Krt39-KO 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Krt39-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-06928

品系全称

C57BL/6JCya-Krt39em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-237934-Krt39-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Krt39-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-06928) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
keratin 39
基因别称
4732494G06Rik,Ka35
染色体号
Chr 11 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_213730.3 | Ensembl: ENSMUST00000076948
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1~7
敲除长度
~6630 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Krt39,即角蛋白39,属于角蛋白基因家族中的一员。角蛋白是一类中间纤维蛋白,广泛存在于上皮细胞中,对维持细胞结构、调节细胞功能和细胞信号传导等过程至关重要。角蛋白基因家族分为两个亚型:I型和II型,它们通常以异源二聚体的形式存在,共同组成中间纤维。Krt39属于II型角蛋白,与Krt9等基因一起构成了一个特定的角蛋白异源二聚体。在生物信息学分析中,Krt39蛋白被预测定位于细胞核、细胞骨架和细胞质中,并具有不稳定性系数高于40,说明其蛋白结构容易发生变性。

在藏羚羊中,Krt39基因在毛发周期中表现出高度的表达活性,尤其是在毛发从休止期到生长期以及从退行期到休止期的过渡阶段。研究发现,Krt39基因在藏羚羊毛囊发育的特定模块中起到关键作用,与细胞周期、黑素生成、毛囊发育和角化细胞增殖等过程相关。这些发现为研究角蛋白家族在藏羚羊中的进化关系和分子机制提供了理论支持[1]。

在邓川牛中,Krt39基因在雌性激素信号通路中显著富集,表明其可能参与调节牛的生殖和生长发育过程。研究发现,Krt39基因在邓川牛中的表达与牛奶产量和组成相关,提示Krt39基因可能对牛的乳制品生产具有潜在的影响[2]。

在胃癌研究中,Krt39基因在HER2阳性胃癌患者中发生扩增,提示其在HER2阳性胃癌的发生和发展中发挥重要作用。Krt39基因的扩增可能与细胞周期调控相关基因CDK12和RARA的扩增有关,进一步揭示了HER2阳性胃癌的基因组景观差异[3]。

在内蒙古绒山羊中,Krt39基因与不同毛发类型相关,其表达水平与毛发长度呈正相关。研究表明,Krt39基因可能通过影响细胞骨架和细胞信号传导等途径,调节绒山羊的毛发生长[4]。

在江南绒山羊的次级毛囊发育和周期中,Krt39基因在毛囊发育的各个阶段均有表达,并与细胞骨架和信号传导途径相关。Krt39基因的表达与毛囊发育和周期调控相关基因的表达呈正相关,提示其在毛囊发育和周期调控中发挥重要作用[5]。

在藏羊绒细度研究中,Krt39基因在绒细型皮肤组织中高表达,提示其可能参与调节绒羊的绒细度。Krt39基因的表达与Wnt信号通路和蛋白质加工等途径相关,表明其在绒羊绒细度调控中可能通过影响这些途径发挥作用[6]。

综上所述,Krt39基因在多种生物过程中发挥重要作用,包括毛发周期、生殖和生长发育、胃癌和绒羊绒细度等。Krt39基因的表达和功能调控可能与细胞骨架、细胞信号传导和细胞周期等途径相关。深入研究Krt39基因的功能和调控机制,有助于揭示其在不同生物过程中的作用,并为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Bao, Qi, Zhang, Xiaolan, Bao, Pengjia, Chu, Min, Yan, Ping. 2022. Genome-wide identification, characterization, and expression analysis of keratin genes (KRTs) family in yak (Bos grunniens). In Gene, 818, 146247. doi:10.1016/j.gene.2022.146247. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35085710/
2. Jin, Liangliang, Qu, Kaixing, Hanif, Quratulain, Lei, Chuzhao, Huang, Bizhi. 2022. Whole-Genome Sequencing of Endangered Dengchuan Cattle Reveals Its Genomic Diversity and Selection Signatures. In Frontiers in genetics, 13, 833475. doi:10.3389/fgene.2022.833475. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35422847/
3. Zhou, Chenfei, Feng, Xiaojing, Yuan, Fei, Zhu, Zhenggang, Zhang, Jun. 2018. Difference of molecular alterations in HER2-positive and HER2-negative gastric cancers by whole-genome sequencing analysis. In Cancer management and research, 10, 3945-3954. doi:10.2147/CMAR.S172710. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30310315/
4. Gong, Gao, Fan, Yixing, Li, Wenze, Lv, Qi, Su, Rui. 2022. Identification of the Key Genes Associated with Different Hair Types in the Inner Mongolia Cashmere Goat. In Animals : an open access journal from MDPI, 12, . doi:10.3390/ani12111456. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35681921/
5. Wu, Cuiling, Qin, Chongkai, Fu, Xuefeng, Huang, Xixia, Tian, Kechuan. 2022. Integrated analysis of lncRNAs and mRNAs by RNA-Seq in secondary hair follicle development and cycling (anagen, catagen and telogen) of Jiangnan cashmere goat (Capra hircus). In BMC veterinary research, 18, 167. doi:10.1186/s12917-022-03253-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35524260/
6. Fu, Xuefeng, Zhao, Bingru, Tian, Kechuan, Gun, Shuangbao, Yang, Bohui. 2020. Integrated analysis of lncRNA and mRNA reveals novel insights into cashmere fineness in Tibetan cashmere goats. In PeerJ, 8, e10217. doi:10.7717/peerj.10217. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33240606/