Snu13-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Snu13-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-04548

品系全称

C57BL/6JCya-Snu13em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-20826-Snu13-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Snu13-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-04548) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
SNU13 homolog, small nuclear ribonucleoprotein (U4/U6.U5)
基因别称
FA-1,Fta1,Nhp2l1,Ssfa1
染色体号
Chr 15 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_011482.4 | Ensembl: ENSMUST00000080622
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 1~3
敲除长度
~5379 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Snu13,也称为NHP2L1,是一个在真核生物中编码蛋白质的基因。这个基因编码的蛋白质在核糖体RNA(rRNA)的加工和修饰中发挥着重要作用。Snu13蛋白是C/D小核RNA(snoRNA)的一种,snoRNA是一类非编码RNA,它们在细胞中负责指导rRNA的2'-O-甲基化(Nm)和rRNA的加工。Snu13蛋白是C/D snoRNA复合体中的一个核心组分,它与其他蛋白如NOP1、NOP56和NOP58相互作用,共同完成rRNA的修饰和加工过程。这种修饰和加工对于核糖体的组装和功能至关重要,因为它们确保了核糖体能够正确地执行蛋白质合成的功能。

在人类和其他生物体中,Snu13基因的表达和功能与多种生物学过程有关。例如,在生殖过程中,Snu13基因的表达水平会影响精子的质量。一项研究发现,在冷冻保存的人类精子中,Snu13基因的表达水平显著降低,这表明冷冻保存过程可能会对精子的基因表达和蛋白质水平产生不利影响[1]。此外,Snu13基因的表达还与乳腺癌的转移相关,研究表明Snu13基因的表达水平可以作为乳腺癌转移的预测生物标志物[2]。

在黑绿豆(Vigna mungo)的研究中,发现Snu13基因的表达水平与内含子保留事件的减少有关。这表明Snu13基因在转录后基因调控中发挥着重要作用,特别是在替代剪接(AS)这一过程中。替代剪接是基因表达调控的一个重要机制,它通过产生不同的mRNA剪接变体来增加转录组的复杂性,从而影响基因的功能和表达[4]。

在斑马鱼(Zebra fish)中,Snu13基因的敲除导致了胚胎的早期死亡,这表明Snu13基因对于胚胎的发育至关重要。斑马鱼是一种常用的模式生物,它具有与人类相似的基因组和发育过程,因此,斑马鱼中Snu13基因的功能研究对于理解人类Snu13基因的功能具有重要的参考价值[5]。

在急性缺血性卒中(AIS)的研究中,发现Snu13基因的表达水平与多种免疫细胞的浸润水平相关。这表明Snu13基因可能在免疫反应中发挥作用,特别是在AIS的病理过程中[3]。

在非洲锥虫(Trypanosoma brucei)的研究中,发现Snu13蛋白是C/D snoRNA复合体中的一个核心组分,它参与了rRNA的2'-O-甲基化和rRNA的加工过程。Snu13蛋白的沉默导致了rRNA的加工和修饰缺陷,这表明Snu13蛋白对于rRNA的功能至关重要[6]。

在研究Snu13基因的功能和表达时,研究人员通常使用各种分子生物学技术,如实时定量PCR(qPCR)、RNA测序和蛋白质印迹等。这些技术可以帮助研究人员检测Snu13基因的表达水平、剪接变体和蛋白质表达情况。此外,研究人员还可以使用基因敲除和基因过表达等技术来研究Snu13基因的功能和机制。

Snu13基因的研究对于理解rRNA的加工和修饰、基因表达调控和疾病发生机制具有重要意义。Snu13基因的功能和表达调控机制的研究可以为疾病的诊断和治疗提供新的思路和策略。例如,Snu13基因的表达水平可以作为某些疾病的诊断和预后指标,Snu13基因的敲除或过表达可以用于研究其在疾病发生和发展中的作用。此外,Snu13基因的研究还可以为开发新的药物和治疗策略提供理论依据。

参考文献:
1. Faraji, Samaneh, Rashki Ghaleno, Leila, Sharafi, Mohsen, Shahverdi, Abdolhossein, Fathi, Rouhollah. 2021. Gene Expression Alteration of Sperm-Associated Antigens in Human Cryopreserved Sperm. In Biopreservation and biobanking, 19, 503-510. doi:10.1089/bio.2020.0165. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34009011/
2. Tapak, Leili, Hamidi, Omid, Amini, Payam, Salimy, Siamak, Dinu, Irina. 2023. Identification of Prognostic Biomarkers for Breast Cancer Metastasis Using Penalized Additive Hazards Regression Model. In Cancer informatics, 22, 11769351231157942. doi:10.1177/11769351231157942. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36968522/
3. Zhang, Xianjing, Xu, Tengxiao, Wang, Chen, Yue, Maokui, Li, Hao. 2024. Revealing the potential role of hub metabolism-related genes and their correlation with immune cells in acute ischemic stroke. In IET systems biology, 18, 129-142. doi:10.1049/syb2.12095. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38850201/
4. Hazra, Anjan, Pal, Amita, Kundu, Anirban. 2023. Alternative splicing shapes the transcriptome complexity in blackgram [Vigna mungo (L.) Hepper]. In Functional & integrative genomics, 23, 144. doi:10.1007/s10142-023-01066-4. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37133618/
5. DeLaurier, April, Howe, Douglas G, Ruzicka, Leyla, Thyme, Summer B, Talbot, Jared C. 2021. ZebraShare: a new venue for rapid dissemination of zebrafish mutant data. In PeerJ, 9, e11007. doi:10.7717/peerj.11007. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33954026/
6. Barth, Sarit, Shalem, Boaz, Hury, Avraham, Unger, Ron, Michaeli, Shulamit. 2007. Elucidating the role of C/D snoRNA in rRNA processing and modification in Trypanosoma brucei. In Eukaryotic cell, 7, 86-101. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17981991/