Prg2-KO 基因敲除小鼠

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产品名称

Prg2-KO 基因敲除小鼠

产品编号

S-KO-03773

品系全称

C57BL/6JCya-Prg2em1/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

KOCMP-19074-Prg2-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Prg2-KO 基因敲除小鼠 mice (Strain S-KO-03773) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
proteoglycan 2, bone marrow
基因别称
EMBP,MBP,mMBP,mMBP-1
染色体号
Chr 2 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_008920 | Ensembl: ENSMUST00000028467
修饰方式
全身性基因敲除
靶向范围
Exon 2~6
敲除长度
~3.4 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
MGI:103294Mice homozygous for disruptions in this gene display an essentially normal phenotype although fine structure changes occur in eosinophils.
基因Prg2,也称为plasticity-related gene 2,是一种在多种生物学过程中发挥重要作用的基因。Prg2编码的蛋白质在神经元生长、发育和再生中具有关键作用,同时也在其他生理过程中发挥功能,如胎盘的形成、免疫系统功能和某些疾病的发生。Prg2在细胞膜上定位,通过与PTEN相互作用,调节PI3K/PI(3,4,5)P3信号通路,影响细胞的生长和分支形成[1,5]。

在神经元发育过程中,Prg2通过与PTEN相互作用,抑制PTEN的活性,从而稳定细胞膜上的PI(3,4,5)P3水平。PI(3,4,5)P3是PI3K信号通路的关键分子,参与调控细胞的生长和分支形成。Prg2的这种调节作用,使得神经元能够产生足够的PI(3,4,5)P3,从而促进神经元的分支生长。此外,Prg2还与PTEN形成纳米簇,在神经元开始复杂的分支行为时,沿着轴突膜分布,进一步支持了其促进神经元分支生长的功能[1]。

Prg2的表达异常与某些疾病的发生有关。例如,在胎盘前置和胎盘粘连等产科并发症中,Prg2在胎膜中的表达水平升高,提示Prg2可能参与这些疾病的发生[2]。此外,Prg2的表达也与白细胞的形态学特征有关。在萨丁尼亚人群中,Prg2基因的一个罕见突变与嗜酸性粒细胞的形态学特征改变相关,表明Prg2在白细胞的发育和功能中发挥重要作用[3]。此外,Prg2的表达还与苯暴露有关,苯是一种已知的致癌物质,Prg2的表达可以作为苯暴露的生物标志物[4]。

Prg2在胎盘的形成和功能中也具有重要作用。Prg2编码的蛋白质proMBP在人类妊娠期间表达水平极高,proMBP的低水平与唐氏综合症和不良妊娠结局相关。proMBP通过形成与PAPPA和AGT的复合物,调节这些肽类激素和生长因子的活性,从而影响胎盘的形成和功能[6]。

综上所述,基因Prg2在神经元生长、发育和再生中具有重要作用,同时也在其他生理过程中发挥功能,如胎盘的形成、免疫系统功能和某些疾病的发生。Prg2的表达异常与某些疾病的发生有关,如胎盘前置和胎盘粘连等产科并发症、嗜酸性粒细胞的形态学特征改变和苯暴露等。此外,Prg2在胎盘的形成和功能中也具有重要作用。因此,深入研究Prg2的功能和机制,有助于我们更好地理解其参与的生物学过程,为相关疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Brosig, Annika, Fuchs, Joachim, Ipek, Fatih, Leondaritis, George, Eickholt, Britta J. . The Axonal Membrane Protein PRG2 Inhibits PTEN and Directs Growth to Branches. In Cell reports, 29, 2028-2040.e8. doi:10.1016/j.celrep.2019.10.039. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31722215/
2. Zhang, Elisa T, Hannibal, Roberta L, Badillo Rivera, Keyla M, Lyell, Deirdre J, Baker, Julie C. . PRG2 and AQPEP are misexpressed in fetal membranes in placenta previa and percreta†. In Biology of reproduction, 105, 244-257. doi:10.1093/biolre/ioab068. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33982062/
3. Marongiu, Michele, Pérez-Mejías, Gonzalo, Orrù, Valeria, Cucca, Francesco, Zoledziewska, Magdalena. . GWAS of genetic factors affecting white blood cell morphological parameters in Sardinians uncovers influence of chromosome 11 innate immunity gene cluster on eosinophil morphology. In Human molecular genetics, 32, 790-797. doi:10.1093/hmg/ddac238. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36136759/
4. Schiffman, Courtney, McHale, Cliona M, Hubbard, Alan E, Smith, Martyn T, Rothman, Nathaniel. 2018. Identification of gene expression predictors of occupational benzene exposure. In PloS one, 13, e0205427. doi:10.1371/journal.pone.0205427. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30300410/
5. Fuchs, Joachim, Eickholt, Britta J, Leondaritis, George. 2020. Harnessing PTEN's Growth Potential in Neuronal Development and Disease. In Neuroscience insights, 15, 2633105520959056. doi:10.1177/2633105520959056. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32974612/
6. Weyer, Kathrin, Glerup, Simon. 2011. Placental regulation of peptide hormone and growth factor activity by proMBP. In Biology of reproduction, 84, 1077-86. doi:10.1095/biolreprod.110.090209. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21270431/