Vamp3-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Vamp3-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-05669

品系全称

C57BL/6JCya-Vamp3em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-22319-Vamp3-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Vamp3-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-05669) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
vesicle-associated membrane protein 3
基因别称
D130027G05Rik,VAMP-3,ceb
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_009498.4 | Ensembl: ENSMUST00000030797
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~4
敲除长度
~6249 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1321389Homozygotes for a targeted null mutation lack vesicle-associated membrane protein 3 but are apparently normal.
VAMP3,全名为vesicle-associated membrane protein 3(囊泡相关膜蛋白3),是一种属于SNARE(可溶性N-乙基马来酰亚胺敏感因子附着蛋白受体)家族的蛋白质,主要参与细胞内囊泡运输过程。SNARE蛋白是一类介导细胞内囊泡与靶膜融合的蛋白质,在细胞分泌、胞吞作用、细胞内囊泡运输等过程中发挥重要作用。VAMP3作为SNARE蛋白家族的一员,在多种生物学过程中扮演着关键角色。

VAMP3的生理功能与细胞内囊泡运输密切相关。研究表明,VAMP3在胰岛素和运动调节的GLUT4囊泡转运中发挥着重要作用。VAMP3基因敲除小鼠表现出正常的生长速度、体重增加以及空腹血糖和胰岛素水平。胰岛素刺激的葡萄糖摄取在分离的原代脂肪细胞中与野生型小鼠基本相同。同样,胰岛素、缺氧和运动刺激的葡萄糖摄取在分离的骨骼肌中也没有显著差异。此外,其他一般的膜转运事件,包括吞噬作用、胞饮作用和转铁蛋白受体再循环,在VAMP3基因敲除小鼠中也没有受到影响。这些数据表明,VAMP3的功能对于调节GLUT4转运或一般组成型膜回收并非必需[4]。

在炎症反应中,VAMP3也发挥着重要作用。研究发现,骨髓来源的巨噬细胞和腹腔巨噬细胞在VAMP3缺失小鼠中表现出TNF-α和IL-6释放的显著减少。此外,VAMP3缺失导致由CFA(完全弗氏佐剂)诱导的足爪水肿和踝关节肿胀程度降低。VAMP3缺失也减轻了CFA诱导的机械性痛觉超敏和热痛觉过敏。机制上,VAMP3缺失改善了巨噬细胞在足爪的浸润,并导致CFA注射足爪和血清中TNF-α和IL-6水平的降低。RT-qPCR分析显示,在CFA给药后第14天,注射足爪中多种炎症相关基因的表达下调,包括TNF-α、IL-6、IL-1β、CXCL11、TIMP-1、COX-2、CD68和CD54。这些发现突出了VAMP3在调节炎症反应中的新作用,并提示它作为新型VAMP抑制性治疗药物的潜在治疗靶点,可能应用于炎症性疾病的管理[1]。

在神经母细胞瘤中,VAMP3也表现出重要作用。研究发现,神经母细胞瘤细胞中miR-124水平升高,而VAMP3水平降低。升高miR-124和降低VAMP3刺激细胞增殖并抑制细胞凋亡,而升高VAMP3则产生相反的效果。全基因组mRNA表达分析确定了基因和通路的改变,这可能解释了神经母细胞瘤细胞表型。这些研究表明,miR-124和VAMP3可能是神经母细胞瘤的潜在新标记和治疗靶点[2]。

VAMP3在心脏疾病中也表现出重要作用。研究发现,PRKAR1A和SDCBP在AMI后发生HF的患者中上调。PRKAR1A在AMI后第2天在单核细胞/巨噬细胞中进一步上调,而SDCBP在AMI后第2天在嗜中性粒细胞中高度表达,在第3天在单核细胞/巨噬细胞中高度表达。细胞通讯分析显示,基于配体-受体(L-R)对相互作用,AMI急性阶段单核细胞/巨噬细胞和嗜中性粒细胞之间存在增加的自分泌/旁分泌交联网络。功能富集分析表明,PRKAR1A和SDCBP主要参与炎症、凋亡和血管生成。ROC曲线分析表明,PRKAR1A和SDCBP以及它们的组合在识别AMI后发生HF高风险的患者中具有良好的预测价值。这项研究确定了PRKAR1A和SDCBP可能是AMI后HF的早期诊断的新生物标志物,并揭示了它们在HF进展中的潜在调节机制[3]。

VAMP3在化疗耐药性中也发挥作用。研究发现,CEBPD和VAMP3在化疗耐药的组织样本和PTX耐药的TNBC细胞中上调。CEBPD下调增强了细胞对PTX的敏感性。然而,在细胞中进一步上调VAMP3恢复了PTX耐药性,这可能是由于自噬的激活,因为自噬拮抗剂氯喹增强了细胞对PTX的敏感性。CEBPD被发现在VAMP3启动子上结合以激活其转录。CEBPD/VAMP3轴也增加了TNBC细胞中PD-L1的表达。TNBC细胞来源的EVs增加了共培养的CD8+ T细胞的耗竭。这项研究提供了新的证据,表明CEBPD通过VAMP3介导的自噬激活在TNBC细胞中增强PTX耐药性。此外,CEBPD/VAMP3轴还增加了由癌细胞衍生的EVs传递的细胞外PD-L1水平,以抑制CD8+ T细胞介导的抗肿瘤免疫反应。这些重要的观察结果可能为TNBC的治疗提供新的见解,表明CEBPD和VAMP3是克服治疗耐药性的有希望的靶点[5]。

VAMP3在细胞凋亡中也发挥作用。研究发现,HCP5与UTP3小亚基过程组件相互作用,防止UTP3从TRIM29介导的泛素化中降解。UTP3随后招募c-Myc以激活VAMP3表达。激活的VAMP3抑制caspase依赖性细胞凋亡,最终导致化疗耐药性。因此,这项研究证明了HCP5/UTP3/c-Myc/VAMP3轴在抑制癌细胞凋亡中发挥着重要作用,HCP5可能是癌症治疗中一个新的化疗敏感性靶点[6]。

VAMP3在皮肤伤口愈合中也发挥作用。研究发现,ADSC-Exos激活HaCaT细胞中的自噬,这被高葡萄糖水平抑制,并增强了其细胞功能。此外,ADSC-Exos与自噬抑制剂bafilomycin A1的联合使用表明,自噬缺陷进一步损害了高葡萄糖条件下表皮细胞的功能,并部分削弱了ADSC-Exos的治疗效果。使用糖尿病伤口模型,我们发现ADSC-Exos通过增加表皮自噬和快速再上皮化来促进糖尿病小鼠的皮肤伤口愈合。最后,测序结果表明,自噬相关基因NAMPT、CD46、VAMP7、VAMP3和真核翻译起始因子2亚基α(EIF2S1)的表达增加可能有助于ADSC-Exo作用的潜在机制。这项研究阐明了ADCS-Exos在皮肤上皮细胞中调节自噬的分子机制,从而为ADSC-Exos治疗和修复皮肤上皮损伤提供了新的理论基础[7]。

VAMP3在细胞迁移和整合素介导的粘附中也发挥着重要作用。研究发现,siRNA诱导的VAMP3沉默抑制了超过60%的趋化性细胞迁移,而不影响细胞增殖。VAMP3沉默降低了细胞表面β1整合素的水平,但对总的细胞内β1整合素没有影响,这表明VAMP3对于β1整合素向质膜的转运是必需的。此外,VAMP3沉默减少了细胞对层粘连蛋白的粘附,但对纤维连接蛋白或胶原蛋白的粘附没有影响。这些数据表明,VAMP3依赖的整合素转运在细胞迁移和细胞对层粘连蛋白的粘附中起着至关重要的作用[8]。

综上所述,VAMP3是一种重要的囊泡相关膜蛋白,参与细胞内囊泡运输、炎症反应、神经母细胞瘤、心脏疾病、化疗耐药性、皮肤伤口愈合和细胞迁移等生物学过程。VAMP3的研究有助于深入理解细胞内囊泡运输的生物学功能和疾病发生机制,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Dai, Xiaolong, Li, Lianlian, Yan, Xinrong, Meng, Jianghui, Wang, Jiafu. 2023. Myeloid Vamp3 deletion attenuates CFA-induced inflammation and pain in mice via ameliorating macrophage infiltration and inflammatory cytokine production. In Frontiers in immunology, 14, 1239592. doi:10.3389/fimmu.2023.1239592. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37965323/
2. Zhang, Xiaoxiao, Yang, Chengyong, Meng, Zhen, Guo, Jingjing, Zeng, Yan. 2023. miR-124 and VAMP3 Act Antagonistically in Human Neuroblastoma. In International journal of molecular sciences, 24, . doi:10.3390/ijms241914877. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37834325/
3. Chen, Qixin, Su, Lina, Liu, Chuanfen, Yin, Qijin, Li, Sufang. 2022. PRKAR1A and SDCBP Serve as Potential Predictors of Heart Failure Following Acute Myocardial Infarction. In Frontiers in immunology, 13, 878876. doi:10.3389/fimmu.2022.878876. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35592331/
4. Yang, C, Mora, S, Ryder, J W, Allen, L A, Pessin, J E. . VAMP3 null mice display normal constitutive, insulin- and exercise-regulated vesicle trafficking. In Molecular and cellular biology, 21, 1573-80. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11238894/
5. Zhao, Yan, Yu, Yangyang, Li, Xiangmin, Guo, Ayao. 2024. CCAAT enhancer binding protein delta activates vesicle associated membrane protein 3 transcription to enhance chemoresistance and extracellular PD-L1 expression in triple-negative breast cancer. In Journal of experimental & clinical cancer research : CR, 43, 115. doi:10.1186/s13046-024-03041-8. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38627816/
6. Nan, Yabing, Luo, Qingyu, Wu, Xiaowei, Liu, Shi, Liu, Zhihua. 2022. HCP5 prevents ubiquitination-mediated UTP3 degradation to inhibit apoptosis by activating c-Myc transcriptional activity. In Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy, 31, 552-568. doi:10.1016/j.ymthe.2022.10.006. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36245126/
7. Ren, Haiyue, Su, Peng, Zhao, Feng, Ma, Jiajie, Wang, Zhe. 2024. Adipose mesenchymal stem cell-derived exosomes promote skin wound healing in diabetic mice by regulating epidermal autophagy. In Burns & trauma, 12, tkae001. doi:10.1093/burnst/tkae001. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38434722/
8. Luftman, Kevin, Hasan, Nazarul, Day, Paul, Hardee, Deborah, Hu, Chuan. 2009. Silencing of VAMP3 inhibits cell migration and integrin-mediated adhesion. In Biochemical and biophysical research communications, 380, 65-70. doi:10.1016/j.bbrc.2009.01.036. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19159614/