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Qrfp-KO 基因敲除小鼠

Qrfp-KO 基因敲除小鼠

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复苏/繁育服务
产品名称

Qrfp-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-06122

品系全称

C57BL/6JCya-Qrfpem1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-227717-Qrfp-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明： Qrfp-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-06122) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
KO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
pyroglutamylated RFamide peptide
基因别称
P518
染色体号
Chr 2 (Mouse)
NCBI ID
转录本 ID
NCBI: NM_183424.4 | Ensembl: ENSMUST00000057407
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2
敲除长度
~370 bp
下载方案
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成，建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献，以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:3630329Mice homozygous for a knock-out allele exhibit decreased body weight and fat mass, hypophagia, decreased serum leptin level, hypoactivity, increased anxiety-like behavior, and decreased wakefulness in the early hours of the dark period.
更多信息
Qrfp（pyroglutamylated RF-amide peptide）是一种重要的神经肽，在哺乳动物中，其基因在多种组织中表达，包括大脑、脂肪组织和内分泌腺体。Qrfp的生物学功能多样，包括调节食物摄入、能量代谢、脂肪生成和脂肪分解。在肥胖小鼠模型中，脂肪组织中Qrfp的表达水平下降，提示Qrfp可能在肥胖的发生发展中发挥重要作用[1]。

Qrfp通过与特定的G蛋白偶联受体GPR103结合来发挥作用。Qrfp及其受体在脊椎动物中高度保守，从无颌类到哺乳动物，都有Qrfp及其受体的存在。在无颌类脊椎动物中，Qrfp受体基因存在多个拷贝，而在哺乳动物中，只有一个Qrfp受体基因。这表明Qrfp系统在脊椎动物进化过程中获得了复杂的结构，并在某些谱系中保留了这种复杂性[4]。

在哺乳动物的大脑中，Qrfp几乎仅在丘脑下部的核团中表达。Qrfp及其受体在丘脑下部的核团中广泛表达，这些核团与食物摄入、能量代谢和生殖功能密切相关。研究表明，Qrfp可以调节食物摄入，特别是在高脂肪饮食的摄入方面。在雌性大鼠中，中央注射Qrfp可以增加对高脂肪食物的摄入量，这表明Qrfp可能在调节能量密集食物的摄入方面发挥作用[3]。此外，Qrfp还可以通过刺激下丘脑-垂体-性腺轴来调节生殖功能[3]。

Qrfp的表达和功能受到多种因素的调控。例如，代谢内毒素血症（ME）可以下调Qrfp的表达。在ME小鼠模型中，巨噬细胞中Qrfp的表达水平下降，而低剂量的脂多糖（LPS）可以进一步下调Qrfp的表达。LPS通过诱导巨噬细胞释放干扰素β（IFN-β）来下调Qrfp的表达，而IFN-β可以抑制巨噬细胞和脂肪细胞中Qrfp的表达[1]。此外，Qrfp的表达还受到雌激素水平的调控。在雌性大鼠中，Qrfp的表达水平在动情前期增加，这表明雌激素可能通过上调Qrfp的表达来调节食物摄入和生殖功能[3]。

除了在哺乳动物中的研究，Qrfp及其受体的研究也在其他脊椎动物中进行。例如，在鲈鱼中，Qrfp可以抑制食欲并调节生殖功能。在鱼体内，注射Qrfp可以抑制食欲，并抑制生殖相关基因的表达[5]。此外，在文昌鱼中，也发现了Qrfp及其受体，这表明Qrfp系统在脊椎动物进化过程中具有古老的起源[2]。

Qrfp及其受体在多种生物学过程中发挥重要作用，包括食物摄入、能量代谢、脂肪生成、脂肪分解和生殖功能。Qrfp的表达和功能受到多种因素的调控，包括代谢内毒素血症、雌激素水平和食欲。Qrfp的研究有助于深入理解食物摄入和能量代谢的调控机制，为肥胖和相关代谢性疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献：
1. Jossart, Christian, Mulumba, Mukandila, Granata, Riccarda, Servant, Marc J, Ong, Huy. 2013. Pyroglutamylated RF-amide peptide (QRFP) gene is regulated by metabolic endotoxemia. In Molecular endocrinology (Baltimore, Md.), 28, 65-79. doi:10.1210/me.2013-1027. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24284825/
2. Xu, Bo, Bergqvist, Christina A, Sundström, Görel, Leprince, Jérôme, Larhammar, Dan. 2014. Characterization of peptide QRFP (26RFa) and its receptor from amphioxus, Branchiostoma floridae. In General and comparative endocrinology, 210, 107-13. doi:10.1016/j.ygcen.2014.10.010. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25449662/
3. Primeaux, Stefany D. 2011. QRFP in female rats: effects on high fat food intake and hypothalamic gene expression across the estrous cycle. In Peptides, 32, 1270-5. doi:10.1016/j.peptides.2011.03.022. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21473894/
4. Larhammar, Dan, Xu, Bo, Bergqvist, Christina A. 2014. Unexpected multiplicity of QRFP receptors in early vertebrate evolution. In Frontiers in neuroscience, 8, 337. doi:10.3389/fnins.2014.00337. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25386115/
5. Shu, Hu, Chen, Huapu, Liu, Yun, Yang, Yuqing, Zhang, Haifa. 2014. Molecular cloning, characterization and functional analysis of QRFP in orange-spotted grouper (Epinephelus coioides). In Comparative biochemistry and physiology. Part B, Biochemistry & molecular biology, 176, 34-41. doi:10.1016/j.cbpb.2014.07.005. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25102021/

资料下载

S-KO-06122_6J_227717_Qrfp_Exon 2_A_strategy.pdf
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