Mei, Wang, Yiqian, Xia, Xueshan, Song, Yuzhu. 2019. Genetic Polymorphisms of the IFNLR1 Gene Correlate with HCV Infection and Biochemical Features of Chronic HCV Patients in Yunnan, China. In Immunological investigations, 49, 453-461. doi:10.1080/08820139.2019.1642914. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31366248/
4. Liu, Shasha, Liu, Siya, Yu, Ziding, Wang, Song, Chen, Ji-Long. 2023. STAT3 regulates antiviral immunity by suppressing excessive interferon signaling. In Cell reports, 42, 112806. doi:10.1016/j.celrep.2023.112806. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37440406/
5. Li, Yinglu, Goldberg, Elizabeth M, Chen, Xiao, Mendelsohn, Cathy Lee, Lu, Chao. 2022. Histone methylation antagonism drives tumor immune evasion in squamous cell carcinomas. In Molecular cell, 82, 3901-3918.e7. doi:10.1016/j.molcel.2022.09.007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36206767/
6. Goel, Rishi R, Wang, Xinghao, O'Neil, Liam J, Carmona-Rivera, Carmelo, Kaplan, Mariana J. 2020. Interferon lambda promotes immune dysregulation and tissue inflammation in TLR7-induced lupus. In Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 117, 5409-5419. doi:10.1073/pnas.1916897117. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32094169/
7. Evans, John Grayson, Novotny, Laura A, Meissner, Eric G. 2023. Influence of Canonical and Non-Canonical IFNLR1 Isoform Expression on Interferon Lambda Signaling. In Viruses, 15, . doi:10.3390/v15030632. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36992341/
8. Wang, Wei-Qian, Qiu, Shi-Wei, Huang, Sha-Sha, Gao, Xue, Dai, Pu. 2021. Transcriptome analysis of the early stage ifnlr1-mutant zebrafish indicates the immune response to auditory dysfunction. In Gene expression patterns : GEP, 43, 119229. doi:10.1016/j.gep.2021.119229. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34968768/
9. Shi, Jikang, Liang, Zhuoshuai, Liu, Zhantong, Cheng, Yi, Zhang, Ming. 2024. Identification of Novel Proteins Mediating Causal Association Between Smoking and Essential Hypertension: A Mendelian Randomization Study. In Journal of the American Heart Association, 13, e036202. doi:10.1161/JAHA.124.036202. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39604029/
10. Novotny, Laura A, Evans, J Grayson, Guo, Haitao, Kappler, Christiana S, Meissner, Eric G. 2023. Interferon lambda receptor-1 isoforms differentially influence gene expression and HBV replication in stem cell-derived hepatocytes. In Antiviral research, 221, 105779. doi:10.1016/j.antiviral.2023.105779. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38070830/