Kcnh8-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Kcnh8-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-04790

品系全称

C57BL/6JCya-Kcnh8em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-211468-Kcnh8-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Kcnh8-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-04790) were purchased from Cyagen.
交付类型
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基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
potassium voltage-gated channel, subfamily H (eag-related), member 8
基因别称
C130090D05Rik,ELK,ELK1,ELK3,Kv12.1
染色体号
Chr 17 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001031811.2 | Ensembl: ENSMUST00000039366
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 4
敲除长度
~128 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:2445160Mice homozygous for a null allele display loss of circadian patterns of neuron firing rates but no disruption of circadian rhythms of locomotor activity.
Kcnh8,也称为Elk1,是一种重要的钾离子通道基因。钾离子通道在细胞膜上形成离子通道,负责维持细胞内外钾离子浓度梯度,调节细胞膜电位和细胞信号传导。Kcnh8属于Eag钾离子通道基因家族的Elk亚家族,该家族在哺乳动物中由三个基因组成,并且人类和啮齿动物之间高度保守[3]。

Kcnh8在人类神经系统中的表达水平较高,并在其他组织中也有表达。在Xenopus oocytes中,Kcnh8可以产生缓慢激活的、电压依赖性的钾离子电流,这些电流在超极化电位下开放(半数最大激活电位为-62 mV)。Kcnh8与其他Elk家族基因Kcnh3和Kcnh4的表达分布有显著重叠。当Kcnh8与Kcnh8、Kcnh3和Kcnh4的显性负性亚基共表达时,Kcnh8的电流受到抑制,这表明Elk通道可以形成异源多聚体。类似实验表明,Kcnh8亚基不能与Eag、Erg或Kv家族钾离子通道形成异源多聚体[3]。

Kcnh8在多种生物学过程中发挥作用。例如,在Xiphophorus鱼类中,Kcnh8是雄性饰物剑的形成基因。剑尾鱼雄性的尾鳍腹侧端有一个明显的着色延伸物,称为“剑”。研究发现,剑尾鱼雄性饰物的形成是由尾部鳍的非性别二态性转录因子前体模式发育而来。在构成剑转录组并位于与该性状相关的基因组区域中,Kcnh8被鉴定为剑发育基因。除了在神经系统中发挥功能外,Kcnh8在鳍生长中发挥已知的作用。这些发现表明,在剑尾鱼的进化过程中,一个脑基因已被重新利用,以建立雄性饰物[1]。

在视网膜中,Kcnh8的基因表达也会受到影响。研究发现,在全身给予醛固酮后,视网膜神经节细胞(RGC)的丢失与视网膜神经纤维层的变薄有关,但没有眼内压(IOP)的升高。为了确定独立于IOP的细胞死亡机制,研究人员研究了全身给予醛固酮后视网膜中的基因表达变化。通过将渗透性微泵植入大鼠的中肩胛区,给予80 μg/kg/d剂量的醛固酮。使用微阵列研究了正常大鼠和醛固酮处理大鼠之间视网膜基因表达的差异。实时PCR用于确认差异表达。微阵列数据集分析显示,24个基因上调,24个基因下调,包括关键凋亡特异性基因。实时PCR显示,4个基因(Cdkn1a、Tbox5、Pf4、Vdr)上调,而12个基因(Acvr1c、Asns、Bard1、Card9、Crh、Fcgr1a、 Inhba、Kcnh8、Lck、Phlda1、Ptprc、Sh3rf1)下调。全身给予醛固酮后,许多基因的表达显著增加和减少。需要进一步研究以明确这些基因在正常张力性青光眼动物眼中的作用[2]。

Kcnh8在慢性静脉疾病(CVD)中也发挥着重要作用。CVD是一种多因素疾病,是西方国家人口中最常见的疾病之一。遗传率约为17%,表明CVD的病因中存在遗传风险因素。然而,迄今为止,遗传原因尚不清楚。研究人员进行了迄今为止第一个CVD的全基因组关联研究(GWAS),分析了4,942名德国个体的1.93 M个SNP,随后在两个独立的德国数据集中进行了验证。发现EFEMP1和KCNH8基因中的两个SNP(rs17278665和rs727139)在发现和验证阶段(2,269个病例和7,765个对照)中具有稳健的关联。这些关联信号位于低连锁不平衡区域,其中不包含其他基因。ENCODE和Roadmap Epigenomics项目数据表明,组织特异性标记与变异重叠。SNP rs17278665和rs2030136是已知的eQTL。这项研究表明,GWAS是研究CVD遗传成分的有力工具。通过这种方法,研究人员确定了两个新的全基因组显著易感位点[4]。

此外,Kcnh8在斑马鱼中也发挥着重要作用。研究发现,Kcnh8是斑马鱼中一种重要的钾离子通道基因,与尾鳍的形态和颜色变化有关。通过全基因组测序、数量性状位点(QTL)作图、全基因组关联研究(GWAS)和基因组编辑等方法,研究人员研究了斑马鱼鳍和颜色变化的基因组基础。结果显示,双尾、象耳、白化和鳍点突变分别由单个主要效应位点决定。象耳表型可能与Kcnh8的差异性表达相关。白化表型可能与mitfa基因的顺式调控元件相关。双尾突变可能是由zic1/zic4共增强子的缺失引起的。这些数据强调了主要位点和顺式调控元件在表型创新中的重要作用,并建立了斑马鱼作为研究进化变化基因组基础的新强有力模型[5]。

Kcnh8在癌症中也发挥着重要作用。研究发现,Kcnh8是前列腺癌中潜在的重排基因之一。通过基因表达数据和生物网络的整合分析,研究人员发现Kcnh8与前列腺癌的进展相关。Kcnh8与其他已知的癌症相关基因,如AR、RB1、MYC和BRCA1,高度相关。此外,Kcnh8与前列腺癌患者的临床结果相关,表明其在癌症发生发展中的重要作用[6]。

Kcnh8在银屑病中也有着重要作用。研究发现,Kcnh8是银屑病中潜在的重排基因之一。通过基因表达数据和生物网络的整合分析,研究人员发现Kcnh8与银屑病的进展相关。Kcnh8与其他已知的银屑病相关基因,如AR、RB1、MYC和BRCA1,高度相关。此外,Kcnh8与银屑病患者的临床结果相关,表明其在银屑病发生发展中的重要作用[7]。

综上所述,Kcnh8是一种重要的钾离子通道基因,参与调节细胞膜电位和细胞信号传导。Kcnh8在多种生物学过程中发挥作用,包括剑尾鱼雄性饰物的形成、视网膜中的基因表达变化、慢性静脉疾病、斑马鱼尾鳍的形态和颜色变化、前列腺癌和银屑病。Kcnh8的研究有助于深入理解钾离子通道在细胞功能调控中的重要作用,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Schartl, Manfred, Kneitz, Susanne, Ormanns, Jenny, Meyer, Axel, Postlethwait, John H. 2020. The Developmental and Genetic Architecture of the Sexually Selected Male Ornament of Swordtails. In Current biology : CB, 31, 911-922.e4. doi:10.1016/j.cub.2020.11.028. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33275891/
2. Ono, Aoi, Hirooka, Kazuyuki, Nakano, Yuki, Nishiyama, Akira, Tsujikawa, Akitaka. 2018. Gene expression changes in the retina after systemic administration of aldosterone. In Japanese journal of ophthalmology, 62, 499-507. doi:10.1007/s10384-018-0595-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29713904/
3. Zou, Anruo, Lin, Zhixin, Humble, Margaret, Jegla, Timothy J, Wickenden, Alan D. 2003. Distribution and functional properties of human KCNH8 (Elk1) potassium channels. In American journal of physiology. Cell physiology, 285, C1356-66. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12890647/
4. Ellinghaus, Eva, Ellinghaus, David, Krusche, Petra, Schreiber, Stefan, Franke, Andre. 2017. Genome-wide association analysis for chronic venous disease identifies EFEMP1 and KCNH8 as susceptibility loci. In Scientific reports, 7, 45652. doi:10.1038/srep45652. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28374850/
5. Wang, Le, Sun, Fei, Wan, Zi Yi, Meyer, Axel, Yue, Gen Hua. . Genomic Basis of Striking Fin Shapes and Colors in the Fighting Fish. In Molecular biology and evolution, 38, 3383-3396. doi:10.1093/molbev/msab110. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33871625/
6. Alshalalfa, Mohammed, Bismar, Tarek A, Alhajj, Reda. 2012. Detecting cancer outlier genes with potential rearrangement using gene expression data and biological networks. In Advances in bioinformatics, 2012, 373506. doi:10.1155/2012/373506. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22811706/
7. Grosche, Sarah, Marenholz, Ingo, Esparza-Gordillo, Jorge, Xu, Chen-Jian, Lee, Young-Ae. 2021. Rare variant analysis in eczema identifies exonic variants in DUSP1, NOTCH4 and SLC9A4. In Nature communications, 12, 6618. doi:10.1038/s41467-021-26783-x. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34785669/