Aox2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Aox2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-04888

品系全称

C57BL/6JCya-Aox2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-213043-Aox2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Aox2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-04888) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
KO小鼠库模型
JAK-STAT信号通路

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
aldehyde oxidase 2
基因别称
Aoh3,Aox3l1
染色体号
Chr 1 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001008419.2 | Ensembl: ENSMUST00000114366
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3~8
敲除长度
~9613 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
基因Aox2,全称为Alternative Oxidase 2,是一种存在于植物和其他生物中的线粒体电子传递链中的替代性末端氧化酶。Aox2的主要功能是在细胞呼吸过程中,当电子传递链受阻或细胞处于逆境条件时,将电子从泛醌传递给氧气,产生水,从而维持细胞的能量代谢平衡。Aox2与传统的末端氧化酶(如细胞色素氧化酶)相比,具有较低的能效,因此被认为是能量消耗的途径,在植物对逆境胁迫的响应中发挥着重要作用。

在植物中,Aox基因家族通常包括两个亚家族:Aox1和Aox2。Aox1基因普遍存在于所有植物中,而Aox2基因主要在双子叶植物中被发现。Aox2基因的表达模式通常与发育阶段相关,或在细胞胁迫下被诱导。例如,在拟南芥(Arabidopsis thaliana)中,Aox2基因在种子萌发的早期阶段转录,并随着萌发的进行而表达水平降低[3]。此外,Aox2基因的结构在植物中存在多样性,与Aox1基因相比,Aox2基因通常具有更多的外显子[3]。

Aox2基因的表达调控机制复杂,涉及到多种顺式作用元件和转录因子的相互作用。例如,在酵母Pichia pastoris中,Aox2基因的表达受到正调控元件AOX2-UAS和负调控元件AOX2-URS1和AOX2-URS2的控制[4]。AOX2-UAS元件对于甲醇诱导的转录激活至关重要,而AOX2-URS1和AOX2-URS2则参与抑制转录[4]。

在植物中,Aox基因的表达也受到多种环境因素的影响,如氧气、铜和光照水平等。例如,在绿藻Chlamydomonas reinhardtii中,Aox2基因在缺氧或铜缺乏的条件下被上调,并在暗适应的非胁迫细胞中被诱导[2]。这些结果表明,Aox2基因的表达受到精细的调控,以适应不同的生理和胁迫条件。

Aox2基因的功能不仅限于线粒体电子传递链,还涉及到其他重要的生理过程。例如,在拟南芥中,Aox1a和Aox2基因被发现在叶绿体中替代质体末端氧化酶的功能,参与类胡萝卜素生物合成中的去饱和步骤[6]。这一发现表明,Aox基因具有跨细胞器的功能,并可能为植物的光合作用和生长发育提供重要的代谢灵活性。

在植物育种中,Aox基因被认为是开发耐逆性品种的有用标记。例如,在橄榄树(Olea europaea L.)中,Aox2基因的多态性与扦插生根能力相关,这表明Aox2基因可能对植物的繁殖和生长具有重要作用[1]。此外,在西瓜(Citrullus lanatus)中,Aox2基因的一个自然SNP变体与冷胁迫耐受性相关,这表明Aox2基因可能对植物的逆境胁迫响应具有重要作用[5]。

综上所述,Aox2基因是植物和真菌中一个重要的线粒体末端氧化酶,参与细胞的能量代谢和逆境胁迫响应。Aox2基因的表达受到复杂的调控,并与多种生物学过程相关。在植物育种和生物技术领域,Aox2基因的研究有助于开发耐逆性品种和改进植物的代谢工程。

参考文献:
1. Hedayati, Vahideh, Mousavi, Amir, Razavi, Khadijeh, Hosseini-Mazinani, Mehdi, Baldoni, Luciana. 2015. Polymorphisms in the AOX2 gene are associated with the rooting ability of olive cuttings. In Plant cell reports, 34, 1151-64. doi:10.1007/s00299-015-1774-0. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25749737/
2. Ostroukhova, Mariya, Zalutskaya, Zhanneta, Ermilova, Elena. 2016. New insights into AOX2 transcriptional regulation in Chlamydomonas reinhardtii. In European journal of protistology, 58, 1-8. doi:10.1016/j.ejop.2016.11.005. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28088729/
3. Saish, D, Nakazono, M, Lee, K H, Akita, S, Hirai, A. . The gene for alternative oxidase-2 (AOX2) from Arabidopsis thaliana consists of five exons unlike other AOX genes and is transcribed at an early stage during germination. In Genes & genetic systems, 76, 89-97. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11434463/
4. Ohi, H, Miura, M, Hiramatsu, R, Ohmura, T. . The positive and negative cis-acting elements for methanol regulation in the Pichia pastoris AOX2 gene. In Molecular & general genetics : MGG, 243, 489-99. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8208240/
5. Ding, Changqing, Chen, Cuiting, Su, Nan, Hu, Zhongyuan, Zhang, Mingfang. 2020. Identification and characterization of a natural SNP variant in ALTERNATIVE OXIDASE gene associated with cold stress tolerance in watermelon. In Plant science : an international journal of experimental plant biology, 304, 110735. doi:10.1016/j.plantsci.2020.110735. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33568287/
6. Fu, Aigen, Liu, Huiying, Yu, Fei, Luan, Sheng, Rodermel, Steve. 2012. Alternative oxidases (AOX1a and AOX2) can functionally substitute for plastid terminal oxidase in Arabidopsis chloroplasts. In The Plant cell, 24, 1579-95. doi:10.1105/tpc.112.096701. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22534126/