Slc2a2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Slc2a2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-04369

品系全称

C57BL/6JCya-Slc2a2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-20526-Slc2a2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Slc2a2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-04369) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
solute carrier family 2 (facilitated glucose transporter), member 2
基因别称
Glut-2,Glut2
染色体号
Chr 3 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_031197 | Ensembl: ENSMUST00000029240
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~0.3 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:1095438Homozygous null mice are hyperglycemic with hypoinsulinemia and die within 2-3 weeks of life displaying increased plasma levels of glucagon, free fatty acids and beta-hydroxybutyrate, abnormal glucose tolerance, and altered postnatal development of pancreatic islets.
Slc2a2,也称为葡萄糖转运蛋白2(GLUT2),是编码葡萄糖转运蛋白的一种基因。GLUT2在多种细胞类型中表达,包括肝脏、肠道、肾脏和胰腺胰岛β细胞,以及中枢神经系统中的神经元、星形胶质细胞和脑室下神经胶质细胞。GLUT2在维持血糖稳态中起着关键作用,它是葡萄糖刺激的胰岛素分泌(GSIS)所必需的。在肝脏中,GLUT2的表达对于葡萄糖敏感基因的生理控制至关重要,其失活会导致葡萄糖刺激的胰岛素分泌受损,揭示了肝脏-β细胞轴的存在,该轴可能依赖于胆汁酸控制β细胞分泌能力。在神经系统中,GLUT2依赖的葡萄糖感应控制着进食、体温调节和胰腺胰岛细胞质量和功能,以及交感和副交感活动。GLUT2表达的缺失在人类中导致范科尼-比克尔综合征,这是一种以肝肿大和肾脏疾病为特征的疾病,胰岛素分泌缺陷在成年患者中很少见,但GLUT2突变导致暂时性新生儿糖尿病。全基因组关联研究报道,GLUT2变异增加了空腹高血糖、向2型糖尿病的过渡、高胆固醇血症和心血管疾病的风险。GLUT2中的错义突变会导致个体偏好含糖食物[4]。

一项研究发现,高果糖饮食可以迅速产生代谢综合征的所有关键特征。果糖的代谢特性使其可能对代谢疾病特别有害。过量的果糖摄入可能通过多种机制导致心脏代谢疾病,包括增加肝脏脂肪生成、胰岛素抵抗和炎症[1]。

另一项研究发现,SLC2A2基因的rs1499821多态性与汉族、壮族和巴魁瑶族人群的龋齿易感性相关。在汉族人群和三个族群组合中,rs1499821 T多态性与龋齿易感性显著相关。在汉族和组合人群中,rs1499821的CT+TT基因型与龋齿风险增加相关。此外,甜食摄入频率与龋齿之间也存在显著相关性,但rs1499821多态性与甜食摄入频率之间没有关联。因此,SLC2A2 rs1499821 T等位基因和甜食摄入频率可能被视为汉族人群龋齿易感性的危险因素[2]。

GLUT2的表达在β细胞中受到多种转录因子的调控,包括MafA、NeuroD1和HNF1β。这些转录因子通过协同作用激活SLC2a2基因的转录。研究发现,一个进化上保守的区域(ECR)位于Slc2a2转录起始位点下游约40 kbp处,该区域作为活性增强子在MIN6 β细胞系中发挥作用。此外,MafA、NeuroD1和HNF1β的协同结合和相互作用对于SLC2a2基因的转录激活至关重要[3]。

一项研究发现,糖皮质激素通过HNF1α和HNF1β抑制SLC2a2基因的表达。糖皮质激素是应激激素,通过糖皮质激素受体(GR)调节炎症和代谢。长期暴露于糖皮质激素会导致β细胞功能障碍和糖尿病,但SLC2a2基因在β细胞中的表达降低及其机制尚不清楚。研究发现,地塞米松(DEX),一种合成的糖皮质激素,选择性地降低了MIN6 β细胞系中Slc2a2 mRNA的表达。通过生物信息学和报告基因分析,研究者确定了两个β细胞增强子,一个位于第一个内含子内,另一个位于转录起始位点下游约40 kbp处。后者增强子(命名为E3c)负责DEX诱导的Slc2a2基因的抑制。在先前发现的β细胞富集转录因子中,HNF1α和HNF1β的转录活性被DEX和GR抑制,这有助于阐明糖皮质激素诱导的β细胞功能障碍和糖尿病的机制[5]。

一项临床研究探讨了SLC2A2基因rs8192675(C/C)位点在2型糖尿病患者中的基因多态性与二甲双胍降糖效果的相关性。研究发现,与对照相比,T2DM组中rs8192675的CT型和CC型显著升高。在rs8192675中,TT、CT、CC的FPG、2hPBG和HbA1c水平在治疗前无显著差异;治疗后,CC患者的FPG、2hPBG和HbA1c的降低程度低于TT和CT患者。因此,SLC2A2基因rs8192675 CC型T2DM患者对二甲双胍敏感,具有更好的降糖效果[6]。然而,该研究已被撤回[7]。

一项研究发现,高血糖导致肠道屏障功能障碍,增加肠道感染的风险。在肥胖和糖尿病的动物模型中,高血糖通过GLUT2依赖的转录重编程肠道上皮细胞,改变紧密连接和粘附连接的完整性,导致肠道屏障通透性增加。高血糖介导的屏障破坏导致肠道微生物产物系统性的流入和肠道感染的传播。治疗高血糖、肠道上皮特异性GLUT2缺失或抑制葡萄糖代谢可以恢复屏障功能并控制细菌。在人类中,肠道微生物组的产物与个体化血糖控制相关,这通过糖化血红蛋白水平来指示。因此,高血糖与肠道屏障功能之间的机制联系与肥胖和糖尿病的系统感染和炎症后果相关[8]。

另一项研究发现,糖尿病大鼠肾脏中SLC2A2基因的表达受到HNF-1α和HNF-3β的调节。研究者发现,糖尿病大鼠中GLUT2 mRNA水平增加了两倍,伴随着HNF-1α和HNF-3β表达和结合活性的显著增加。此外,12小时胰岛素治疗的大鼠中GLUT2 mRNA和HNF-3β的表达/活性进一步增加了两倍。6天胰岛素治疗将GLUT2 mRNA和HNF-1α的表达/活性降低到非糖尿病大鼠的水平,而HNF-3β降低到非胰岛素治疗的糖尿病大鼠的水平。这些结果表明,糖尿病大鼠肾脏中SLC2A2基因的过表达与HNF-1α和HNF-3β的转录活性相关[9]。

最后,一项研究发现,胰岛具有复杂的异质性和亚群。为了研究肥胖进展和糖尿病发病过程中每个亚群的组成变化,以及高脂饮食(HFD)诱导的胰岛代谢适应性机制,研究者使用单细胞RNA测序(scRNA-seq)在HFD诱导的小鼠葡萄糖不耐受模型中确定了α、β和δ细胞亚群标志物。流式细胞术和免疫染色用于分离和评估每个亚群的比例。对分离的细胞进行单细胞蛋白质组学分析,基于蛋白质表达深入阐明了葡萄糖不耐受中α、β和δ细胞亚群的功能状态。研究发现,与Ace2high亚群相比,Ace2low α细胞亚群中与α细胞功能相关的基因表达下调,而与β细胞特征相关的基因表达上调。单细胞蛋白质组学进一步表明,HFD暴露下Ace2low α细胞的功能受损和脆弱性增加。对于β细胞,CD81high亚群可能指示β细胞的未成熟特征,而CD81low亚群具有稳健的功能。研究者还发现δ细胞中Slc2a2的差异性表达,GLUT2low δ细胞可能具有更强的细胞功能和代谢。在HFD诱导的葡萄糖不耐受中,Ace2low α细胞和CD81low β细胞的数量增加,而GLUT2low δ细胞的数量保持不变。研究者确定了ACE2、CD81和GLUT2作为分别区分α、β和δ细胞亚群的表面标志物,这些亚群具有异质的成熟度和功能。胰岛内分泌亚群的比例和功能状态的变化反映了胰岛对高脂应激的代谢适应性,这种适应性削弱了α细胞的功能并增强了β和δ细胞的功能,以维持血糖稳态[10]。

综上所述,SLC2A2基因在多种生理和病理过程中发挥着重要作用。GLUT2是维持血糖稳态所必需的,其表达受到多种转录因子的调控。SLC2A2基因的变异与糖尿病、高胆固醇血症和心血管疾病的风险增加相关。糖皮质激素和胰岛素治疗可以影响SLC2A2基因的表达。肠道屏障功能障碍与高血糖和肠道感染的风险相关。胰岛内分泌亚群的比例和功能状态的变化反映了胰岛对高脂应激的代谢适应性。SLC2A2基因的研究有助于深入理解其在维持血糖稳态和疾病发生机制中的作用,为糖尿病和相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Hannou, Sarah A, Haslam, Danielle E, McKeown, Nicola M, Herman, Mark A. 2018. Fructose metabolism and metabolic disease. In The Journal of clinical investigation, 128, 545-555. doi:10.1172/JCI96702. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29388924/
2. Liu, Li, Ma, Fei, Liu, Qiulin, Yu, Xueting, Zeng, Xiaojuan. . Association Between the SLC2A2 Gene rs1499821 Polymorphism and Caries Susceptibility. In Genetic testing and molecular biomarkers, 27, 149-156. doi:10.1089/gtmb.2022.0201. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37257183/
3. Ono, Yuka, Kataoka, Kohsuke. 2021. MafA, NeuroD1, and HNF1β synergistically activate the Slc2a2 (Glut2) gene in β-cells. In Journal of molecular endocrinology, 67, 71-82. doi:10.1530/JME-20-0339. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34223824/
4. Thorens, Bernard. 2014. GLUT2, glucose sensing and glucose homeostasis. In Diabetologia, 58, 221-32. doi:10.1007/s00125-014-3451-1. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25421524/
5. Ono, Yuka, Kataoka, Kohsuke. 2025. Glucocorticoids reduce Slc2a2 (GLUT2) gene expression through HNF1 in pancreatic β-cells. In Journal of molecular endocrinology, 74, . doi:10.1530/JME-24-0077. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39688285/
6. Ye, Weiwei, Wang, Yi, Chen, Feng, Liu, Cong, Zhou, Yong. 2022. Clinical Study on the Relationship between the SNP rs8192675 (C/C) Site of SLC2A2 Gene and the Hypoglycemic Effect of Metformin in Type 2 Diabetes. In Journal of healthcare engineering, 2022, 3645336. doi:10.1155/2022/3645336. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35140900/
7. Healthcare Engineering, Journal Of. 2022. Retracted: Clinical Study on the Relationship between the SNP rs8192675 (C/C) Site of SLC2A2 Gene and the Hypoglycemic Effect of Metformin in Type 2 Diabetes. In Journal of healthcare engineering, 2022, 9804760. doi:10.1155/2022/9804760. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36545480/
8. Thaiss, Christoph A, Levy, Maayan, Grosheva, Inna, Geiger, Benjamin, Elinav, Eran. 2018. Hyperglycemia drives intestinal barrier dysfunction and risk for enteric infection. In Science (New York, N.Y.), 359, 1376-1383. doi:10.1126/science.aar3318. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29519916/
9. Freitas, H S, Schaan, B D, David-Silva, A, Mori, R C, Machado, U F. 2009. SLC2A2 gene expression in kidney of diabetic rats is regulated by HNF-1alpha and HNF-3beta. In Molecular and cellular endocrinology, 305, 63-70. doi:10.1016/j.mce.2009.02.014. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19433262/
10. Fu, Qi, Jiang, Hemin, Qian, Yu, Xu, Kuanfeng, Yang, Tao. 2022. Single-cell RNA sequencing combined with single-cell proteomics identifies the metabolic adaptation of islet cell subpopulations to high-fat diet in mice. In Diabetologia, 66, 724-740. doi:10.1007/s00125-022-05849-5. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36538064/